Ly6d-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Ly6d-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-03474

品系全称

C57BL/6JCya-Ly6dem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-17068-Ly6d-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ly6d-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-03474) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
lymphocyte antigen 6 family member D
基因别称
Ly-61,Ly61,Thb
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010742 | Ensembl: ENSMUST00000040404
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~1.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Ly6d,全称为淋巴细胞抗原6家族成员D,是一种细胞表面蛋白,主要在淋巴细胞中表达。Ly6d蛋白通过糖基磷脂酰肌醇锚定在细胞表面,其功能尚不明确,但研究表明它可能在细胞信号传导、细胞粘附和细胞迁移中发挥作用。Ly6d基因的表达与多种癌症的发生和发展有关,包括喉鳞状细胞癌、乳腺癌、结肠癌和前列腺癌等。

在喉鳞状细胞癌中,Ly6d基因的表达与化疗耐药性密切相关。研究发现,在喉鳞状细胞癌组织中,Ly6d基因的表达水平显著升高,并且与患者的病理分期、临床分期和淋巴结转移有关。此外,沉默Ly6d基因可以降低肿瘤细胞的粘附能力和对顺铂、5-氟尿嘧啶和紫杉醇的耐药性。这表明Ly6d基因可能作为喉鳞状细胞癌化疗耐药性的生物标志物和治疗靶点[1]。

在乳腺癌中,Ly6d基因的表达与YB-1和KLF5的表达呈正相关。YB-1是一种已知的致癌基因,而KLF5是一种转录因子,在基底层乳腺癌中发挥重要作用。研究表明,YB-1通过转录激活和稳定KLF5 mRNA的表达来增强KLF5的表达。此外,YB-1还可以与KLF5形成转录复合物,共同调节乳腺癌特异性基因KRT16和Ly6D的表达,从而促进癌细胞的增殖。因此,YB-1/KLF5/Ly6D轴可能是乳腺癌进展的关键分子轴,并可能成为乳腺癌的诊断标志物和治疗靶点[2]。

在衰老细胞中,Ly6d基因的表达也显著升高。研究发现,过表达Ly6d可以诱导衰老细胞形成空泡,而沉默Ly6d则抑制衰老细胞相关空泡的形成。进一步研究表明,Ly6d诱导的空泡来源于巨胞饮,这是一种特殊的内吞作用。此外,Src家族激酶和Ras被发现在Ly6d依赖的方式下被招募到膜脂筏上,并且抑制它们的活动会损害Ly6d诱导的巨胞饮。最后,通过在培养基中补充白蛋白来恢复由谷氨酰胺剥夺引起的衰老细胞存活率的降低,这一过程依赖于Ly6d。由于巨胞饮作为一种氨基酸供应途径,这些结果表明Ly6d介导的巨胞饮通过吸收细胞外营养来促进衰老细胞的存活[3]。

在非酒精性脂肪性肝炎(NASH)中,Ly6d基因的表达与肝纤维化相关。研究发现,FOSL2是Ly6d的上游转录因子,可以促进Ly6d的转录。FOSL2在NASH中高表达,并通过结合Ly6d的启动子来促进Ly6d的转录。沉默FOSL2可以显著抑制NASH相关的肝细胞焦亡,而Ly6d的过表达可以逆转这一现象。此外,NLRP3的特异性抑制可以显著减轻FOSL2/Ly6D轴介导的肝细胞焦亡。这些发现表明,FOSL2/Ly6D轴可能是NASH治疗的关键分子轴和潜在靶点[4]。

在结肠癌中,Ly6d基因的表达与化疗耐药性有关。研究发现,Ly6d基因的过表达可以促进结肠癌细胞对化疗药物的耐药性,而沉默Ly6d则可以消除这种耐药性。进一步研究表明,Wnt/β-catenin信号通路的激活在Ly6d介导的化疗耐药性中发挥重要作用。通过基因和药物抑制β-catenin可以减弱Ly6d过表达介导的化疗耐药性。此外,Ly6d过表达显著降低了miR-509-5p的表达,从而释放了其靶基因CTNNB1,激活Wnt/β-catenin信号通路,最终促进化疗耐药性。相反,miR-509-5p的过表达可以逆转Ly6d增强的β-catenin介导的化疗耐药性。此外,miR-509-5p的过表达还显著抑制了其他两个靶基因MDM2和FOXM1的表达。这些数据揭示了Ly6d/miR-509-5p/β-catenin在化疗耐药性中的关键作用,并为治疗难治性结肠癌提供了新的策略[5]。

在前列腺癌中,Ly6d基因的表达与去势抵抗性有关。研究发现,在前列腺癌细胞中,存在一种去势抵抗的细胞亚群,其具有双谱系基因表达模式。Ly6d被确定为去势抵抗的前列腺祖细胞的标记物,具有多能分化和丰富的类器官形成能力。谱系追踪进一步揭示,Ly6d+去势抵抗的腔上皮细胞可以产生Ly6d-腔上皮细胞。相比之下,在缺乏PTEN的腔上皮细胞中,Ly6d+细胞主要产生Ly6d+肿瘤细胞,导致高分级PIN病变。在患者活检样本中的基因表达分析表明,Ly6d的表达与早期疾病进展相关,包括进展为去势抵抗性前列腺癌。因此,Ly6d可能成为晚期前列腺癌的预后标记物[6]。

