Vpreb1a-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Vpreb1a-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-06624

品系全称

C57BL/6JCya-Vpreb1aem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-22362-Vpreb1a-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Vpreb1a-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-06624) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
V-set pre-B cell surrogate light chain 1A
基因别称
CD179a,Vpreb-1,Vpreb1
染色体号
Chr 16 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_016982 | Ensembl: ENSMUST00000075017
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~1.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:98936Homozygous null mutants have fewer cells with functional pre-B cell receptors. Double knockouts homozygous for null mutations at Vpreb1 and Vpreb2 show impaired B-cell development. Fewer B-cells are found in bone marrow, spleen and peritoneum.
Vpreb1a,也称为Pre-B-cell receptor heavy chain 1a,是一种在B细胞发育过程中发挥重要作用的基因。它编码前B细胞受体(Pre-BCR)的重链,前B细胞受体是B细胞成熟过程中的关键分子。Vpreb1a的表达对于前B细胞受体的形成和功能至关重要,前B细胞受体能够识别并绑定特定的抗原,从而启动B细胞的免疫应答。Vpreb1a的突变或缺失可能导致B细胞发育障碍和免疫缺陷。此外,Vpreb1a的表达和功能可能与其他基因存在相互作用,共同调控B细胞发育和免疫应答。

基因复制和基因丢失是动物基因组进化过程中的常见事件,两者之间的平衡对物种间基因数量的差异产生重要影响[1]。在基因复制后,两个子代基因通常会以相似的速率积累序列变化。然而,在一些情况下,序列变化的积累是不均衡的,其中一个副本会从其同源基因中显著分化出来。这种“非对称进化”在串联基因复制后比在基因组复制后更为常见,可以产生具有实质性新功能的基因[1]。

乳腺癌是一种异质性疾病,大部分病例(约70%)被认为是散发的。家族性乳腺癌(约30%的患者)通常出现在乳腺癌发病率高的家族中,已经与多种高、中、低穿透力的易感基因相关。家族连锁研究已经确定了BRCA1、BRCA2、PTEN和TP53等高穿透力基因,它们负责遗传性综合征。此外,家族研究和人群研究相结合表明,参与DNA修复的基因,如CHEK2、ATM、BRIP1(FANCJ)、PALB2(FANCN)和RAD51C(FANCO),与中度乳腺癌风险相关[2]。全基因组关联研究(GWAS)揭示了与乳腺癌风险略微升高或降低相关的常见低穿透力等位基因。目前,只有高穿透力基因被广泛应用于临床实践。随着下一代测序技术的发展,预计所有家族性乳腺癌基因都将被纳入基因检测。然而,在将多基因面板测试完全纳入临床工作流程之前,还需要对中度风险和低风险变异的临床管理进行额外研究[2]。

工程基因回路是后基因组研究的一个核心焦点,旨在理解细胞现象如何从基因和蛋白质的连接性中产生。这种连接性产生了类似于复杂电子回路的分子网络图,系统性的理解需要发展一个描述回路的数学框架。从工程的角度来看,通往这种框架的自然途径是通过构建和分析构成网络的底层子模块。在测序和基因工程方面的最新实验进展使得这种方法成为可能,通过设计和实施可进行数学建模和定量分析的合成基因网络。这些发展标志着基因回路学科的兴起,该学科提供了一个预测和评估细胞过程动态的框架。合成基因网络还将导致新的细胞控制逻辑形式,这可能对功能基因组学、纳米技术和基因和细胞治疗具有重要意义[3]。

基因敲除产生完全失去功能的基因型,是研究基因功能的一种常用方法。基因敲除最严重的表型后果是致死性。具有致死性敲除表型的基因被称为必需基因。基于酵母的全基因组敲除分析表明,基因组中高达约四分之一的基因可能是必需的。与其他基因型-表型关系一样,基因必需性受到背景效应的影响,并且可能由于基因-基因相互作用而发生变化。特别是,对于一些必需基因,由敲除引起的致死性可以通过非基因抑制因子得到拯救。这种“必需性回避”(BOE)基因-基因相互作用是一种尚未得到充分研究的遗传抑制类型。最近的一项系统性分析表明,令人惊讶的是,裂殖酵母Schizosaccharomyces pombe中近30%的必需基因的必需性可以通过BOE相互作用得到回避[4]。

