Aff1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Aff1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-03743

品系全称

C57BL/6JCya-Aff1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-17355-Aff1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Aff1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-03743) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
AF4/FMR2 family, member 1
基因别称
9630032B01Rik,Af4,Mllt2h,Rob
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_133919 | Ensembl: ENSMUST00000054979
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~1.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1100819Homozygotes for a targeted null mutation exhibit impaired B and T cell development. Heterozygotes for an ENU-induced mutation exhibit small size, ataxia, adult-onset Purkinje cell loss, cataracts, reduced survival, and low fertility.
AFF1,也称为AF4/FMR2家族成员1,是一种重要的转录因子,在细胞分化和发育过程中发挥关键作用。AFF1主要作为超延伸复合物(SEC)的核心支架蛋白,参与调控基因转录过程。SEC是一种多亚基复合物,包含RNA聚合酶II、转录延伸因子、染色质修饰酶等多种蛋白质,负责促进RNA聚合酶II在基因启动子附近的转录延伸。AFF1通过与SEC其他亚基的相互作用,调控RNA聚合酶II的C端结构域磷酸化,从而影响基因转录的速率和效率。

AFF1的异常表达与多种疾病的发生发展密切相关。例如,在急性淋巴细胞白血病(ALL)中,KMT2A基因与AFF1基因发生染色体易位,形成KMT2A-AFF1融合基因。KMT2A-AFF1融合蛋白通过直接结合和诱导关键基因的异常过表达,如抗凋亡因子BCL2和原癌基因MYC,驱动白血病的发生。此外,KMT2A-AFF1融合蛋白还通过间接诱导基因沉默等网络生成的调控输出,进一步影响细胞行为。

为了更好地理解KMT2A-AFF1驱动的调控景观,研究人员整合了染色质免疫沉淀测序(ChIP-seq)、患者RNA测序和CRISPR功能筛选等技术,构建了一个基因调控网络模型。该模型揭示了KMT2A-AFF1通过一系列转录因子,如RUNX1,调控下游目标基因的机制,包括正向反馈环(FFL)和级联调控模式。研究发现,KMT2A-AFF1和RUNX1形成的级联调控网络可以抑制CASP9基因的表达,而KMT2A-AFF1驱动的FFLs则通过组合转录因子活性调控BCL2和MYC的表达。这些发现表明,基因调控网络模型可以帮助我们更好地理解KMT2A-AFF1的行为及其在白血病发生发展中的作用[1]。

KMT2A基因是急性白血病中常见的染色体易位目标基因。KMT2A基因编码组蛋白赖氨酸特异性N-甲基转移酶2A,参与调控染色质的表观遗传修饰。KMT2A基因易位导致KMT2A融合蛋白的形成,如KMT2A-AFF1、MLLT1和MLLT3,这些融合蛋白通过调节表观遗传机制影响白血病的发生发展。KMT2A基因易位的存在是急性白血病不良预后的独立风险因素。在儿童ALL中,超过70%的新诊断病例为KMT2A易位型ALL。KMT2A易位型ALL具有高白细胞计数、中枢神经系统(CNS)受累、早期复发和预后不良等特点。目前,KMT2A基因易位型ALL的精确治疗策略仍在研究之中,未来可能需要考虑包括靶向免疫治疗在内的多种治疗手段,以提高患者的生存率[2]。

MLL基因重排导致的ALL,即MLL-r-ALL,在儿童和成人ALL中分别占10%和5%。MLL-r-ALL具有高白细胞计数、早期复发、CNS受累和预后不良等特点。MLL-r-ALL细胞对皮质类固醇和L-天冬酰胺酶治疗相对抵抗,但对阿糖胞苷化疗敏感。潜在的靶向治疗包括FLT3抑制剂、MEK抑制剂、HDAC抑制剂、BCL-2抑制剂、MCL-1抑制剂、蛋白酶体抑制剂、低甲基化剂、Dot1L抑制剂和CDK抑制剂等。MLL-r-ALL的研究有助于深入理解其发病机制、风险分层和治疗方法,为改善患者预后提供新的思路和策略[3]。

