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Hc-flox 基因敲除小鼠

Hc-flox 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Hc-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-02840

品系全称

C57BL/6JCya-Hcem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-15139-Hc-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明： Hc-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-02840) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
hemolytic complement
基因别称
C5，C5a，He，Hfib2
染色体号
Chr 2 (Mouse)
NCBI ID
转录本 ID
NCBI: NM_010406 | Ensembl: ENSMUST00000028233
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 4~5
敲除长度
~1.5 kb
下载方案
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96031Macrophage from mice homozygous for disruptions of this gene do not secrete complement C5. The 2 bp deletion found in A/J and AKR/J strains is associated with susceptibility to allergen-induced bronchial hyperresponsiveness and is a candidate for QTL Abhr2.
更多信息
基因Hc是鸟类免疫球蛋白重链（Heavy Chain）基因的缩写。免疫球蛋白，也称为抗体，是免疫系统的重要组成部分，负责识别和中和病原体。鸟类免疫球蛋白基因的重链由一个功能性可变基因和一系列上游的非功能性假基因组成。在B细胞发育过程中，功能性可变基因通过基因转换（Gene Conversion）过程被来自假基因的序列所取代，这种基因转换是一种同源重组（Homologous Recombination，HR）的形式。此外，点突变也导致功能性可变基因发生体细胞超突变（Somatic Hypermutation，SHM），进而增加免疫球蛋白的多样性[5]。

在非临床环境中，如空气、飞机废水、迁徙鸟类的粪便和海洋区域，也发现了抗生素抗性细菌，这提示抗生素抗性基因（ARGs）的传播不仅仅局限于医院和农场等频繁使用抗生素的环境[1]。研究表明，质粒和噬菌体在水平基因转移过程中发挥作用，促进了ARGs的传播。此外，还发现了新的机制增强了抗生素抗性，并探讨了多药耐药性的进化背景，为控制或减少抗生素抗性的发生和传播提供了新的思路[1]。

为了建立嵌合抗原受体（CAR）T细胞，通常使用慢病毒载体进行基因转移。慢病毒载体可以转导分裂和非分裂细胞，被认为安全且能提供长期转基因表达，因为整合的病毒基因组，即前病毒，会传递给子代细胞[2]。慢病毒载体已成功用于修饰造血干细胞，恢复免疫功能或纠正血红蛋白缺陷等[2]。

在鸟类中，免疫球蛋白基因的多样性是通过基因转换和体细胞超突变来实现的。与人类和鼠类免疫球蛋白基因的V(D)J重组不同，鸟类免疫球蛋白基因只拥有一个功能性可变基因。基因转换过程中，功能性可变基因被假基因的序列所取代，从而增加了免疫球蛋白的多样性。同时，体细胞超突变导致功能性可变基因发生点突变，进一步增加了免疫球蛋白的多样性[5]。

植物病毒会进化出RNA沉默抑制因子（RSSs），以干扰细胞中的RNA沉默机制。例如，在烟草中，来自Potyviral基因组中的辅助成分-蛋白酶（HC-Pro）是一种RSSs。HC-Pro的过表达会导致植物生长速率和叶片及花形态的明显变化。在HC-Pro表达的转基因烟草中，叶和花中有748和332个基因的表达水平发生了显著变化。这些转录组改变与植物感染ssRNA病毒时观察到的改变相似。特别是，许多与防御相关和激素响应基因（如乙烯响应转录因子1，ERF1）的表达在这些植物中发生了差异调节。此外，与细胞壁修饰、蛋白质加工、转录调控和光合作用相关的基因的表达也发生了显著变化[3]。

为了更好地理解和研究基因Hc，研究人员已经开发出了基于CRISPR/Cas9技术的基因编辑工具。例如，通过使用碱基编辑器，可以在单个步骤中生成肿瘤模型。这些工具为研究基因Hc的功能和调控机制提供了新的手段，有助于深入了解基因Hc在疾病发生和发展中的作用[4]。

综上所述，基因Hc在鸟类免疫系统中发挥重要作用，其多样性的产生是通过基因转换和体细胞超突变来实现的。此外，慢病毒载体和CRISPR/Cas9技术等基因编辑工具为研究基因Hc的功能和调控机制提供了新的手段。通过深入研究基因Hc，有助于我们更好地理解免疫系统的运作机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略[1][2][3][4][5]。

参考文献：
1. Jian, Zonghui, Zeng, Li, Xu, Taojie, Jia, Junjing, Dou, Tengfei. 2021. Antibiotic resistance genes in bacteria: Occurrence, spread, and control. In Journal of basic microbiology, 61, 1049-1070. doi:10.1002/jobm.202100201. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34651331/
2. Lana, Marlous G, Strauss, Bryan E. . Production of Lentivirus for the Establishment of CAR-T Cells. In Methods in molecular biology (Clifton, N.J.), 2086, 61-67. doi:10.1007/978-1-0716-0146-4_4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31707667/
3. Soitamo, Arto J, Jada, Balaji, Lehto, Kirsi. 2011. HC-Pro silencing suppressor significantly alters the gene expression profile in tobacco leaves and flowers. In BMC plant biology, 11, 68. doi:10.1186/1471-2229-11-68. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21507209/
4. Geurts, Maarten H, Gandhi, Shashank, Boretto, Matteo G, van Boxtel, Ruben, Clevers, Hans. 2023. One-step generation of tumor models by base editor multiplexing in adult stem cell-derived organoids. In Nature communications, 14, 4998. doi:10.1038/s41467-023-40701-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37591832/
5. Seo, Hidetaka, Hirota, Kouji, Ohta, Kunihiro. 2024. Molecular mechanisms of avian immunoglobulin gene diversification and prospect for industrial applications. In Frontiers in immunology, 15, 1453833. doi:10.3389/fimmu.2024.1453833. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39346918/

资料下载

S-CKO-02840_6J_15139_Hc_Exon 4~5_strategy.pdf
S-CKO-02840_6J_15139_Hc_Exon 4~5_strategy.pdf
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