Rnaseh1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Rnaseh1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-04811

品系全称

C57BL/6JCya-Rnaseh1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-19819-Rnaseh1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Rnaseh1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-04811) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ribonuclease H1
基因别称
-
染色体号
Chr 12 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_011275 | Ensembl: ENSMUST00000020959
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1335073Homozygous mutation of this gene results in embryonic lethality due to growth arrest around E8.5. Mutant embryos have decreased mtDNA content and abnormal mitochondria. Massive apoptosis is observed at E9.5.
RNASEH1,也称为RNaseH1,是一种重要的核基因编码的蛋白质,它在维持线粒体DNA(mtDNA)方面发挥着关键作用。RNaseH1是一种内切核酸酶,它能够特异性地降解RNA-DNA杂交分子中的RNA部分,这一功能在DNA复制和修复过程中至关重要。在mtDNA的复制过程中,RNaseH1负责移除与mtDNA模板链互补的RNA,以确保DNA复制的准确性。此外,RNaseH1还在维持细胞内核苷酸平衡方面发挥作用,这对于mtDNA的合成至关重要。

线粒体DNA维护缺陷(MDMDs)是一组由核基因中的致病性变异引起的疾病,这些基因参与mtDNA的维护。这些缺陷导致mtDNA合成受损,从而引起mtDNA数量(mtDNA耗竭)和质量(多mtDNA缺失)的缺陷。这些缺陷导致受影响器官的能量生产不足,因为mtDNA编码的蛋白质合成不足。MDMDs的遗传方式可以是常染色体隐性或显性,并具有广泛的表型谱,从轻度成人起病的眼肌麻痹到严重的婴儿期致命性肝衰竭。迄今为止,已经发现20个与MDMDs相关的核基因,包括编码mtDNA复制机制酶的基因(POLG、POLG2、TWNK、TFAM、RNASEH1、MGME1和DNA2),编码维持平衡的线粒体核苷酸库蛋白的基因(TK2、DGUOK、SUCLG1、SUCLA2、ABAT、RRM2B、TYMP、SLC25A4、AGK和MPV17),以及编码参与线粒体融合的蛋白的基因(OPA1、MFN2和FBXL4)[1]。

在哥伦比亚,RNASEH1基因的变异已被发现与自身免疫性1型糖尿病(T1D)相关。研究人员在染色体2p25区域的12个已知基因中发现了17个单核苷酸多态性(SNPs),这些基因与T1D有关。他们发现,SNP rs10186193(位于RNASEH1基因)与T1D相关(P=0.005)。此外,他们还发现rs7607888(P=2.03×10-7)、rs55981318(P=0.018)和rs1136545(P=1.93×10-9)也与T1D相关。基因型分析显示,rs55981318-rs10186193(P=0.0005)、rs7563960-rs7607888(P=0.0007)、rs7607888-rs1136545(P=9.21×10-10)和rs1136545-rs11538545(P=6.67×10-8)也与T1D相关[2]。

RNASEH1基因与自身免疫性1型糖尿病的关联在哥伦比亚的家庭中得到了进一步的研究。研究人员在200个T1D家庭中进行了研究,并测试了20个编码标签SNPs和45个与T1D相关的经典HLA等位基因的标签SNPs。他们发现,T1D与rs7607888相关(P=0.002)。基因型分析显示,rs7607888变异与T1D的相关性更强(最显著的P=0.0003)。HLA标签SNPs显示出更强的相关性(OR=6.39,95% CI=4.33-9.44,P值=9.74E-28)。此外,他们还发现HLA变异与rs7607888之间存在多个统计学上显著的相互作用(P值范围从8.77E-04到5.33E-12)。这些结果表明,RNASEH1基因的rs7607888变异与T1D相关,并且与HLA之间存在相互作用,从而增加了T1D的风险[3]。

