Hgf-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Hgf-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-02883

品系全称

C57BL/6JCya-Hgfem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-15234-Hgf-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Hgf-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-02883) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
MAPK信号通路
PI3K-Akt信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
hepatocyte growth factor
基因别称
C230052L06Rik,HGF/SF,NK1,NK2,SF,SF/HGF
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010427 | Ensembl: ENSMUST00000199581
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 5
敲除长度
~1.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96079Homozygotes for targeted null mutations exhibit reduced embryonic livers, impaired migration of dermomyotome precursors affecting skeletal muscle formation, defective navigation of hypoglossal motor axons, abnormal placentas, and prenatal lethality.
HGF,也称为肝细胞生长因子(Hepatocyte Growth Factor),是一种重要的蛋白质,它对细胞的生长、迁移和形态发生具有调节作用。HGF最初是从部分肝切除大鼠的血清中分离出来,作为成熟肝细胞的强效有丝分裂原而为人所知。它是一种由69 kDa的α亚基和34 kDa的β亚基组成的二硫键连接的异源二聚体分子。人类HGF基因位于第7号染色体的7q11.1-21区域,由18个外显子和17个内含子组成,跨越约70 kb。HGF的α亚基包含四个kringle结构域,而β亚基类似于丝氨酸蛋白酶,但没有蛋白酶活性的证据。HGF与其受体c-met原癌基因产物结合,在细胞增殖、迁移和形态发生等方面发挥作用[1]。

HGF和其受体HGFR(c-met原癌基因产物)的表达对许多组织和器官的正常生长和发育至关重要。HGF mRNA主要在间质细胞中表达,而其受体则主要在上皮细胞中表达。这种HGF和HGFR基因表达的独特模式,加上HGF对其靶细胞的独特生物学效应,表明HGF可能是长期以来一直寻找的介导上皮和间质组织之间细胞通讯的介质。HGF和HGFR基因的表达在多种人类癌症中是不受调节的,因此,了解控制HGF和HGFR基因表达的机制具有很大的临床意义。研究表明,HGF和HGFR基因的表达是可诱导的,并且分别由来自类固醇激素和细胞因子(如IL-1、IL-6和TNFα)的外部信号在间质和上皮细胞中协调表达[2]。

为了研究HGF基因中的有害非同义单核苷酸多态性(nsSNPs),研究人员使用了多种生物信息学工具和计算机模拟方法。这些工具包括SIFT、SNP&GO和PolyPhen2等,用于区分有害nsSNPs和中和nsSNPs。此外,还通过I-Mutant、MUpro和iStable等工具分析了蛋白质稳定性。通过MutPred2、Maestro、DUET等工具预测了功能性和结构性的影响。研究结果表明,在392个HGF基因的错义nsSNPs中,有五个(D358G、G648R、I550N、N175S和R220Q)是最有害的。基因-基因相互作用和蛋白质-蛋白质相互作用网络分析表明,HGF与其他基因存在相互作用,并在多种通路和共表达中发挥重要作用[3]。

在巴基斯坦人群中,HGF基因是导致非综合征性常染色体隐性听力丧失(HL)的五个最常见基因之一。在321个巴基斯坦家庭中,研究者通过全基因组基因分型、Sanger测序和全外显子测序,在41个已报道的HL基因中鉴定了163个DNA变异。其中70个(42.9%)变异在29个基因中是新颖的。与预期一致,大多数受影响的个体(94.4%)是HL相关变异的纯合子,而其他变异则为复合杂合子。这项研究为巴基斯坦家庭中HL的遗传病因学提供了资料,这将有助于开发更有效的遗传诊断工具,进行准确的遗传咨询,并指导未来的基因治疗[4]。

