Krtap19-4-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Krtap19-4-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-03470

品系全称

C57BL/6JCya-Krtap19-4em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-170654-Krtap19-4-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Krtap19-4-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-03470) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
keratin associated protein 19-4
基因别称
Krtap16-4
染色体号
Chr 16 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_130873.1 | Ensembl: ENSMUST00000051103
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~791 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Krtap19-4是角蛋白相关蛋白19-4基因的缩写,属于一类与角蛋白结构相关的基因家族。角蛋白相关蛋白(KRTAPs)是一类小分子蛋白质,它们与角蛋白纤维形成复合体,增强角蛋白纤维的稳定性和强度。KRTAPs在皮肤、毛发和其他上皮组织的结构形成中起着重要作用。Krtap19-4在维持这些组织的结构和功能中扮演着关键角色,其异常表达或功能缺陷可能与多种疾病的发生发展有关。

角蛋白相关蛋白家族的成员在生物进化过程中通过基因复制和不对称进化产生了大量功能各异的新基因。这些基因在维持上皮组织的正常结构和功能中起着重要作用,同时也在疾病的发生发展中扮演着关键角色。例如,在乳腺癌中,BRCA1和BRCA2等高外显率基因已被证实与遗传性乳腺癌综合征相关。此外,DNA修复基因如CHEK2、ATM、BRIP1、PALB2和RAD51C等也与乳腺癌的发病风险相关[1]。基因组关联研究(GWAS)也揭示了许多与乳腺癌风险相关的低外显率基因位点。随着新一代测序技术的发展,越来越多的家族性乳腺癌基因将被纳入遗传检测中,以期为临床管理和治疗提供更全面的遗传信息。

基因工程和基因编辑技术为研究基因功能和调控机制提供了新的工具。通过构建和分析合成基因网络,研究人员可以预测和评估细胞过程的动力学,从而更好地理解基因与蛋白质之间的连接关系[2]。基因敲除技术是研究基因功能的重要手段,通过敲除目标基因,可以观察基因缺失对生物体的影响。然而,一些基因的缺失会导致生物体的死亡,这些基因被称为必需基因。研究发现,一些必需基因的致死性可以通过基因间的相互作用得到缓解,这种现象被称为“必需基因的绕过”[3]。

遗传增强子是一类能够增强基因表达的序列,它们可以增强基因的表型效应。增强子的分离和鉴定有助于发现基因之间的相互作用,包括基因冗余等现象。例如,在秀丽隐杆线虫中,已经发现了一些优势增强子和隐性增强子,这些增强子可以增强基因的表型效应,为研究基因功能提供了新的线索[4]。

基因调控网络是细胞内基因表达和调控的复杂系统,它决定了细胞分化和发育的命运。通过研究基因调控网络,可以揭示基因之间的相互作用和调控机制,从而更好地理解细胞行为的分子基础[5]。植物启动子数据库(PPDB)是一个基于网络的数据库,它提供了植物基因启动子的相关信息,包括启动子结构、转录起始位点和调控元件等。PPDB对于研究植物基因表达调控和功能具有重要意义[6]。

MHC(主要组织相容性复合体)基因的表达调控是一个复杂的过程,涉及多种转录因子和调控元件。通过研究MHC基因的调控机制,可以更好地理解免疫系统的功能和疾病的发生发展[7]。

基因转移技术在研究基因功能和疾病机制中具有重要意义。通过将外源基因转移到细胞中,可以研究基因的表达和功能。对于研究皮肤和黏膜生物学的研究者来说,基因转移方法需要高效且不会显著改变细胞的正常分化途径[8]。

候选基因分析是研究复杂疾病遗传机制的重要方法。通过分析候选基因的基因型和表型之间的关系,可以揭示基因在疾病发生发展中的作用。例如,酒精和醛脱氢酶基因的多态性与酒精依赖的易感性相关[9]。

综上所述,Krtap19-4作为角蛋白相关蛋白家族的一员,在维持上皮组织的结构和功能中起着重要作用。随着生物信息学和基因工程技术的发展,越来越多的基因功能和调控机制被揭示。这些研究成果为理解基因在疾病发生发展中的作用提供了新的思路和策略,为疾病的治疗和预防提供了新的可能性。

参考文献:
1. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
2. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
3. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
4. Herman, Robert K, Yochem, John. 2005. Genetic enhancers. In WormBook : the online review of C. elegans biology, , 1-11. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18023119/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Kusunoki, Kazutaka, Yamamoto, Yoshiharu Y. . Plant Promoter Database (PPDB). In Methods in molecular biology (Clifton, N.J.), 1533, 299-314. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27987179/
7. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/
8. Fenjves, E S. . Approaches to gene transfer in keratinocytes. In The Journal of investigative dermatology, 103, 70S-75S. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7963688/
9. Goldman, D. . Candidate genes in alcoholism. In Clinical neuroscience (New York, N.Y.), 3, 174-81. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8612062/