RNaseH1是R-loop的识别和解决过程中的一种进化上保守的蛋白质。R-loop是一种三链RNA/DNA结构,已被发现与基因组不稳定性和基因表达调控相关。为了在体内精确地分析R-loop,研究人员开发了一种基于RNaseH1的R-loop映射策略。研究发现,R-loop的形成主要发生在基因启动子附近,这些启动子具有强烈的G/C偏斜和形成G-四链体的倾向。转录扰动实验进一步表明,R-loop的诱导与转录暂停相关。有趣的是,他们注意到大多数映射的R-loop都与附近的游离RNA末端相关联。通过使用核酶共转录切割新生的RNA,他们证明了这种游离RNA末端与G/C偏斜序列的结合是诱导R-loop所必需和充分的。这些发现为RNA侵入双链DNA提供了一种拓扑解决方案,并暗示了R-loop起始和延伸的顺序与先前提出的顺序相反[4]。

RNASEH1(核糖核酸酶H1)编码一种内切核酸酶,它特异性地降解RNA-DNA杂交分子的RNA部分,并在DNA复制和修复中发挥作用。尽管有许多关于RNASEH1的研究,但其在癌症中的研究仍然不足。因此,为了阐明RNASEH1在肿瘤细胞中的生理机制,研究人员结合了癌症基因组图谱(TCGA)的全癌症数据和基因型-组织表达(GTEx)的正常组织数据来评估RNASEH1的作用。研究发现,RNASEH1在19种癌症中显著过表达,并且过表达与不良预后密切相关。此外,RNASEH1的表达与肿瘤微环境的调节密切相关。RNASEH1的表达与免疫细胞浸润、免疫检查点、免疫激活剂、免疫抑制因子、趋化因子和趋化因子受体密切相关。最后,RNASEH1还与DNA相关生理活动和线粒体相关生理活动密切相关。这些研究结果表明,RNASEH1是一种潜在的癌症生物标志物,并且可能通过调节线粒体的相关生理活动来调节肿瘤微环境,从而影响肿瘤的发生和发展。因此,它可能被用于开发新的靶向肿瘤治疗的药物[5]。

RNASEH1-AS1是一种长链非编码RNA(lncRNA),它从其相邻的编码蛋白基因RNASEH1的反义链上转录。RNASEH1-AS1最近被发现参与肿瘤进展,但其与肝细胞癌(HCC)的关系尚不清楚。研究发现,RNASEH1-AS1在大多数癌症类型中上调,包括HCC,并且其过表达与组织学分级和AFP水平以及不良预后显著相关,是影响HCC总生存率的独立危险因素,具有良好的诊断和预后价值。RNASEH1-AS1与大多数免疫细胞类型的浸润呈负相关,包括浆细胞样树突状细胞(pDC)、B细胞和中性粒细胞。GO和KEGG富集分析表明,RNASEH1-AS1的相关基因主要与RNA处理、核糖体生物发生、转录和组蛋白乙酰化相关。通过构建蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络,确定了10个高度表达的枢纽基因(EIF4A3、WDR43、WDR12、DKC1、NAT10、UTP18、DDX18、BYSL、DDX10、PDCD11),它们都与组织学分级呈正相关。基于四个RNASEH1-AS1相关枢纽基因(EIF4A3、WDR12、DKC1和NAT10)构建的风险模型具有良好的预后预测潜力。实验验证表明,RNASEH1-AS1在HCC组织和细胞系中显著升高,其敲低可以抑制HCC细胞的增殖、迁移和侵袭。机制研究表明,RNASEH1-AS1的稳定性可以通过与DKC1的直接相互作用来调节。这些结果表明,RNASEH1-AS1可能作为HCC的潜在预后和诊断生物标志物以及致癌lncRNA[6]。

