Idh1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Idh1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-03032

品系全称

C57BL/6JCya-Idh1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-15926-Idh1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Idh1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-03032) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
isocitrate dehydrogenase 1 (NADP+), soluble
基因别称
E030024J03Rik,Id-1,Idh-1,Idpc
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001111320 | Ensembl: ENSMUST00000169032
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96413Electrophoretic variation has been shown in tissues of liver, kidney, spleen and muscle. Strains C57BL/6, C3H/He carry the a allele; DBA/2 carries the b allele; M.m. castaneus and M.m. molossinus carry the c allele; the d allele is found at low frequencyin M. m. molossinus in Japan.
IDH1基因编码异柠檬酸脱氢酶1,这是一种在细胞能量代谢中发挥关键作用的酶。异柠檬酸脱氢酶1催化异柠檬酸转化为α-酮戊二酸,同时产生NADPH,这是细胞内重要的还原剂,参与多种生物合成过程和抗氧化反应。IDH1基因突变导致该酶的活性改变,进而影响细胞代谢和氧化还原状态,与多种肿瘤的发生发展密切相关。

最近的全基因组突变分析发现,在胶质母细胞瘤(WHO IV级胶质瘤)中,IDH1基因的体细胞突变存在于部分肿瘤中,尤其是在已知从低级别胶质瘤演变而来的肿瘤中。研究发现,超过70%的WHO II和III级星形细胞瘤和少突胶质细胞瘤以及从这些低级别病变发展而来的胶质母细胞瘤中存在影响IDH1第132位氨基酸的突变。没有IDH1突变的肿瘤通常具有影响IDH2基因中类似氨基酸(R172)的突变。具有IDH1或IDH2突变的肿瘤具有独特的遗传和临床特征,此类肿瘤患者的预后比具有野生型IDH基因的患者更好。每种测试的IDH1和IDH2突变都降低了编码蛋白的酶活性。IDH1和IDH2编码的NADP(+)-依赖性异柠檬酸脱氢酶的突变发生在多种类型的恶性胶质瘤中[1]。

分子研究表明,IDH1/2突变与ATRX和TP53突变共同定义了弥漫性星形细胞瘤,而IDH1/2突变与1p19q缺失共同定义了少突胶质瘤。受体酪氨酸激酶基因的局灶性扩增、TERT启动子突变以及染色体10和13的丢失和7号染色体的三体性是胶质母细胞瘤的特征性特征,可用于诊断[2]。

基因表达分析表明,IDH1突变是胶质瘤中最重要的遗传改变之一。IDH1突变在低级别胶质瘤(LGG)中导致约五分之一的基因表达差异,产生了独特的基因表达谱。一个基于六个基因的风险评分被建立起来,用于区分低风险和高风险的IDH1突变LGG病例,这些病例具有不同的预后。六个基因的评分是IDH1突变LGG的独立预后因素,其预测价值优于传统的临床病理因素。此外,还描述了GBM中与不同IDH1状态相关的差异表达模式,这与LGG中的模式相似。这表明IDH1突变的影响在组织学分类中是保守的。六个基因的评分对IDH1突变GBM也具有相同的预后价值。通过结合胶质瘤分级、IDH1状态和六个基因的评分,所有胶质瘤患者可以被分为六个亚组。这些亚组可以进一步总结为三个具有不同预后的集合。总的来说,在LGG和GBM中,与IDH1状态相关的基因表达谱被确定;基于六个基因的风险评分被开发出来,对IDH1突变LGG和GBM具有相同的预后价值。当与临床病理因素结合时,六个基因的评分是一种能够进行精确风险分层并改善临床管理的工具[3]。

IDH1和IDH2突变导致细胞产生2-羟基戊二酸(2HG),这是一种具有细胞毒性的代谢物,能够干扰细胞代谢和DNA损伤修复过程。IDH1和IDH2突变还与TET2基因突变相互排斥,TET2基因编码的α-酮戊二酸依赖性酶在DNA去甲基化过程中发挥重要作用。IDH1和IDH2突变通过产生2HG导致DNA高甲基化,进而抑制TET2的催化功能。此外,IDH1和IDH2突变还影响造血分化,增加干细胞/祖细胞标记物的表达,表明IDH1和IDH2突变具有促白血病发生的作用[4]。

IDH1基因突变通过激活Smad信号通路来调节细胞周期和生物节律基因的表达水平。IDH1 R132H突变可以降低胶质瘤细胞的增殖率。生物节律基因BMAL1和CLOCK在胶质瘤中异常表达。IDH1基因突变通过TGF-β/Smad信号通路改变细胞周期和生物节律基因的表达,影响胶质瘤的发生发展[5]。

