Mb-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Mb-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-03663

品系全称

C57BL/6JCya-Mbem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-17189-Mb-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Mb-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-03663) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
myoglobin
基因别称
-
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001164047.1 | Ensembl: ENSMUST00000169226
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96922Homozygotes for a null allele show increased cardiac capillary density, coronary flow, hemoglobin and hematocrit levels. Many mice homozygous for another null allele die of heart failure at midgestation; survivors show hypervascularity, altered NO metabolism, and hypoxia-induced cardiac dysfunction.
基因Mb是生物信息学中常用的单位,表示基因的长度,1Mb等于1百万碱基对。在基因组学研究中,基因Mb可以用来描述基因的大小、基因家族的大小、基因簇的大小等。基因Mb的长度可以反映基因的复杂性和功能,一般来说,基因Mb越长,其编码的蛋白质可能越复杂,功能也越多样化。

在植物中,疾病抗性基因类似物(RGAs)作为抗性(R)基因的候选基因,具有保守的结构域和基序,在病原体的抗性中发挥着特定的作用。RGAs可以基于其保守的结构特征,使用生物信息学工具进行检测。数千个RGAs已从测序的植物基因组中被鉴定出来。高密度的全基因组RGA遗传图谱对于设计诊断标记和鉴定与植物疾病抗性相关的数量性状位点(QTL)或标记是有用的[1]。

在动物中,例如小鼠的mb-1基因,编码与膜结合抗体相关的蛋白质,只在B细胞分化的早期阶段表达。EBF是一种在早期B细胞中表达的核因子,识别mb-1启动子,并在mb-1启动子的最大活性中起重要作用。EBF结合位点的特异性与其他在造血细胞中表达的核因子不同。EBF似乎代表了一个重要的转录调节因子,调节B细胞特异性基因表达[2]。

在植物中,NBS-LRR基因倾向于在簇中发现,这些簇是基因组变异的热点。在甜瓜中,1Mb区域包含的NBS-LRR基因簇密度最高,包含最高密度的R基因和存在/缺失基因多态性。这个区域已知包含Vat基因的位点,该基因对蚜虫具有抗性。由于存在重复,使得R基因簇的测序和注释变得困难,通常导致多间隙序列和高于平均错误率。通过结合Illumina配对端映射和基于PCR的间隙闭合策略,1Mb序列得到改进,未知的序列减少了70%,大约3000个SNPs和小插入/缺失得到了纠正。因此,该区域中18个NBS-LRR基因的注释被修改,包括额外的编码序列、氨基酸变化、剪接边界的纠正,或在共同转录单元中的ORF融合。R基因和其在其他葫芦科中的同源序列的系统发育分析表明,自葫芦科从其他科分化以来,以及通过科内的物种形成过程,已经发生了局部的基因扩增。基于与韩国甜瓜品种中报道的Vat基因的序列相似性,以及之前未在未精炼序列中存在的序列片段,提出了一个候选Vat基因。序列精炼策略使得甜瓜基因组中1Mb片段的显著改进成为可能,并重新注释了在甜瓜中发现的最大的NBS-LRR基因同源基因簇。簇的分析揭示了自葫芦科从其他近缘科分化以来,通过序列重复在相邻基因组位置产生了抗性基因,并且通过科内的物种形成过程也产生了候选Vat基因,这表明了在分析包含高度相似基因簇的复杂区域时,基因组组装改进的优势[3]。

在细菌中,例如产生青霉素的丝状真菌,四个染色体通过脉冲场凝胶电泳被解析。在产生青霉素的丝状真菌中,青霉素基因簇位于Penicillium notatum的染色体II(9.6Mb)和Penicillium chrysogenum的所有菌株的染色体I(10.4Mb)上。青霉素基因簇通过用pcbAB探针杂交定位。吡咯G基因被定位到Penicillium notatum的染色体I和所有Penicillium chrysogenum菌株的染色体II上,除了突变体AS-P-78,其中探针杂交到染色体III。这种高青霉素产生菌株似乎发生了主要的染色体重排。所有凝胶中观察到的快速移动的DNA带对应于线粒体DNA。总基因组大小计算为Penicillium notatum的32.1Mb和Penicillium chrysogenum菌株的34.1Mb[4]。