MYC是基因转录的中心调节因子,并且在人类癌症中经常失调。由于直接靶向MYC具有挑战性,一种替代策略是识别特定的蛋白质或过程,这些蛋白质或过程对于MYC作为强大的癌症驱动因子至关重要,并且可以针对这些蛋白质或过程来导致合成致死性。为了识别MYC驱动癌症中的潜在靶点,研究人员使用了一对同基因的乳腺癌细胞系,在这些细胞系中,MYC失调是从良性到转化肿瘤生长的开关,并进行了全基因组CRISPR敲除筛选。他们发现,调节R-loop的蛋白质是一类潜在的合成致死靶点。失调的MYC升高了全局转录和相应的R-loop积累。拓扑异构酶1(TOP1),一种通过DNA拓扑学调节R-loop的调节因子,在具有高MYC活性的细胞中被验证为一种易损性。在MYC转化的细胞中,TOP1的基因敲低与对照细胞相比,减少了集落形成,表明合成致死性。RNaseH1的过表达,一种特异性降解R-loop的核糖核酸酶,挽救了由TOP1缺乏引起的集落形成减少,表明这种易损性是由异常R-loop积累驱动的。遗传和药理TOP1抑制在体内选择性地降低了MYC转化肿瘤的适应性。最后,TOP1抑制剂的药物反应(即拓扑替康)与MYC水平和活动性在乳腺癌细胞系和患者来源的类器官面板上显著相关。这些结果表明,TOP1是MYC驱动癌症的一个有希望的靶点。CRISPR筛选揭示了MYC作为驱动致癌基因的癌症中的立即可操作的易损性,可以用临床批准的抑制剂进行靶向[7]。

R-loop是一种三链结构,包含由单链RNA侵入的双链DNA。它们与多种生物学过程相关,并在基因调控和DNA修复中发挥着重要作用。为了阐明R-loop的形成和动态调节,需要阐明全基因组范围内的R-loop景观。为了帮助这些努力,研究人员提供了一种基于使用催化性失活的RNaseH1的R-loop映射策略的概述和详细方案。催化性失活的RNaseH1是一种进化上保守的蛋白质,负责R-loop的识别和解决[8]。

氧化应激是一种普遍存在的细胞挑战,与衰老、神经退化和癌症有关。通过研究肿瘤抑制因子BRCA2中的致病性突变,研究人员确定了一种氧化应激限制线粒体(mt)DNA复制的通用机制。BRCA2失活导致mtDNA调节区域R-loop的积累,并减少mtDNA复制起始。在BRCA2缺陷细胞中,细胞内活性氧(ROS)水平升高,ROS清除剂抑制了mtDNA缺陷。相反,野生型细胞通过药理学或遗传操作暴露于氧化应激会复制这些缺陷。在机制上,他们发现,由氧化应激引起的mtDNA中8-氧鸟嘌呤的积累足以损害RNaseH1在R-loop积累位点的募集,从而限制了mtDNA复制起始。因此,氧化应激损害RNaseH1的功能,从而损害mtDNA的维护。这些发现揭示了将氧化应激与线粒体功能障碍联系起来的一种分子机制,并且是由与神经退化和癌症相关的基因失活所引起的[9]。

R-loop调节基因组稳定性和基因表达,但在干细胞生物学中,R-loop的功能和调节机制仍然不清楚。研究人员在体细胞重编程过程中对R-loop进行了分析,发现R-loop的动态变化对重编程至关重要,并且在基因表达变化之前发生。通过耗尽RNaseH1或催化性失活RNaseH1(RNaseH1D209N)破坏R-loop的稳态会阻止重编程。Sox2,而不是Yamanaka鸡尾酒中的其他任何因子,克服了RNaseH1活性丧失对重编程的抑制作用。Sox2与重编程障碍因子Ddx5相互作用,并抑制Ddx5在R-loop上的解旋酶活性,从而促进重编程。此外,通过dCas9介导的RNaseH1/RNaseH1D209N靶向特定的R-loop区域可以调节重编程效率。这些结果表明,R-loop在重编程中发挥着重要作用,并阐明了Sox2/Ddx5对R-loop在重编程期间的调节模块[10]。

