Pck1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Pck1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-04181

品系全称

C57BL/6JCya-Pck1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-18534-Pck1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Pck1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-04181) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
AMPK信号通路
PI3K-Akt信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
phosphoenolpyruvate carboxykinase 1, cytosolic
基因别称
PEPCK,PEPCK-C,Pck-1
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_011044 | Ensembl: ENSMUST00000029017
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 4~5
敲除长度
~1.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:97501Mice homozygous for a null allele exhibit early postnatal lethality, decreased body fat, decreased glycogen levels in the liver, and altered blood chemistry.
PCK1,即磷酸烯醇丙酮酸羧激酶1,是糖异生途径中的一个关键酶,负责催化磷酸烯醇丙酮酸转化为草酰乙酸,从而在葡萄糖生成中发挥重要作用。PCK1的表达和活性受到多种因素的调控,包括激素、营养状况和细胞内信号通路等。在肝脏中,PCK1的表达受到胰岛素的负调控,而在饥饿状态下,PCK1的表达则会增加,以维持血糖水平。PCK1的活性也受到多种因素的调控,包括磷酸化、乙酰化和泛素化等。

PCK1的功能不仅限于糖异生,还参与其他重要的代谢过程。例如,PCK1可以磷酸化INSIG1/2蛋白,从而影响SREBP(固醇调节元件结合蛋白)的活化和脂质合成。此外,PCK1还参与调节线粒体核糖体的功能,影响糖尿病肾病的发生和发展。PCK1的表达和活性还与肿瘤的发生和发展有关,例如在肝细胞癌中,PCK1的表达下调与不良预后相关。

PCK1的失调与多种疾病的发生和发展有关,包括代谢相关脂肪性肝病(MAFLD)、糖尿病肾病、肝细胞癌和肥胖等。因此,PCK1是一个重要的治疗靶点,针对PCK1的治疗方法有望为这些疾病的治疗提供新的策略。

在代谢相关脂肪性肝病(MAFLD)中,PCK1的缺乏通过激活PI3K/AKT/PDGF轴促进疾病的发展。研究发现,肝脏PCK1缺陷的雄性小鼠在正常饮食下表现出肝脏脂质代谢紊乱和肝损伤,而在高脂肪饮食下,纤维化和炎症加剧。此外,PCK1缺乏还刺激了脂质基因的表达和脂质合成。PCK1缺乏还通过增加细胞内GTP水平激活RhoA/PI3K/AKT通路,增加血小板衍生生长因子-AA(PDGF-AA)的分泌,并促进肝星状细胞的活化。使用RhoA和AKT抑制剂或基因沉默RhoA或AKT1可以减轻MAFLD的进展。肝脏PCK1缺乏可能在雄性小鼠的肝脂肪变性和纤维化发展中发挥重要作用,通过旁分泌PDGF-AA,为MAFLD提供了一种潜在的治疗策略[1]。

在肝细胞癌中,PCK1的磷酸化可以激活SREBP,促进脂质合成和肿瘤细胞的增殖。研究发现,在人类肝细胞癌(HCC)细胞中,活化的AKT磷酸化细胞质PCK1,使其转移到内质网,并在那里使用GTP作为磷酸供体来磷酸化INSIG1和INSIG2。这种磷酸化减少了INSIG1和INSIG2与甾醇的结合,并破坏了INSIG蛋白和SCAP之间的相互作用,导致SCAP-SREBP复合物从内质网转移到高尔基体,激活SREBP蛋白(SREBP1或SREBP2),并转录下游脂质合成相关基因,促进肿瘤细胞的增殖和肿瘤的发生。此外,PCK1在Ser90、INSIG1在Ser207和INSIG2在Ser151的磷酸化与HCC患者样本中SREBP1的核积累呈正相关,并与HCC的不良预后相关。这些发现强调了PCK1蛋白激酶活性在激活SREBP、脂质合成和HCC发生中的重要性[2]。

在糖尿病肾病中,PCK1具有保护作用,可以抑制肾纤维化并维持线粒体核糖体的功能。研究发现,PCK1转基因小鼠的肾脏和线粒体核糖体功能得到保护,而PCK1基因敲除小鼠则表现出肾纤维化改变和线粒体核糖体缺陷。此外,PCK1的过表达可以减轻糖尿病小鼠的蛋白尿和肾小管细胞凋亡,而PCK1基因敲除小鼠则表现出蛋白尿加重、肾小管细胞凋亡和IV型胶原沉积。这些发现表明,PCK1在糖尿病肾病中具有保护作用,可能为理解糖尿病肾病的发病机制和提供新的治疗靶点提供重要线索[3]。