在绿藻中,例如衣藻,尽管它在植物科学中作为参考生物体,但完全缺乏来自密切相关物种的基因组资源。为了比较基因组分析,为三个单细胞C. reinhardtii亲属构建了高度连续和良好注释的基因组组装:Chlamydomonas incerta、Chlamydomonas schloesseri和更远缘的Edaphochlamys debaryana。这三个Chlamydomonas基因组在基因内容上高度同源,尽管C. incerta和C. schloesseri的组装(分别为129.2Mb和130.2Mb)比111.1Mb的C. reinhardtii基因组具有更多的重复。在C. reinhardtii中,主要的着丝粒重复被鉴定为与Zepp同源的LINE转座子,并推断着丝粒的位置和结构可能在C. incerta和C. schloesseri中是保守的。在这些Chlamydomonas物种的负交配型位点之间报告了广泛的重组,但基因转变有限。产生了一个八物种核心-Reinhardtinia全基因组对齐,用于识别C. reinhardtii注释中的数百个假阳性和缺失基因,以及在C. reinhardtii基因组中的>260,000个进化上保守的元素。总之,这些资源将使C. reinhardtii的比较基因组分析成为可能,显著扩展了这一新兴模型系统的分析工具包[5]。

在细菌中,例如Sinorhizobium meliloti,tRNA(arg)和engA基因位于pSymB质粒上,对生长至关重要。这些基因可以从pSymB中删除,当它们之前被整合到染色体上时。然而,在密切相关的菌株Sinorhizobium fredii NGR234中,tRNA(arg)和engA基因位于染色体上,在69kb的engA-tRNA(arg)-rmlC区域。这个区域包括bacA基因,该基因对S. meliloti和相关α-变形菌Brucella abortus在宿主-细菌相互作用期间的细胞内生存很重要。engA-tRNA(arg)-rmlC区域位于S. fredii染色体上的kdgK和dppF2(NGR_c24410)基因之间。共线性分析表明,kdgK和dppF2同源基因在15个测序的S. meliloti和Sinorhizobium medicae菌株的染色体上彼此相邻,而69kb的engA-tRNA(arg)-rmlC区域存在于pSymB等价质粒上。这和其他证据强烈表明,engA-tRNA(arg)-rmlC区域从一个共同的祖先转移到pSymB的前体中。据我们所知,这项工作代表了第一次实验证明在质粒上存在必需基因[6]。

在人类中,例如GPC5/GPC6基因簇,糖蛋白组成一类糖基磷脂酰肌醇锚定的肝素硫酸蛋白聚糖,可能在控制细胞分裂和生长调节中发挥作用。到目前为止,在脊椎动物中已知有六个成员(GPC1-6)。GPC5和GPC6基因簇在染色体区域13q32上的高分辨率4Mb BAC/PAC连续体被构建。连续体表明,与Xq26上的GPC3/GPC4基因一样,GPC5和GPC6呈串联排列。GPC5和GPC6都是非常大的基因,大小超过1Mb。GPC5的大小约为2Mb,将是迄今为止发现的第二大人类基因。13q和Xq上的长范围基因组织比较表明,这些染色体有几个同源区域。影响GPC3的突变和缺失与辛普森-戈尔比-贝赫梅尔过度生长综合征有关。GPC5和GPC6在19例体细胞过度生长患者中的突变分析未能发现这两种基因中的致病突变,但鉴定了几个编码区多态性[7]。

在寄生虫中,例如血吸虫,血吸虫是双性双生吸虫,携带一个大的(270Mb)基因组。了解这些寄生虫的基因组对于理解它们的生物学、耐药机制和抗原变异机制,这些机制决定了它们逃避宿主免疫系统的能力,非常重要。该评论将提供对血吸虫基因发现计划状态的更新,该计划是1992年创建的血吸虫基因组项目的一部分。该计划的主要目标之一是在试图寻找新的药物和疫苗开发目标的同时,发现和表征血吸虫曼森氏和日本血吸虫的新基因。血吸虫基因发现计划的成就是通过编目基因的数量来证明的,现在达到其基因组的15%至20%[8]。

在细菌中,例如链霉菌,通过比较在空间微尺度(毫米或厘米)分离的密切相关链霉菌个体的基因组,研究了水平基因转移在自然链霉菌种群分化中的作用范围和影响。结果显示,尽管这些同种菌株共享一个共同的祖先,但它们都具有显著不同的基因内容,表明存在大规模和快速的基因流动。菌株的附属基因组分布在从一到几百个基因的插入/缺失事件(indels)中。indels优先位于线性染色体的臂上(约12Mb),并似乎形成重组热点。其中一些indels包含生物合成基因簇(BGCs),其产物具有抑制能力,可能构成有利于细菌群体凝聚性的公共物品。此外,这些可变基因中相当大的一部分要么是质粒携带的,要么带有放线菌整合和接合元件(AICEs)的特征。我们提出,接合是链霉菌种群中indel流动和多样性的主要驱动因素[9]。