综上所述,RNASEH1基因在维持mtDNA和调节基因表达方面发挥着重要作用。RNASEH1的变异与多种疾病相关,包括线粒体DNA维护缺陷和自身免疫性1型糖尿病。RNASEH1还与肿瘤的发生和发展相关,并且可能通过调节肿瘤微环境来影响肿瘤的预后。此外,RNASEH1在基因重编程中也发挥着重要作用。对RNASEH1的深入研究有助于我们更好地理解其生物学功能和疾病发生机制,并为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. El-Hattab, Ayman W, Craigen, William J, Scaglia, Fernando. 2017. Mitochondrial DNA maintenance defects. In Biochimica et biophysica acta. Molecular basis of disease, 1863, 1539-1555. doi:10.1016/j.bbadis.2017.02.017. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28215579/
2. Pineda-Trujillo, N, Rodríguez-Acevedo, A, Rodríguez, A, Rivera, A, Alfaro, J-M. 2017. RNASEH1 gene variants are associated with autoimmune type 1 diabetes in Colombia. In Journal of endocrinological investigation, 41, 755-764. doi:10.1007/s40618-017-0797-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29204916/
3. Gomez-Lopera, Natalia, Alfaro, Juan-Manuel, Rodriguez, Alejandra-Marcela, Leal, Suzanne M, Pineda-Trujillo, Nicolas. 2020. A non-coding RNASEH1 gene variant associates with type 1 diabetes and interacts with HLA tagSNPs in families from Colombia. In Pediatric diabetes, 21, 1183-1192. doi:10.1111/pedi.13057. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32447804/
4. Chen, Liang, Chen, Jia-Yu, Zhang, Xuan, Zhang, Dong-Er, Fu, Xiang-Dong. 2017. R-ChIP Using Inactive RNase H Reveals Dynamic Coupling of R-loops with Transcriptional Pausing at Gene Promoters. In Molecular cell, 68, 745-757.e5. doi:10.1016/j.molcel.2017.10.008. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29104020/
5. Yi, Chen, Yang, Jun, Zhang, Ting, Qin, Liu, Chen, Dongjuan. 2023. A pan-cancer analysis of RNASEH1, a potential regulator of the tumor microenvironment. In Clinical & translational oncology : official publication of the Federation of Spanish Oncology Societies and of the National Cancer Institute of Mexico, 25, 2569-2586. doi:10.1007/s12094-023-03142-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37022517/
6. Sun, Jin, Li, Yingnan, Tian, Hongwei, Li, Jun, Li, Zongfang. 2024. Comprehensive analysis identifies long non-coding RNA RNASEH1-AS1 as a potential prognostic biomarker and oncogenic target in hepatocellular carcinoma. In American journal of cancer research, 14, 996-1014. doi:10.62347/JPHF4071. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38590422/
7. Lin, Peter, Lourenco, Corey, Cruickshank, Jennifer, Moffat, Jason, Penn, Linda Z. . Topoisomerase 1 Inhibition in MYC-Driven Cancer Promotes Aberrant R-Loop Accumulation to Induce Synthetic Lethality. In Cancer research, 83, 4015-4029. doi:10.1158/0008-5472.CAN-22-2948. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37987734/
8. Zhang, Xuan, Hao, Yajing, Fu, Xiang-Dong. . Mapping R-Loops Using Catalytically Inactive RNaseH1 (R-ChIP). In Methods in molecular biology (Clifton, N.J.), 2528, 359-372. doi:10.1007/978-1-0716-2477-7_24. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35704204/
9. Renaudin, Xavier, Lee, Miyoung, Shehata, Mona, Surmann, Eva-Maria, Venkitaraman, Ashok R. . BRCA2 deficiency reveals that oxidative stress impairs RNaseH1 function to cripple mitochondrial DNA maintenance. In Cell reports, 36, 109478. doi:10.1016/j.celrep.2021.109478. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34348152/
10. Li, Yaoyi, Song, Yawei, Xu, Wei, Sun, Qianwen, Yao, Hongjie. 2020. R-loops coordinate with SOX2 in regulating reprogramming to pluripotency. In Science advances, 6, eaba0777. doi:10.1126/sciadv.aba0777. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32704541/