HGF-SF(肝细胞生长因子-干细胞因子)的基因表达和调节研究表明,HGF-SF基因的表达模式在不同组织和细胞系中存在差异。替代使用剪接位点和加工/多腺苷酸化位点的选择性剪接产生了多种人类HGF-SF mRNA。这种替代mRNA的产生可能以组织特异性方式受到调节。HGF-SF基因在肝脏再生过程中被激活,并且在肝毒素处理后,肝脏、脾脏和肺中的mRNA水平显著增加。人类HGF-SF基因的启动子和5'-侧翼区域存在IL6反应元件和NF-IL6结合元件,这些元件可能参与基因在肝脏损伤后的激活。HGF-SF的自主分泌在获得改变的表型中起潜在的自分泌作用,将HGF-SF基因引入HGF-SF的靶细胞中会导致细胞特性从亲本类型转变为通过添加外源性因子获得的类型[5]。

全球基因研究揭示了结构连接组的遗传结构。通过对26,333名英国生物银行参与者的扩散磁共振成像轨迹图分析,研究者进行了全基因组关联研究,涉及206个结构连接测量值,每个测量值代表皮质网络对之间、皮质下结构或皮质半球内髓鞘化连接的密度。研究者在Bonferroni校正后识别出30个独立的基因组显著变异(126个名义上的全基因组显著变异),这些变异涉及髓鞘化、轴突延长和引导、神经细胞增殖和分化、神经迁移、细胞骨架组织和脑金属运输等基因。这些变异与结构连接具有四种广泛的关联模式:一些与皮质丘脑连接、半球间连接或两者都有关联,而其他变异则更为空间弥散。结构连接测量值具有高度的多基因性,每个测量值的常见变异中估计有9.1%具有非零效应,并表现出负选择特征的迹象。结构连接测量值与多种神经精神疾病和认知特征之间存在显著的遗传相关性,表明改变连接的变异倾向于影响脑健康和认知功能。遗传力在成人少突胶质细胞中(以及小胶质细胞、抑制性神经元和星形胶质细胞)以及多种胎儿细胞类型中增加的染色质可及性区域中富集,表明结构连接的遗传控制部分是通过影响髓鞘化和早期脑发育来实现的。结果表明,结构连接的遗传控制是普遍的、多效的,并且具有空间结构,通过多种神经发育途径实现,这支持了这种遗传控制对健康脑功能的相关性[6]。

基因表达分析发现NTNG1和HGF是糖尿病肾病(DKD)的生物标志物。在DKD中,HGF和NTNG1可能作为诊断生物标志物使用。这些发现为DKD的发病机制和进展提供了新的见解,并可能为DKD的诊断和治疗提供新的策略[7]。

在新生小鼠心脏中,HGF/Met的激活基因表达谱分析显示,HGF控制着不同细胞类型(包括心脏细胞)的生长和分化。HGF的表达导致249个转录本的表达水平显著改变,其中包括210个上调和39个下调的基因。基因本体论(GO)注释分析表明,HGF调节的转录本在代谢功能方面富集,包括蛋白质翻译、囊泡介导的运输、转录调控和肌肉发育调控。HGF正调控MyocD(一种心脏基因表达的激活剂)和Hdac5(一种心脏生长的抑制剂),这揭示了HGF在调节与心脏发生相关的信号通路激活或抑制中的新作用[8]。

HGF、EGF和地塞米松在肝器官培养物形成组织过程中的基因表达模式显示,这些分子在肝生物学中发挥着重要作用。它们对于在复杂的器官培养物中形成具有特定组织学的组织至关重要。地塞米松抑制生长并诱导肝细胞成熟;HGF和EGF对于形成非上皮元素是必需的。所有三种分子对于形成胆管上皮都是必需的。这些分子通过不同的基因表达模式介导其效应,这些模式影响许多基因家族。地塞米松诱导HNF4和C/EBPα的表达,这些是肝细胞分化的必需转录因子。它通过抑制与生长相关的多种分子来抑制肝细胞生长。HGF和EGF诱导TGF-β家族的所有成员。它们还诱导多个CNS相关基因,可能与星形细胞有关。地塞米松、HGF和EGF都诱导HNF6-β的表达,这与胆管上皮的形成有关。三种分子的联合添加与成熟的组织学有关,其中肝细胞和胆管谱系是分开的,HNF4仅表达在肝细胞核中。这些结果表明,地塞米松、HGF和EGF通过不同的基因表达改变其效应,突出了器官培养物在生成有关组织发生的信息方面的有用性,这些信息无法通过其他培养或全动物模型获得[9]。