基因调控网络是细胞内基因表达和调控的关键组成部分。基因表达受到多种因素的调控,包括转录因子、非编码RNA、染色质修饰和信号通路等。基因调控网络的研究有助于理解基因表达的模式和机制,以及它们如何影响细胞功能和发展。基因调控网络的研究方法包括实验方法和计算方法。实验方法包括基因敲除、基因过表达、染色质免疫沉淀(ChIP)、RNA测序等。计算方法包括网络分析、机器学习和系统生物学等。基因调控网络的研究对于理解细胞生物学、疾病发生和发展具有重要意义[5]。

基因片段是指在基因组中不完全编码蛋白质的基因部分。基因片段可能由于基因复制、基因丢失或基因重组而产生。基因片段的功能可能包括编码蛋白质的一部分、参与基因调控或作为非编码RNA的前体。基因片段的研究对于理解基因组进化和基因表达调控具有重要意义[6]。

植物抗病基因介导的植物防御反应是植物免疫系统的重要组成部分。抗病基因能够识别病原体相关分子模式(PAMPs)或效应子,从而激活植物防御反应。植物防御反应包括细胞壁强化、细胞凋亡、活性氧(ROS)产生和抗病相关基因的表达。植物抗病基因的研究对于理解植物免疫系统和开发抗病植物具有重要意义[7]。

主要组织相容性复合体(MHC)基因的表达调节是免疫应答的关键过程。MHC基因编码的分子在免疫系统中发挥重要作用,包括抗原呈递、免疫识别和免疫应答调节。MHC基因的表达受到多种因素的调节,包括转录因子、染色质修饰、信号通路和非编码RNA等。MHC基因表达的研究对于理解免疫应答的机制和开发免疫治疗具有重要意义[8]。

基因的定义是生物学中的一个基本概念,但至今仍存在争议。基因可以定义为编码蛋白质或非编码RNA的DNA序列,也可以定义为参与遗传信息传递和表达调控的遗传单位。基因的定义对于理解基因组学、遗传学和分子生物学具有重要意义[9]。

将基因转移到角质形成细胞中是一种研究基因功能和调控的有效方法。基因转移技术包括病毒载体和非病毒载体。病毒载体具有高效的基因转移能力,但可能引起免疫反应和细胞毒性。非病毒载体包括质粒DNA、脂质体和纳米颗粒等,具有较低的免疫反应和细胞毒性,但基因转移效率较低。基因转移技术的研究对于皮肤生物学和基因治疗具有重要意义[10]。

综上所述,Vpreb1a是一种重要的基因,在B细胞发育和免疫应答中发挥重要作用。Vpreb1a的表达和功能可能与其他基因存在相互作用,共同调控B细胞发育和免疫应答。基因复制和基因丢失是动物基因组进化过程中的常见事件,两者之间的平衡对物种间基因数量的差异产生重要影响。乳腺癌是一种异质性疾病,与多种高、中、低穿透力的易感基因相关。工程基因回路是后基因组研究的一个核心焦点,旨在理解细胞现象如何从基因和蛋白质的连接性中产生。基因敲除是一种研究基因功能的方法,但具有致死性敲除表型的基因的必需性可以通过非基因抑制因子得到拯救。基因调控网络是细胞内基因表达和调控的关键组成部分,研究基因调控网络有助于理解基因表达的模式和机制。基因片段是指在基因组中不完全编码蛋白质的基因部分,研究基因片段对于理解基因组进化和基因表达调控具有重要意义。植物抗病基因介导的植物防御反应是植物免疫系统的重要组成部分,研究植物抗病基因对于理解植物免疫系统和开发抗病植物具有重要意义。MHC基因的表达调节是免疫应答的关键过程,研究MHC基因表达对于理解免疫应答的机制和开发免疫治疗具有重要意义。基因的定义是生物学中的一个基本概念,但至今仍存在争议,基因的定义对于理解基因组学、遗传学和分子生物学具有重要意义。将基因转移到角质形成细胞中是一种研究基因功能和调控的有效方法,基因转移技术的研究对于皮肤生物学和基因治疗具有重要意义。

参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
3. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
4. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/
8. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/
9. Epp, C D. . Definition of a gene. In Nature, 389, 537. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9335484/
10. Fenjves, E S. . Approaches to gene transfer in keratinocytes. In The Journal of investigative dermatology, 103, 70S-75S. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7963688/