Prm1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Prm1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-04456

品系全称

C57BL/6JCya-Prm1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-19118-Prm1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Prm1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-04456) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
protamine 1
基因别称
Prm-1
染色体号
Chr 16 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_013637.5 | Ensembl: ENSMUST00000023144
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~916 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:97765In chimeras deformed sperm with loosely compacted chromatin are derived from spermatogenic cells with one copy of the mutated allele. No offspring carrying the mutated allele are produced from matings using chimeras.
PRM1,即精蛋白1基因,是哺乳动物精子形成过程中一个关键的基因。精蛋白是精子细胞核中一种主要的蛋白质,它们取代了组蛋白,使精子DNA在成熟过程中高度压缩,以适应精子的形态和功能需求。PRM1是精蛋白家族的一员,与另一个精蛋白基因PRM2协同工作,共同完成精子DNA的包装和保护,确保精子在受精过程中发挥正常功能。在人类和其他哺乳动物中,精蛋白对精子染色质的超压缩至关重要,这对于精子在生殖道中的运动和受精过程中的正常功能至关重要。

PRM1基因在精子的发生和成熟过程中起着关键作用。研究表明,PRM1基因的表达和蛋白质丰度在正常生育的公牛中显著高于生育能力较低的公牛。这表明PRM1基因可能是公牛生育能力的一个潜在标记物。在人工授精项目中,通过检测PRM1基因的表达和蛋白质丰度,可以更准确地评估公牛的生育能力[1]。

在男性不育症中,PRM1基因的突变或表达异常也可能起着重要作用。研究表明,PRM1基因的多态性与男性不育症的风险增加相关。例如,在中国汉族人群中,PRM1基因的rs35576928变异(Arg>Ser)与严重少精子症相关,表明该基因变异可能是精子发生缺陷的一个风险因素[5]。此外,在伊朗阿拉伯不育男性中,PRM1基因的两个致病性变异被发现,这些变异位于基因的调控区域,可能与精子发生缺陷有关[2]。

PRM1基因的突变或表达异常还可能导致精子DNA碎片化增加,这是男性不育症的另一个常见原因。研究表明,在精子DNA碎片化程度较高的不育男性中,PRM1基因的表达水平显著下调[3]。这表明PRM1基因可能在维持精子DNA的完整性和功能方面发挥着重要作用。

此外,PRM1基因的表达和功能还与其他基因相互作用,共同影响精子的发生和成熟。例如,CCER1基因是一种与生殖细胞特异性相关的基因,它通过介导精子的组蛋白到精蛋白的过渡来促进精子发生。CCER1基因的缺失会导致精子染色质压缩缺陷和精子功能异常,从而影响男性生育能力[4]。PRM1基因和CCER1基因的相互作用表明,精子发生是一个复杂的过程,涉及多个基因和蛋白质的协调作用。

综上所述,PRM1基因在精子发生和成熟过程中起着关键作用,其突变或表达异常可能导致精子功能异常和男性不育症。研究表明,PRM1基因的表达和蛋白质丰度可以作为公牛生育能力的潜在标记物。在男性不育症患者中,PRM1基因的多态性和表达水平与精子发生缺陷和精子DNA碎片化相关。此外,PRM1基因还与其他基因相互作用,共同影响精子的发生和成熟。因此,PRM1基因的研究对于深入理解精子发生的分子机制和男性不育症的发病机制具有重要意义。

参考文献:
1. Pardede, Berlin Pandapotan, Agil, Muhammad, Karja, Ni Wayan Kurniani, Supriatna, Iman, Purwantara, Bambang. 2022. PRM1 Gene Expression and Its Protein Abundance in Frozen-Thawed Spermatozoa as Potential Fertility Markers in Breeding Bulls. In Veterinary sciences, 9, . doi:10.3390/vetsci9030111. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35324839/
2. Nasirshalal, Mahzad, Tahmasebi-Birgani, Maryam, Dadfar, Mohammadreza, Saberi, Alihossein, Ghandil, Pegah. 2020. Identification of the PRM1 gene mutations in oligoasthenoteratozoospermic men. In Andrologia, 52, e13872. doi:10.1111/and.13872. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33118225/
3. Şahin, Yavuz, Aslan, Elif Sibel, Aktuna, Süleyman, Baltacı, Volkan. . Evaluation of TNP1 and PRM1 gene expression in male infertility patients with low or high sperm DNA fragmentation. In Journal of the Turkish German Gynecological Association, 26, 7-14. doi:10.4274/jtgga.galenos.2024.2024-5-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40077949/
4. Qin, Dongdong, Gu, Yayun, Zhang, Yu, Wu, Xin, Hu, Zhibin. 2023. Phase-separated CCER1 coordinates the histone-to-protamine transition and male fertility. In Nature communications, 14, 8209. doi:10.1038/s41467-023-43480-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38081819/
5. He, Xiao-Jin, Ruan, Jian, Du, Wei-Dong, Cao, Yun-Xia, Zhang, Xue-Jun. 2012. PRM1 variant rs35576928 (Arg>Ser) is associated with defective spermatogenesis in the Chinese Han population. In Reproductive biomedicine online, 25, 627-34. doi:10.1016/j.rbmo.2012.09.005. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23079002/