IDH1野生型胶质瘤中,与杯状死亡相关的基因ATP7B的预后和免疫浸润相关。杯状死亡是一种新发现的细胞死亡形式,受铜依赖性线粒体呼吸调节。研究发现,IDH1野生型胶质瘤患者中,12个与杯状死亡相关的基因中有9个上调,其中6个基因与总生存期(OS)相关,5个基因与无进展生存期(PFS)相关。ATP7B被认为是独立的预后指标,其低表达水平与OS和PFS的缩短相关。此外,ATP7B下调与活化NK细胞、CD8+T细胞和M2巨噬细胞的浸润相关,与免疫检查点基因的高表达和肿瘤突变负荷(TMB)相关。在IDH1野生型胶质瘤组织中,高肿瘤等级伴随着ATP7B的低表达和PD-L1的高表达,与CD8+免疫细胞的浸润增加相关。ATP7B被认为是IDH1野生型胶质瘤患者的潜在预后指标和新的免疫治疗生物标志物[6]。

IDH1基因突变通过表观遗传调控P2RX7,影响细胞外囊泡的释放。IDH1突变在肝内胆管癌(ICC)中普遍存在,其中IDH1R132C是最常见的类型。IDH1R132C突变导致P2RX7和其他45个基因的表达下调,这些基因在IDH1R132C突变细胞中发生高甲基化。P2RX7可能通过细胞外囊泡相关的机制影响胆管癌的发生发展[7]。

PTEN基因的改变在IDH1野生型胶质母细胞瘤中与基因表达和基因甲基化无关。驱动基因的改变(DAs)在肿瘤发生发展中起着重要作用,它们通过致癌信号通路调节转录组、甲基化和蛋白质组。研究发现,在IDH1野生型胶质母细胞瘤中,PTEN基因的改变与其他11个常见驱动基因的改变不同,它们与任何差异表达基因(DEMs)或差异甲基化基因(DMGs)无关。PTEN基因的改变不受其他常见驱动基因改变的影响,也不受影响PTEN的DA类型的影响[8]。

综上所述,IDH1基因突变在多种肿瘤中发挥重要作用,包括胶质瘤和急性髓系白血病。IDH1基因突变通过影响细胞代谢、DNA甲基化和细胞周期等途径,促进肿瘤的发生发展。此外,IDH1基因突变还与肿瘤的预后和免疫浸润相关。IDH1基因的研究有助于深入理解肿瘤发生发展的分子机制,为肿瘤的诊断和治疗提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Yan, Hai, Parsons, D Williams, Jin, Genglin, Vogelstein, Bert, Bigner, Darell D. . IDH1 and IDH2 mutations in gliomas. In The New England journal of medicine, 360, 765-73. doi:10.1056/NEJMoa0808710. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19228619/
2. Galbraith, Kristyn, Snuderl, Matija. 2021. Molecular Pathology of Gliomas. In Surgical pathology clinics, 14, 379-386. doi:10.1016/j.path.2021.05.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34373090/
3. Cheng, Wen, Ren, Xiufang, Zhang, Chuanbao, Han, Sheng, Wu, Anhua. 2016. Gene Expression Profiling Stratifies IDH1-Mutant Glioma with Distinct Prognoses. In Molecular neurobiology, 54, 5996-6005. doi:10.1007/s12035-016-0150-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27696222/
4. Figueroa, Maria E, Abdel-Wahab, Omar, Lu, Chao, Levine, Ross L, Melnick, Ari. 2010. Leukemic IDH1 and IDH2 mutations result in a hypermethylation phenotype, disrupt TET2 function, and impair hematopoietic differentiation. In Cancer cell, 18, 553-67. doi:10.1016/j.ccr.2010.11.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21130701/
5. Gao, Yongying, Wu, Yanwei, Zhang, Ningmei, Hou, Shaozhang, Cao, Xiangmei. 2021. IDH1 gene mutation activates Smad signaling molecules to regulate the expression levels of cell cycle and biological rhythm genes in human glioma U87‑MG cells. In Molecular medicine reports, 23, . doi:10.3892/mmr.2021.11993. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33760141/
6. Zhang, Kun, Qu, Chunhui, Zhou, Peijun, Yang, Zezi, Wu, Xia. 2024. Integrative analysis of the cuproptosis-related gene ATP7B in the prognosis and immune infiltration of IDH1 wild-type glioma. In Gene, 905, 148220. doi:10.1016/j.gene.2024.148220. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38286269/
7. Zhang, Xing, Miao, Runchen, Liu, Tian, Qu, Kai, Liu, Chang. 2019. IDH1 as a frequently mutated gene has potential effect on exosomes releasement by epigenetically regulating P2RX7 in intrahepatic cholangiocarcinoma. In Biomedicine & pharmacotherapy = Biomedecine & pharmacotherapie, 113, 108774. doi:10.1016/j.biopha.2019.108774. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30889491/
8. Mallik, Mrinmay Kumar, Majumdar, Kaushik, Mujtaba, Shiraz. 2023. Non-Association of Driver Alterations in PTEN with Differential Gene Expression and Gene Methylation in IDH1 Wildtype Glioblastomas. In Brain sciences, 13, . doi:10.3390/brainsci13020186. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36831729/