PCK1的失调与2型糖尿病和肥胖的发生和发展有关。研究发现,PCK1基因的突变可能导致脂肪组织中PCK1表达的改变,进而影响甘油三酯的生成和脂肪酸的储存和释放。此外,PCK1的突变还可能影响肝脏的糖异生,导致血糖水平升高。因此,PCK1可能是一个重要的候选基因,参与2型糖尿病和肥胖的发生和发展[4]。

Neddylation是一种后翻译修饰机制,可以影响PCK1的葡萄糖代谢活性。研究发现,在营养供应受限的情况下,小鼠肝脏中Neddylation水平升高,抑制Neddylation可以降低糖异生能力和对抗调节激素的高血糖作用。此外,2型糖尿病患者肝脏中的Neddylation水平升高。研究发现,禁食或限制卡路里摄入的小鼠会导致PCK1在三个赖氨酸残基(K278、K342和K387)上发生Neddylation。突变这些PCK1赖氨酸残基可以降低它们的糖异生活性。分子动力学模拟显示,PCK1的Neddylation可以将催化中心周围的两个环重新定位到一个开放配置,使催化中心更容易接近。这些研究表明,PCK1的Neddylation提供了一个精细调节的机制,通过将整体营养供应与代谢稳态联系起来来控制葡萄糖代谢[5]。

PCK1的失调还与记忆CD8+ T细胞的形成和维持有关。研究发现,CD8+记忆T细胞显著上调细胞质PCK1的表达,以通过糖异生增加糖原生成。随后,糖原被引导到糖原分解,生成葡萄糖-6-磷酸和随后的戊糖磷酸途径(PPP),产生丰富的NADPH,确保T细胞中还原型谷胱甘肽(GSH)的高水平。PCK1-糖原-PPP的消除降低了GSH/GSSG比值,并增加了活性氧(ROS)的水平,导致CD8+记忆T细胞形成和维持受损。重要的是,这种代谢调节机制可以轻松地转化为更有效的T细胞免疫疗法,用于小鼠肿瘤模型[6]。

胰岛素可以调节肝糖异生,维持正常的血糖水平。胰岛素通过多种信号通路来抑制肝糖异生,包括转录调控关键肝糖异生基因PCK1和G6PC。胰岛素信号通路受损时,如2型糖尿病中的胰岛素抵抗,胰岛素无法抑制肝糖异生,即使在进食状态下也是如此。因此,了解胰岛素调节的途径对于治疗目的至关重要[7]。

在肝脏缺血再灌注损伤中,PCK1的表达上调可以通过糖异生保护肝脏。研究发现,肝脏缺血再灌注损伤会导致PCK1的表达显著上调。高水平的PCK1与肝脏移植后的良好预后相关。此外,阻断糖异生会加剧肝脏缺血再灌注损伤,而PCK1的过表达则会减轻损伤。进一步的研究发现,甲基转移酶3介导的RNA N6-甲基腺苷(m6A)修饰有助于PCK1在肝脏缺血再灌注损伤中的上调。肝脏特异性敲除甲基转移酶3会通过减少PCK1 mRNA的m6A修饰和表达水平来恶化肝脏缺血再灌注损伤。因此,激活甲基转移酶3/m6A-PCK1-糖异生轴对于保护肝脏免受缺血再灌注损伤是必要的,为减轻肝脏手术中的肝脏缺血再灌注损伤提供了潜在的治疗方法[8]。

油茶是一种传统的茶饮料,可以改善2型糖尿病小鼠的血糖和血脂水平。研究发现,油茶处理可以降低空腹血糖和总胆固醇水平,并改善葡萄糖耐受性。此外,油茶处理组中PCK1的表达受到抑制,并且与空腹血糖水平显著相关。油茶诱导的抗糖尿病作用可能与PCK1的降低有关。此外,PCK1基因中的rs707555和rs2071023位点多态性与广西少数民族人群的2型糖尿病显著相关。这些发现表明,油茶通过下调PCK1改善血糖稳态,PCK1可能是治疗2型糖尿病的遗传标记[9]。