新生儿白血病是指在出生后28天内发生的白血病,其中大部分病例为先天性。新生儿白血病以急性髓系白血病(AML)为主,常表现为单核细胞/单核细胞特性。其他病例为急性淋巴细胞白血病(ALL),特别是B系ALL,但也有混合表型或浆细胞样树突状细胞肿瘤。新生儿白血病最常见的细胞遗传学/分子学异常是t(4;11)(q21.3;q23.3)/KMT2A-AFF1易位,其次是t(1;22)(p13.3;q13.1)/RBM15-MKL1易位和t(8;16)(p11.2;p13.3)/KAT6A-CREBBP易位。新生儿白血病的临床特征包括显著的肝脾肿大和高发病率皮肤受累,有时甚至在骨髓疾病缺乏的情况下。新生儿白血病的一个显著特征是部分病例可以自发缓解,特别是在t(8;16)易位的情况下。新生儿白血病的研究有助于我们更好地了解其临床、细胞遗传学和分子学特征,为临床治疗提供依据[4]。

KMT2A-AFF1融合基因是人类诱导多能干细胞(hiPSC)的一种模型,用于研究新生儿白血病的发病机制和风险评估。在该研究中,研究人员建立了一个携带KMT2A-AFF1融合基因的hiPSC细胞系,该细胞系具有同时诱导KMT2A-AFF1和EGFP表达的能力。该hiPSC细胞系可以作为一种强有力的模型,用于研究新生儿白血病的发病机制和风险评估[5]。

AFF1的乙酰化修饰在基因毒性应激反应中发挥重要作用。研究发现,在暴露于基因毒性试剂后,细胞会抑制转录以防止与修复机制发生碰撞,并建立适当的DNA损伤反应。AFF1的乙酰化修饰可以降低其与其他SEC成分的相互作用,并损害P-TEFb介导的RNA聚合酶II C端结构域磷酸化。在生理条件下,AFF1的乙酰化修饰是动态的,并与转录的全局下调密切相关。这些发现揭示了AFF1在基因毒性应激反应中的动态转录调控机制[6]。

在成人B细胞ALL中,基因组分类可以改善风险评估。研究发现,成人B细胞ALL的基因组亚型与其预后密切相关。DUX4重排、ETV6-RUNX1样、TCF3-PBX1、PAX5 P80R和高超二倍体等基因亚型与良好预后相关,而Ph样、KMT2A-AFF1、低超二倍体/近单倍体和BCL2/MYC重排等基因亚型与不良预后相关。此外,IKZF1和TP53基因的变异也与预后相关。这些发现表明,基因组分析在成人B细胞ALL的风险评估中具有重要意义,可能为未来的治疗提供新的思路和策略[7]。

环形RNA(circRNA)在白血病的发生发展中发挥重要作用。研究发现,在KMT2A-AFF1易位型ALL中,circRNA的表达发生异常,且大多数circRNA在白血病细胞中呈现异常表达。研究发现,circFKBP5、circKLHL2、circNR3C1和circPAN3等circRNA在KMT2A-AFF1 ALL中发挥致癌作用,其沉默可以影响细胞增殖和凋亡。此外,circAFF1在部分KMT2A-AFF1 ALL病例中表达上调,提示circRNA的表达上调是维持白血病细胞恶性表型的重要机制[8]。

AFF1在脂肪生成分化过程中发挥重要作用。研究发现,AFF1通过靶向TGM2基因的转录抑制脂肪生成分化。在hMSCs和3T3-L1前脂肪细胞中,AFF1的敲低可以增强脂肪生成分化,而AFF1的过表达则抑制脂肪生成分化。机制研究表明,AFF1结合TGM2基因的启动子区域并调控其转录。过表达TGM2可以挽救AFF1敲低细胞中的脂肪生成分化。这些发现表明,AFF1通过调控TGM2的转录抑制脂肪生成分化[9]。

