Crebl2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Crebl2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-07558

品系全称

C57BL/6JCya-Crebl2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-232430-Crebl2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Crebl2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-07558) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cAMP responsive element binding protein-like 2
基因别称
B230205M03
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_177687 | Ensembl: ENSMUST00000046303
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Crebl2,也称为cAMP反应元件结合蛋白样2,是一种重要的转录因子。它属于cAMP反应元件结合蛋白(CREB)家族,该家族的成员在调节基因表达中发挥关键作用。Crebl2通过结合特定的DNA序列,称为cAMP反应元件(CRE),来调节基因的转录。Crebl2在多种生物学过程中发挥作用,包括神经发育、细胞增殖、细胞凋亡、肌肉发育和炎症反应。

在神经系统中,Crebl2的表达与神经发育和功能密切相关。Crebl2的表达水平在神经元分化过程中发生变化,并在神经元成熟和突触可塑性中发挥作用。此外,Crebl2还参与调节神经递质的释放和突触传递,对神经系统的正常功能至关重要。

Crebl2还与细胞增殖和细胞凋亡相关。研究表明,Crebl2的表达水平与细胞增殖和细胞凋亡之间存在相关性。Crebl2的过表达可以促进细胞增殖,而Crebl2的缺失或下调则可以诱导细胞凋亡。因此,Crebl2的表达水平可能对细胞生长和细胞命运起着重要的调节作用。

此外,Crebl2还参与肌肉发育和肌肉功能。Crebl2的表达在肌肉细胞分化过程中发生变化,并在肌肉生长和肌肉收缩中发挥作用。Crebl2的缺失或下调可能导致肌肉发育异常和肌肉功能受损。

Crebl2还与炎症反应相关。研究表明,Crebl2的表达水平与炎症反应的强度和持续时间相关。Crebl2的过表达可以抑制炎症反应,而Crebl2的缺失或下调则可以增强炎症反应。因此,Crebl2可能参与调节炎症反应的进程和炎症相关疾病的发生。

根据参考文献内容,Crebl2在多种生物学过程中发挥重要作用。在鱼类的发育过程中,Crebl2的启动子区域存在差异甲基化区域,这些区域的甲基化状态可以影响Crebl2的转录表达,进而影响鱼类的神经系统、视网膜和消化系统的发育[1]。在肝细胞癌中,Crebl2的表达水平与miR-17-92簇的表达水平呈负相关,表明Crebl2可能受到miR-17-92簇的调控,并在肝细胞癌的发生发展中发挥作用[2]。在周围神经损伤中,miR-195-5p通过直接靶向Crebl2的3'-UTR区域来下调Crebl2的表达,进而影响Schwann细胞的增殖和迁移,从而影响周围神经的再生[3]。在鸭子的肌肉发育过程中,Crebl2的表达水平在胚胎和成年鸭子的骨骼肌肉中发生动态变化,并与其他与肌肉发育相关的基因共同表达[4]。在牛的肌肉组织中,Crebl2的表达水平与肌内脂肪含量相关,表明Crebl2可能参与肌内脂肪的沉积和肌肉组织的发育[5]。在牛疱疹病毒1中,Crebl2是BICP22蛋白的宿主细胞靶点,BICP22可以与Crebl2相互作用,并在病毒感染过程中发挥作用[6]。在热应激过程中,miR-1246可以负向调控Crebl2的表达,进而抑制肺细胞的凋亡[7]。在ETV6-RUNX1急性淋巴细胞白血病中,Crebl2基因的缺失可能与白血病的发生发展相关[8]。在细胞增殖和衰老过程中,Crebl2的表达水平发生动态变化,并与其他与细胞周期和衰老相关的基因共同表达[9]。此外,Crebl2还可以被AMPK磷酸化,进而调节基因的转录表达[10]。

综上所述,Crebl2是一种重要的转录因子,参与调节神经发育、细胞增殖、细胞凋亡、肌肉发育和炎症反应等多种生物学过程。Crebl2的表达水平受到多种因素的调控,包括表观遗传修饰、miRNA的调控、病毒蛋白的相互作用等。Crebl2的研究有助于深入理解转录调控的机制和疾病发生发展的过程,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Tai, Zhipeng, Guan, Pengpeng, Zhang, Ting, Li, Guoliang, Liu, Jing-Xia. 2021. Effects of parental environmental copper stress on offspring development: DNA methylation modification and responses of differentially methylated region-related genes in transcriptional expression. In Journal of hazardous materials, 424, 127600. doi:10.1016/j.jhazmat.2021.127600. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34801305/
2. Zhu, Hanqing, Han, Chang, Wu, Tong. 2015. MiR-17-92 cluster promotes hepatocarcinogenesis. In Carcinogenesis, 36, 1213-22. doi:10.1093/carcin/bgv112. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26233958/
3. Li, Shiying, Wu, Wenshuang, Zhang, Jing, Wu, Yumeng, Wang, Xinghui. 2023. Regulation of Schwann cell proliferation and migration via miR-195-5p-induced Crebl2 downregulation upon peripheral nerve damage. In Frontiers in cellular neuroscience, 17, 1173086. doi:10.3389/fncel.2023.1173086. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37469605/
4. Hu, Zhigang, Cao, Junting, Zhang, Jianqin, Zhang, Huilin, Liu, Xiaolin. 2021. Skeletal Muscle Transcriptome Analysis of Hanzhong Ma Duck at Different Growth Stages Using RNA-Seq. In Biomolecules, 11, . doi:10.3390/biom11020315. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33669581/
5. Hudson, N J, Reverter, A, Greenwood, P L, Cafe, L M, Dalrymple, B P. 2014. Longitudinal muscle gene expression patterns associated with differential intramuscular fat in cattle. In Animal : an international journal of animal bioscience, 9, 650-9. doi:10.1017/S1751731114002754. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25391663/
6. Saydam, Okay, Steiner, Florian, Vogt, Bernd, Schwyzer, Martin. 2005. Host cell targets of immediate-early protein BICP22 of bovine herpesvirus 1. In Veterinary microbiology, 113, 185-92. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16352405/
7. Hu, Yu, Cai, Ming-Chen, Wang, Ling, Zhang, Gong-Wei, Zuo, Fu-Yuan. 2018. MiR-1246 is upregulated and regulates lung cell apoptosis during heat stress in feedlot cattle. In Cell stress & chaperones, 23, 1219-1228. doi:10.1007/s12192-018-0927-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30105590/
8. Al-Shehhi, Halima, Konn, Zoe J, Schwab, Claire J, Harrison, Christine J, Moorman, Anthony V. 2012. Abnormalities of the der(12)t(12;21) in ETV6-RUNX1 acute lymphoblastic leukemia. In Genes, chromosomes & cancer, 52, 202-13. doi:10.1002/gcc.22021. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23077088/
9. Thomson, D M, Herway, S T, Fillmore, N, Barrow, J R, Winder, W W. 2007. AMP-activated protein kinase phosphorylates transcription factors of the CREB family. In Journal of applied physiology (Bethesda, Md. : 1985), 104, 429-38. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18063805/
10. Ma, Liwei, Zhao, Wenting, Zhu, Feng, Wang, Pingzhang, Tong, Tanjun. 2015. Global Characteristics of CSIG-Associated Gene Expression Changes in Human HEK293 Cells and the Implications for CSIG Regulating Cell Proliferation and Senescence. In Frontiers in endocrinology, 6, 69. doi:10.3389/fendo.2015.00069. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26029164/