在真菌中,例如Urnula craterium,Urnula craterium(Schwein.)Fr.(1851)已在北美、欧洲和亚洲报道,并可能成为多种硬木物种的病原体。在这项研究中,我们研究了U. craterium的线粒体基因组。这种真菌的生物学和分类学研究较少,目前尚无任何Sarcosomataceae(Pezizales目)成员的线粒体基因组。U. craterium的完整线粒体基因组由43,9967bp组成,编码14个蛋白质编码基因、一套完整的tRNA和rRNA基因。线粒体基因组的一个新特征是存在一个单一的亚单位DNA聚合酶编码区域,该区域通常与线性 invertron型质粒相关。线粒体基因组可能为了解Pezizales成员中线粒体基因组在基因内容、顺序、移动元件和基因组大小方面的进化提供见解[10]。

综上所述,基因Mb是生物信息学中常用的单位,表示基因的长度。在植物、动物、细菌、真菌和人类中,基因Mb可以用来描述基因的大小、基因家族的大小、基因簇的大小等。基因Mb的长度可以反映基因的复杂性和功能,一般来说,基因Mb越长,其编码的蛋白质可能越复杂,功能也越多样化。通过比较基因组分析,可以揭示基因Mb在基因组中的分布、功能和进化机制,为生物信息学和基因组学研究提供重要的参考和依据。

参考文献:
1. Sekhwal, Manoj Kumar, Li, Pingchuan, Lam, Irene, Cloutier, Sylvie, You, Frank M. 2015. Disease Resistance Gene Analogs (RGAs) in Plants. In International journal of molecular sciences, 16, 19248-90. doi:10.3390/ijms160819248. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26287177/
2. Hagman, J, Travis, A, Grosschedl, R. . A novel lineage-specific nuclear factor regulates mb-1 gene transcription at the early stages of B cell differentiation. In The EMBO journal, 10, 3409-17. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1915300/
3. González, Víctor M, Aventín, Núria, Centeno, Emilio, Puigdomènech, Pere. 2014. Interspecific and intraspecific gene variability in a 1-Mb region containing the highest density of NBS-LRR genes found in the melon genome. In BMC genomics, 15, 1131. doi:10.1186/1471-2164-15-1131. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25523007/
4. Fierro, F, Gutiérrez, S, Díez, B, Martín, J F. . Resolution of four large chromosomes in penicillin-producing filamentous fungi: the penicillin gene cluster is located on chromosome II (9.6 Mb) in Penicillium notatum and chromosome I (10.4 Mb) in Penicillium chrysogenum. In Molecular & general genetics : MGG, 241, 573-8. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8264531/
5. Craig, Rory J, Hasan, Ahmed R, Ness, Rob W, Keightley, Peter D. . Comparative genomics of Chlamydomonas. In The Plant cell, 33, 1016-1041. doi:10.1093/plcell/koab026. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33793842/
6. diCenzo, George, Milunovic, Branislava, Cheng, Jiujun, Finan, Turlough M. 2012. The tRNAarg gene and engA are essential genes on the 1.7-Mb pSymB megaplasmid of Sinorhizobium meliloti and were translocated together from the chromosome in an ancestral strain. In Journal of bacteriology, 195, 202-12. doi:10.1128/JB.01758-12. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23123907/
7. Veugelers, M, De Cat, B, Delande, N, Fryns, J P, David, G. . A 4-Mb BAC/PAC contig and complete genomic structure of the GPC5/GPC6 gene cluster on chromosome 13q32. In Matrix biology : journal of the International Society for Matrix Biology, 20, 375-85. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11566272/
8. Franco, G R, Valadão, A F, Azevedo, V, Rabelo, E M. . The Schistosoma gene discovery program: state of the art. In International journal for parasitology, 30, 453-63. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10731568/
9. Tidjani, Abdoul-Razak, Lorenzi, Jean-Noël, Toussaint, Maxime, Bontemps, Cyril, Leblond, Pierre. 2019. Massive Gene Flux Drives Genome Diversity between Sympatric Streptomyces Conspecifics. In mBio, 10, . doi:10.1128/mBio.01533-19. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31481382/
10. Mukhopadhyay, Jigeesha, Wai, Alvan, Hutchison, Leonard J, Hausner, Georg. 2022. The mitogenome of Urnula craterium. In Canadian journal of microbiology, 68, 561-568. doi:10.1139/cjm-2022-0012. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35623096/