Lmnb1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Lmnb1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-03407

品系全称

C57BL/6JCya-Lmnb1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-16906-Lmnb1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Lmnb1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-03407) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
lamin B1
基因别称
-
染色体号
Chr 18 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010721 | Ensembl: ENSMUST00000025486
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96795Homozygous null mice display neonatal lethality with respiratory distress, abnormal lung, craniofacial, and skeletal morphology, reduced embryo size, impaired cellular proliferation and differentiation, and abnormal nuclear morphology.
Lmnb1,也称为Lamin B1,是一种重要的核骨架蛋白,是核纤层蛋白家族成员之一。核纤层蛋白是中间丝蛋白,主要位于核内膜表面,构成核纤层的主体。核纤层蛋白在维持核膜的结构和功能方面发挥着重要作用,参与调节染色质结构、核孔复合物的组装、核膜转运和细胞分裂等过程。

Lmnb1的表达和功能与多种生物学过程相关。例如,在细胞衰老过程中,Lmnb1的表达水平会下降。衰老细胞是一种不可逆地停止增殖的状态,常由基因毒性应激诱导。衰老细胞参与多种生理和病理条件,包括肿瘤抑制、胚胎发育、组织修复和生物体老化等。衰老程序的特征是DNA损伤应答信号、衰老相关β-半乳糖苷酶活性、细胞周期蛋白依赖性激酶抑制因子p16INK4A和p21CIP1的表达增加、多种生物活性因子的分泌增加(衰老相关分泌表型,SASP),以及Lamin B1的表达减少。衰老细胞中许多衰老相关标记物都是转录改变的结果,但衰老表型是可变的,缺乏明确识别衰老细胞的方法。

Lmnb1的突变或表达异常与多种疾病相关。例如,Lmnb1的突变或缺失与成人发病的脱髓鞘性脑白质营养不良(ADLD)有关。ADLD是一种罕见的遗传性疾病,与Lmnb1基因的重复(经典ADLD)或非编码缺失(非典型ADLD)相关。研究发现,患者即使携带整个Lmnb1基因的重复,也存在明显的临床变异性,从经典和非典型ADLD到无症状携带者。研究发现,经典ADLD患者总是携带TAD内的重复,导致简单的基因剂量增加。非典型ADLD是由LMNB1在前脑特异性错位表达引起的,这是由于TAD内缺失或重复引起的。TAD内的重复,尽管延伸到着丝粒并跨越了两个TAD边界,但并未引起ADLD。研究还发现,星形胶质细胞是ADLD病理过程中的关键参与者。研究揭示了与Lmnb1位点结构变异相关的3D基因组和TAD结构变化,并表明包含Lmnb1的重复本身不足以诊断ADLD,从而强烈影响了遗传咨询。研究支持打破TAD作为新兴的致病机制,在研究脑部疾病时应该考虑[1]。

Lmnb1的表达还与神经管缺陷(NTD)有关。NTD是一类由于神经褶未能完全闭合而导致的神经系统畸形。研究发现,Lmnb1的编码或失活突变尚未在人类疾病中被发现。然而,在鼠类中,Lmnb1的多态性已被证明可以改变NTD的风险。研究分析了来自英国、瑞典和美国239例NTD患者的样本中LMNB1的所有外显子,并分析了错义变异的可能功能效应。研究发现,在NTD患者中,存在两种独特的错义变异,预测这些变异会破坏蛋白质的结构/功能,并代表潜在的致病变异。荧光漂白丢失分析显示,A436T变异损害了Lamin B1在核纤层中的相互作用稳定性。人类NTD的遗传基础似乎非常复杂,可能涉及多个易感基因。研究假设LMNB1的罕见变异可能对NTD的易感性有贡献[2]。

Lmnb1的表达还与胶质瘤的增殖和迁移有关。研究发现,LMNB1的表达水平与不良的总体生存率和无病生存率相关。通过RNA干扰技术抑制LMNB1基因表达后,观察到肿瘤细胞生长受到显著抑制。LMNB1敲低细胞在G1和G2期细胞增多,S期细胞减少。此外,LMNB1敲低细胞还表现出凋亡增加。划痕愈合和Transwell迁移实验表明,LMNB1敲低细胞迁移率显著降低。磷酸化Akt1/2/3的水平以及PI3K、AKT和p-AKT蛋白的表达在LMNB1敲低组中降低。研究还建立了shLMNB1小鼠异种移植模型,以确定肿瘤生长的影响和侵袭程度。结果表明,LMNB1沉默显著降低了人类胶质瘤细胞的增殖,促进了肿瘤细胞的凋亡,阻碍了细胞周期的进展,并抑制了肿瘤细胞的迁移。研究还发现,LMNB1通过调节PI3K/Akt信号通路促进胶质瘤细胞的增殖。这些发现表明,LMNB1在胶质瘤进展中发挥着重要作用,可能成为胶质瘤诊断和预后应用的潜在临床指标,为药物开发提供了新的靶点[3]。

Lmnb1的表达还与前列腺癌的早期进展有关。前列腺癌是西方世界男性最常见的癌症。研究发现,LMNB1过表达细胞系的细胞增殖能力增强,但在软琼脂中不能形成集落,也不能在异种移植NOD/SCID小鼠模型中建立皮下生长或转移。此外,对143例前列腺癌患者的LMNB1免疫组化染色显示,随着Gleason评分的升高,LMNB1的染色强度也显著增强。单因素分析显示,病理分期、切缘状态和包膜外侵犯是生化复发的显著预测因素。然而,LMNB1染色与生化复发仅呈现非显著的趋势相关性。多因素分析显示,只有病理分期是生化复发显著的独立预测因素。综上所述,LMNB1可能在前列腺癌早期进展中发挥作用,而额外的分子改变可能需要赋予启动细胞完全恶性的潜力[4]。