HGF基因在结直肠癌细胞中的激活与基因组不稳定性相关,导致其对坏死性凋亡的抵抗。在结直肠癌细胞系中,HGF基因启动子的调节脱氧腺苷酸三联体元件(DATE)的截断导致了HGF的表达激活,并通过MET受体进行自分泌信号传递。这促进了细胞增殖和抵抗坏死性凋亡。HGF通过MET受体的信号传递减少了受体相互作用丝氨酸-苏氨酸激酶1的水平,这是一种坏死性凋亡的介体。肿瘤组织中HGF蛋白的高水平与受体相互作用丝氨酸-苏氨酸激酶1的低水平和患者的较短生存时间相关。DATE的改变可能被用作预后因素,或用于选择接受针对HGF-MET信号传导的治疗的患者[10]。

综上所述,HGF是一种重要的生长因子,在细胞增殖、迁移和形态发生中发挥关键作用。它在多种生物学过程中发挥作用,包括肝脏再生、器官形成和疾病发展。HGF基因的表达和调节受到多种因素的影响,包括细胞因子、激素和基因组不稳定性。此外,HGF还与多种疾病的发生和发展有关,包括癌症、糖尿病肾病和听力丧失。HGF的研究有助于我们更好地理解细胞通讯和疾病发生的机制,为开发新的治疗方法提供基础。

参考文献:
1. Mizuno, K, Nakamura, T. . Molecular characteristics of HGF and the gene, and its biochemical aspects. In EXS, 65, 1-29. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8422543/
2. Zarnegar, R. . Regulation of HGF and HGFR gene expression. In EXS, 74, 33-49. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8527900/
3. Hoda, Anila, Lika Çekani, Mirela, Kolaneci, Valbona. 2023. Identification of deleterious nsSNPs in human HGF gene: in silico approach. In Journal of biomolecular structure & dynamics, 41, 11889-11903. doi:10.1080/07391102.2022.2164060. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36598356/
4. Richard, Elodie M, Santos-Cortez, Regie Lyn P, Faridi, Rabia, Leal, Suzanne M, Riazuddin, Saima. 2018. Global genetic insight contributed by consanguineous Pakistani families segregating hearing loss. In Human mutation, 40, 53-72. doi:10.1002/humu.23666. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30303587/
5. Kitamura, N, Miyazawa, K, Uehara, Y, Okigaki, M, Kitamura, A. . Gene expression and regulation of HGF-SF. In EXS, 65, 49-65. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8422549/
6. Wainberg, Michael, Forde, Natalie J, Mansour, Salim, Hawco, Colin, Tripathy, Shreejoy J. 2024. Genetic architecture of the structural connectome. In Nature communications, 15, 1962. doi:10.1038/s41467-024-46023-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38438384/
7. Tang, Yun-Liang, Dong, Xiao-Yang, Zeng, Zhen-Guo, Feng, Zhen. . Gene expression-based analysis identified NTNG1 and HGF as biomarkers for diabetic kidney disease. In Medicine, 99, e18596. doi:10.1097/MD.0000000000018596. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31895808/
8. Gatti, Stefano, Leo, Christian, Gallo, Simona, Medico, Enzo, Crepaldi, Tiziana. 2012. Gene expression profiling of HGF/Met activation in neonatal mouse heart. In Transgenic research, 22, 579-93. doi:10.1007/s11248-012-9667-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23224784/
9. Michalopoulos, George K, Bowen, William C, Mulè, Karen, Luo, Jianhua. . HGF-, EGF-, and dexamethasone-induced gene expression patterns during formation of tissue in hepatic organoid cultures. In Gene expression, 11, 55-75. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12837037/
10. Seneviratne, Danushka, Ma, Jihong, Tan, Xinping, DeFrances, Marie C, Zarnegar, Reza. 2014. Genomic instability causes HGF gene activation in colon cancer cells, promoting their resistance to necroptosis. In Gastroenterology, 148, 181-191.e17. doi:10.1053/j.gastro.2014.09.019. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25244939/