PCK1可以抑制肝细胞癌的肿瘤干性,并通过激活Hippo信号通路发挥作用。研究发现,PCK1可以抑制肝细胞癌细胞的自我更新能力,降低肿瘤干细胞标记物的mRNA水平,并抑制肿瘤发生。此外,PCK1增加了肝细胞癌细胞对索拉非尼的敏感性。进一步的研究发现,PCK1通过增强YAP的磷酸化和抑制其核转位来激活Hippo通路。维替波芬可以降低肝细胞癌细胞的干性,并增强索拉非尼的促凋亡作用。因此,维替波芬和索拉非尼的联合治疗可能是一种潜在的肝癌治疗策略[10]。

综上所述,PCK1在多种生物学过程中发挥重要作用,包括糖异生、脂质合成、线粒体核糖体功能和肿瘤发生等。PCK1的失调与多种疾病的发生和发展有关,包括代谢相关脂肪性肝病、糖尿病肾病、肝细胞癌和肥胖等。因此,PCK1是一个重要的治疗靶点,针对PCK1的治疗方法有望为这些疾病的治疗提供新的策略。

参考文献:
1. Ye, Qian, Liu, Yi, Zhang, Guiji, Huang, Ailong, Tang, Ni. 2023. Deficiency of gluconeogenic enzyme PCK1 promotes metabolic-associated fatty liver disease through PI3K/AKT/PDGF axis activation in male mice. In Nature communications, 14, 1402. doi:10.1038/s41467-023-37142-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36918564/
2. Xu, Daqian, Wang, Zheng, Xia, Yan, Hung, Mien-Chie, Lu, Zhimin. 2020. The gluconeogenic enzyme PCK1 phosphorylates INSIG1/2 for lipogenesis. In Nature, 580, 530-535. doi:10.1038/s41586-020-2183-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32322062/
3. Hasegawa, Kazuhiro, Sakamaki, Yusuke, Tamaki, Masanori, Wakino, Shu. 2023. PCK1 Protects against Mitoribosomal Defects in Diabetic Nephropathy in Mouse Models. In Journal of the American Society of Nephrology : JASN, 34, 1343-1365. doi:10.1681/ASN.0000000000000156. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37199399/
4. Beale, Elmus G, Hammer, Robert E, Antoine, Bénédicte, Forest, Claude. . Disregulated glyceroneogenesis: PCK1 as a candidate diabetes and obesity gene. In Trends in endocrinology and metabolism: TEM, 15, 129-35. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15046742/
5. Gonzalez-Rellan, María J, Fernández, Uxía, Parracho, Tamara, Martinez-Chantar, Maria L, Nogueiras, Ruben. 2023. Neddylation of phosphoenolpyruvate carboxykinase 1 controls glucose metabolism. In Cell metabolism, 35, 1630-1645.e5. doi:10.1016/j.cmet.2023.07.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37541251/
6. Ma, Ruihua, Ji, Tiantian, Zhang, Huafeng, Wan, Yonghong, Huang, Bo. 2017. A Pck1-directed glycogen metabolic program regulates formation and maintenance of memory CD8+ T cells. In Nature cell biology, 20, 21-27. doi:10.1038/s41556-017-0002-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29230018/
7. Hatting, Maximilian, Tavares, Clint D J, Sharabi, Kfir, Rines, Amy K, Puigserver, Pere. 2017. Insulin regulation of gluconeogenesis. In Annals of the New York Academy of Sciences, 1411, 21-35. doi:10.1111/nyas.13435. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28868790/
8. Yu, Shanshan, Liu, Xiao, Xu, Yan, Ge, Mian, Zhang, Qi. 2023. m 6 A-mediated gluconeogenic enzyme PCK1 upregulation protects against hepatic ischemia-reperfusion injury. In Hepatology (Baltimore, Md.), 81, 94-110. doi:10.1097/HEP.0000000000000716. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38085830/
9. Hu, Qiantu, Chen, Huafeng, Zuo, Yanli, Zhang, Haiying, Lin, Rui. 2019. Role of PCK1 gene on oil tea-induced glucose homeostasis and type 2 diabetes: an animal experiment and a case-control study. In Nutrition & metabolism, 16, 12. doi:10.1186/s12986-019-0337-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30805021/
10. Liu, Rui, Liu, Yi, Zhang, Wenlu, Tang, Ni, Wang, Kai. 2023. PCK1 attenuates tumor stemness via activating the Hippo signaling pathway in hepatocellular carcinoma. In Genes & diseases, 11, 101114. doi:10.1016/j.gendis.2023.101114. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38560500/