Lmnb1的表达还与卵巢癌的增殖和转移有关。卵巢癌是妇科常见的恶性肿瘤。研究发现,LMNB1在卵巢癌中的表达水平显著高于正常组织,但其在肿瘤中的作用仍需全面研究。研究通过生物信息学方法、qRT-PCR、Western blot和免疫组化分析了卵巢癌中LMNB1的表达水平和临床相关性。为了探讨LMNB1对卵巢癌的影响和机制,研究在稳定的LMNB1敲低卵巢癌细胞中进行了小鼠异种移植研究、CCK8、集落形成、Edu掺入、划痕愈合、Transwell和流式细胞术分析,并进行了RNA-seq。结果显示,LMNB1过表达预示着卵巢癌的进展。LMNB1敲低通过抑制FGF1介导的PI3K-Akt信号通路抑制了卵巢癌细胞增殖和迁移。研究表明,LMNB1是卵巢癌的新的预后因子和潜在的治疗靶点[5]。

Lmnb1的表达还与多种癌症类型的发展有关。研究发现,LMNB1在大多数TCGA癌症类型的肿瘤组织中上调,并在肾透明细胞癌的临床标本中得到验证。高水平的LMNB1表达通常预示着肿瘤患者的不良总体生存率和无病生存率。研究发现,LMNB1水平与CD4+ Th2细胞浸润和DNA同源重组修复基因表达呈正相关。体外实验表明,LMNB1敲低与PARP抑制剂的联合治疗对前列腺癌具有协同作用。LMNB1是CD4+ Th2细胞浸润和DNA同源重组修复在人类癌症中的生物标志物。阻断LMNB1结合PARP抑制剂治疗可能是癌症患者的一种有前景的治疗策略[6]。

Lmnb1的过表达还会改变染色质组织结构和基因表达。研究发现,Lmnb1过表达导致外周异染色质重新分布到核质中的异染色质聚集。这些变化代表了通过不改变其他异染色质锚定蛋白或组蛋白翻译后修饰的机制,对外周异染色质在核膜上结合的干扰。研究还发现,Lmnb1过表达改变了基因表达。这些变化与不同水平的H3K9me3不相关,但显著数量的失调基因可能在Lmnb1过表达时远离核膜。研究还观察到,上调基因中富集了发育过程。这些基因中约74%在细胞类型中通常被抑制,表明Lmnb1过表达促进基因去抑制。这表明Lmnb1过表达对细胞命运有更广泛的影响,突出了维持Lmnb1适当水平的重要性[7]。

综上所述,Lmnb1是一种重要的核骨架蛋白,参与维持核膜的结构和功能,与多种生物学过程相关。Lmnb1的表达和功能异常与多种疾病相关,包括ADLD、NTD、胶质瘤、前列腺癌和卵巢癌等。Lmnb1可能成为这些疾病的诊断和预后应用的潜在临床指标,为药物开发提供新的靶点。此外,Lmnb1过表达还会改变染色质组织结构和基因表达,影响细胞命运。因此,Lmnb1的研究有助于深入理解核纤层蛋白的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Dimartino, Paola, Zadorozhna, Mariia, Yumiceba, Verónica, Spielmann, Malte, Giorgio, Elisa. 2024. Structural Variants at the LMNB1 Locus: Deciphering Pathomechanisms in Autosomal Dominant Adult-Onset Demyelinating Leukodystrophy. In Annals of neurology, 96, 855-870. doi:10.1002/ana.27038. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39078102/
2. Robinson, Alexis, Partridge, Darren, Malhas, Ashraf, Bassuk, Alexander G, Greene, Nicholas D E. 2013. Is LMNB1 a susceptibility gene for neural tube defects in humans? In Birth defects research. Part A, Clinical and molecular teratology, 97, 398-402. doi:10.1002/bdra.23141. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23733478/
3. Shi, Xiang-Cheng, Zhang, Ting, Li, Cheng, Wang, Jie, Qu, Chong-Xiao. 2024. Impact of Nuclear Peripheral Chromatin Lamin LMNB1 Gene in the Proliferation and Migration of Glioma Cells. In Neurochemical research, 50, 46. doi:10.1007/s11064-024-04298-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39636549/
4. Hong, Jian-Hua, Liang, Sung-Tzu, Wang, Alexander Sheng-Shin, Chen, Chung-Hsin, Pu, Yeong-Shiau. 2022. LMNB1, a potential marker for early prostate cancer progression. In American journal of cancer research, 12, 3390-3404. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35968338/
5. Dong, Jian, Ru, Yi, Zhai, Lianghao, Chen, Biliang, Lv, Xiaohui. 2023. LMNB1 deletion in ovarian cancer inhibits the proliferation and metastasis of tumor cells through PI3K/Akt pathway. In Experimental cell research, 426, 113573. doi:10.1016/j.yexcr.2023.113573. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37003558/
6. Qin, Haixiang, Lu, Yingqiang, Du, Lin, Zhao, Xiaozhi, Guo, Hongqian. 2022. Pan-cancer analysis identifies LMNB1 as a target to redress Th1/Th2 imbalance and enhance PARP inhibitor response in human cancers. In Cancer cell international, 22, 101. doi:10.1186/s12935-022-02467-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35241075/
7. Kaneshiro, Jeanae M, Capitanio, Juliana S, Hetzer, Martin W. . Lamin B1 overexpression alters chromatin organization and gene expression. In Nucleus (Austin, Tex.), 14, 2202548. doi:10.1080/19491034.2023.2202548. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37071033/