在胰腺导管腺癌(PDAC)中,Ly6d基因的表达与患者的临床结果相关。研究发现,PDAC组织中存在一种高增殖能力的细胞类型,称为Prol细胞,富含细胞周期和有丝分裂基因。Prol细胞的比例在PDAC中显著增加,并且与患者的总生存期和无进展生存期减少相关。此外,Prol细胞类型的标记基因在PDAC中上调,并与不良预后相关。进一步研究发现,突变型KRAS和TP53与Prol细胞的增加相关,并且这些细胞与PDAC中的免疫抑制和“冷”肿瘤微环境相关。因此,Prol细胞可能是影响PDAC患者预后的关键细胞类型,而Ly6d蛋白和mRNA的表达在PDAC中显著高于正常胰腺组织[7]。

在雌激素受体阳性乳腺癌中,Ly6d基因的表达与远处转移相关。研究发现,在雌激素受体阳性乳腺癌组织中,Ly6d基因的表达水平与患者的远处转移和预后不良相关。此外,Ly6d的表达与肿瘤分期、病理T因子和Ki67状态相关。这些结果表明,Ly6d可能成为雌激素受体阳性乳腺癌远处转移的潜在标志物[8]。

在B淋巴谱系中,Ly6d基因的表达与细胞的分化潜能相关。研究发现,Ly6d和RAG-1的表达分别反映了B淋巴谱系的进展,并且它们之间没有同步性或相互依赖性。缺乏Ly6d和RAG-1的Flt3+ CLP是分化程度最低的细胞,除了B细胞,它们还可以生成自然杀伤细胞和树突状细胞。相反,最近发现的Flt3+ Ly6D+ CLP子集具有RAG-1表达的历史,并且是B谱系限制性的。这些相对丰富且强大的CLP在急性体内雌激素升高后48小时内被耗尽,表明它们来自激素调节的前体。这种前体异质性和分化复杂性可能增加了对环境变化的反应灵活性。因此,Ly6d和RAG-1的表达是B淋巴谱系进展的重要里程碑事件[9]。

综上所述,Ly6d基因在多种癌症的发生和发展中发挥重要作用。Ly6d基因的表达与化疗耐药性、远处转移和细胞分化潜能相关。Ly6d基因可能作为多种癌症的诊断标志物和治疗靶点,为癌症的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Wang, Jue, Fan, Jiamin, Gao, Wei, Nan, Xinrong, Wang, BinQuan. 2020. LY6D as a Chemoresistance Marker Gene and Therapeutic Target for Laryngeal Squamous Cell Carcinoma. In Stem cells and development, 29, 774-785. doi:10.1089/scd.2019.0210. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32178572/
2. Jiang, Dewei, Qiu, Ting, Peng, Junjiang, Zhou, Zhongmei, Chen, Ceshi. 2022. YB-1 is a positive regulator of KLF5 transcription factor in basal-like breast cancer. In Cell death and differentiation, 29, 1283-1295. doi:10.1038/s41418-021-00920-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35022570/
3. Nagano, Taiki, Iwasaki, Tetsushi, Onishi, Kengo, Kikkawa, Ushio, Kamada, Shinji. 2020. LY6D-induced macropinocytosis as a survival mechanism of senescent cells. In The Journal of biological chemistry, 296, 100049. doi:10.1074/jbc.RA120.013500. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33168631/
4. Hu, Pei-Xin, Sheng, Mei-Yan, Liu, Yan-Ping, Zhang, Chun-Qing. 2022. FOSL2 deficiency delays nonalcoholic steatohepatitis progression by regulating LY6D-mediated NLRP3 activation. In Human cell, 35, 1752-1765. doi:10.1007/s13577-022-00760-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35930135/
5. Wang, Jue, Sheng, Nanning, Li, Ying, Nan, Xinrong, Fu, Rong. 2023. Ly6D facilitates chemoresistance in laryngeal squamous cell carcinoma through miR-509/β-catenin signaling pathway. In American journal of cancer research, 13, 2155-2171. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37293155/
6. Duan, Jinyue, Wang, Yi, Chen, Yuanyuan, Cong, Zhongyi, Su, Manman. 2023. Silencing LY6D Expression Inhibits Colon Cancer in Xenograft Mice and Regulates Colon Cancer Stem Cells' Proliferation, Stemness, Invasion, and Apoptosis via the MAPK Pathway. In Molecules (Basel, Switzerland), 28, . doi:10.3390/molecules28237776. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38067506/
7. Barros-Silva, João D, Linn, Douglas E, Steiner, Ivana, Li, Zhe, Baena, Esther. . Single-Cell Analysis Identifies LY6D as a Marker Linking Castration-Resistant Prostate Luminal Cells to Prostate Progenitors and Cancer. In Cell reports, 25, 3504-3518.e6. doi:10.1016/j.celrep.2018.11.069. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30566873/
8. Ye, Bicheng, Wang, Qi, Zhu, Xiaofeng, Chen, Ting, Xie, Jingen. 2023. Single-cell RNA sequencing identifies a novel proliferation cell type affecting clinical outcome of pancreatic ductal adenocarcinoma. In Frontiers in oncology, 13, 1236435. doi:10.3389/fonc.2023.1236435. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37601684/
9. Mayama, Akifumi, Takagi, Kiyoshi, Suzuki, Hiroyoshi, Sasano, Hironobu, Suzuki, Takashi. 2018. OLFM4, LY6D and S100A7 as potent markers for distant metastasis in estrogen receptor-positive breast carcinoma. In Cancer science, 109, 3350-3359. doi:10.1111/cas.13770. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30137688/