转录延伸控制是缺氧反应的重要组成部分。研究发现,BRD4而非AFF1/4是缺氧应激反应所必需的CDK9复合物的组成部分。BRD4的C端区域对于PAF1C招募到缺氧反应基因上是必需的,而PAF1C的破坏可以损害缺氧诱导的BRD4介导的RNA聚合酶II释放。这些发现揭示了缺氧反应中转录延伸控制的潜在靶标机制[10]。

综上所述,AFF1作为一种重要的转录因子,在细胞分化和发育过程中发挥关键作用。AFF1的异常表达与多种疾病的发生发展密切相关,包括急性白血病、脂肪生成分化异常等。研究AFF1的功能及其在疾病中的作用,有助于我们深入理解基因转录调控的机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Harman, Joe R, Thorne, Ross, Jamilly, Max, Fulga, Tudor A, Milne, Thomas A. 2021. A KMT2A-AFF1 gene regulatory network highlights the role of core transcription factors and reveals the regulatory logic of key downstream target genes. In Genome research, 31, 1159-1173. doi:10.1101/gr.268490.120. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34088716/
2. Górecki, Mateusz, Kozioł, Ilona, Kopystecka, Agnieszka, Zawitkowska, Joanna, Lejman, Monika. 2023. Updates in KMT2A Gene Rearrangement in Pediatric Acute Lymphoblastic Leukemia. In Biomedicines, 11, . doi:10.3390/biomedicines11030821. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36979800/
3. El Chaer, Firas, Keng, Michael, Ballen, Karen K. . MLL-Rearranged Acute Lymphoblastic Leukemia. In Current hematologic malignancy reports, 15, 83-89. doi:10.1007/s11899-020-00582-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32350732/
4. Roberts, Irene, Fordham, Nicholas J, Rao, Anupama, Bain, Barbara J. 2018. Neonatal leukaemia. In British journal of haematology, 182, 170-184. doi:10.1111/bjh.15246. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29806701/
5. Takahashi, Masayuki. 2023. Generation of a human induced pluripotent stem cell line harboring the infant leukemia-associated fusion gene, KMT2A-AFF1 (IMSUTi002-A-2). In Stem cell research, 71, 103185. doi:10.1016/j.scr.2023.103185. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37639801/
6. Kumari, Nidhi, Hassan, M Abul, Lu, Xiangdong, Roeder, Robert G, Biswas, Debabrata. 2019. AFF1 acetylation by p300 temporally inhibits transcription during genotoxic stress response. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 116, 22140-22151. doi:10.1073/pnas.1907097116. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31611376/
7. Paietta, Elisabeth, Roberts, Kathryn G, Wang, Victoria, Mullighan, Charles G, Litzow, Mark R. . Molecular classification improves risk assessment in adult BCR-ABL1-negative B-ALL. In Blood, 138, 948-958. doi:10.1182/blood.2020010144. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33895809/
8. Tretti Parenzan, Caterina, Molin, Anna Dal, Longo, Giorgia, Bresolin, Silvia, Bortoluzzi, Stefania. . Functional relevance of circRNA aberrant expression in pediatric acute leukemia with KMT2A::AFF1 fusion. In Blood advances, 8, 1305-1319. doi:10.1182/bloodadvances.2023011291. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38029383/
9. Chen, Yaqian, Wang, Yuan, Lin, Weimin, Zhou, Chenchen, Yuan, Quan. 2020. AFF1 inhibits adipogenic differentiation via targeting TGM2 transcription. In Cell proliferation, 53, e12831. doi:10.1111/cpr.12831. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32441391/
10. Soliman, Shimaa Hassan AbdelAziz, Iwanaszko, Marta, Zheng, Bin, Chandel, Navdeep S, Shilatifard, Ali. 2024. Transcriptional elongation control of hypoxic response. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 121, e2321502121. doi:10.1073/pnas.2321502121. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38564636/