Ssb-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Ssb-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-05316

品系全称

C57BL/6JCya-Ssbem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-20823-Ssb-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ssb-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-05316) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
small RNA binding exonuclease protection factor La
基因别称
SS-B
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_009278 | Ensembl: ENSMUST00000166411
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3~6
敲除长度
~3.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:98423Mice homozygous for disruptions in this gene die as embryos, possible before implantation.
Ssb基因编码的是单链DNA结合蛋白(Single-Strand Binding Protein, SSB),这是一种在细菌中广泛存在的蛋白质,它在DNA的代谢和调控中发挥着关键作用。SSB蛋白能够强烈地结合到单链DNA上,这对于DNA的复制、转录和修复等基本过程至关重要。在Escherichia coli中,ssb基因的表达受到SOS反应调控,SOS反应是细菌在面对DNA损伤时激活的一系列基因表达程序。研究发现,在紫外线和γ射线照射下,ssb基因的表达会升高,并且这种升高依赖于SOS反应的激活[1]。这表明ssb基因在DNA损伤修复中发挥着重要作用,而SOS反应的激活则是其表达调控的关键因素。

除了在细菌中发挥作用外,SSB蛋白的同源物在真核细胞中也存在,如RPA蛋白。这些蛋白质同样在DNA的复制、转录和修复中发挥着重要作用。例如,在真核细胞中,PARP1和PARP2酶能够捕获受损的DNA,形成PARP-DNA复合物。这些复合物比未修复的单链DNA断裂(SSB)更具有细胞毒性,这表明PARP抑制剂在部分程度上是通过捕获PARP酶在DNA上起作用的[3]。此外,PARP抑制剂在癌症治疗中具有重要作用,它们能够抑制DNA损伤修复,从而提高癌症治疗的疗效。

在病毒学领域,tRNA衍生RNA片段(tRFs)也被发现与SSB蛋白相互作用,影响病毒基因的表达。例如,tRF_U3_1是一种来源于pre-tRNA 3'尾部的小RNA片段,它在细胞质中表达丰富,并且能够与La/SSB蛋白直接结合。这种结合使得细胞对RNA病毒具有抵抗力,因为这些病毒需要利用La/SSB蛋白的RNA分子伴侣活性来进行基因表达[4]。

在基因编辑领域,SSB蛋白也被用于构建CRISPR-Cas9 RNP编辑系统,用于细菌的基因编辑。例如,通过将SSB蛋白与CRISPR-Cas9 RNP结合,可以实现对upp基因的非同源重组和同源重组编辑[2]。这种编辑系统在细菌中具有较高的编辑效率和较快的编辑速度,为细菌基因编辑提供了新的工具。

除了在DNA代谢和病毒学领域发挥作用外,SSB蛋白还与神经退行性疾病有关。研究发现,神经元中的增强子区域是DNA单链断裂(SSB)修复的热点区域。这些SSB通过PARP1和XRCC1依赖的机制进行修复,而XRCC1依赖的短补丁修复缺陷会导致神经元增强子区域DNA修复合成增加,而长补丁修复缺陷则会导致修复合成减少[5]。这表明SSB蛋白在神经元中的DNA损伤修复中发挥着重要作用,其功能缺陷可能与神经退行性疾病的发生有关。

综上所述,Ssb基因编码的SSB蛋白在DNA的复制、转录、修复和病毒学等领域发挥着重要作用。其表达受到SOS反应的调控,并且与多种生物学过程和疾病发生机制密切相关。此外,SSB蛋白在神经元中的功能缺陷可能与神经退行性疾病的发生有关。因此,深入研究SSB蛋白的生物学功能和调控机制,对于理解其与疾病发生的关系,以及开发新的疾病治疗策略具有重要意义。

参考文献:
1. Feliciello, Isidoro, Đermić, Edyta, Malović, Helena, Procino, Alfredo, Đermić, Damir. 2022. Regulation of ssb Gene Expression in Escherichia coli. In International journal of molecular sciences, 23, . doi:10.3390/ijms231810917. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36142827/
2. Chai, Ran, Sun, Wenying, Xu, Zhixu, Chen, Shichang, Qiu, Liyou. 2024. Gene editing by SSB/CRISPR-Cas9 ribonucleoprotein in bacteria. In International journal of biological macromolecules, 278, 135065. doi:10.1016/j.ijbiomac.2024.135065. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39187111/
3. Murai, Junko, Huang, Shar-yin N, Das, Benu Brata, Takeda, Shunichi, Pommier, Yves. . Trapping of PARP1 and PARP2 by Clinical PARP Inhibitors. In Cancer research, 72, 5588-99. doi:10.1158/0008-5472.CAN-12-2753. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23118055/
4. Cho, Hee, Lee, Wooseong, Kim, Geon-Woo, Kim, Hyun Seok, Oh, Jong-Won. . Regulation of La/SSB-dependent viral gene expression by pre-tRNA 3' trailer-derived tRNA fragments. In Nucleic acids research, 47, 9888-9901. doi:10.1093/nar/gkz732. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31504775/
5. Wu, Wei, Hill, Sarah E, Nathan, William J, Ward, Michael E, Nussenzweig, André. 2021. Neuronal enhancers are hotspots for DNA single-strand break repair. In Nature, 593, 440-444. doi:10.1038/s41586-021-03468-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33767446/