Gstm6-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Gstm6-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-02781

品系全称

C57BL/6JCya-Gstm6em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-14867-Gstm6-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Gstm6-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-02781) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
glutathione S-transferase, mu 6
基因别称
-
染色体号
Chr 3 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001379506.1 | Ensembl: ENSMUST00000106684
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3~5
敲除长度
~1123 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Gstm6,也称为Glutathione S-transferase Mu 6,是一种编码谷胱甘肽S转移酶的基因。谷胱甘肽S转移酶是一类重要的多功能酶,参与细胞内的抗氧化应激反应,保护组织免受有害和致癌化合物的损害。Gstm6在生殖系统、肝脏、肠道等多种组织中表达,并且在不同物种中显示出性别差异的表达模式。

在生殖系统发育过程中,Gstm6的表达与男性性腺发育密切相关。研究发现,在雄性小鼠的胎儿性腺中,Gstm6的表达水平显著高于雌性性腺。在成年小鼠中,Gstm6主要在睾丸中表达,与支持细胞系相关。此外,Gstm6的表达还受到男性性别决定基因Sox9的调控,表明Gstm6可能在睾丸发育或功能中发挥男性特异性作用[1]。

在肝脏中,Gstm6的表达受到多种转录因子的调控。研究发现,Nrf2转录因子对于Gstm6的表达具有重要作用。Nrf2是一种抗氧化应激反应的关键转录因子,在缺乏Nrf2的小鼠肝脏中,Gstm6的表达水平显著降低。此外,Wnt/β-catenin信号通路也参与Gstm6的表达调控,激活β-catenin依赖性信号通路可以刺激Gstm6的表达[4,5]。HNF4α也是一种肝脏富集的转录因子,对于Gstm6的表达具有调控作用。在缺乏HNF4α的小鼠肝脏中,Gstm6的表达水平显著降低[6]。

除了在生殖系统和肝脏中的表达,Gstm6还与其他疾病的发生和发展相关。研究发现,Gstm6的表达与风湿性关节炎(RA)的发生和发展相关。Lycium barbarum多糖(LBP)可以减轻RA的症状,并且研究发现,LBP干预可以改变肠道菌群结构,并通过DNA甲基化影响Gstm6等基因的表达[3]。此外,Gstm6的表达还与肝脏病变相关。在肝细胞特异性Pten缺陷小鼠中,Gstm6的表达水平显著升高,并且与肝脏炎症、纤维化和癌变相关[2]。

综上所述,Gstm6是一种重要的基因,参与细胞内的抗氧化应激反应,保护组织免受有害和致癌化合物的损害。Gstm6的表达受到多种转录因子的调控,并且与生殖系统发育、肝脏功能和疾病的发生和发展相关。深入研究Gstm6的生物学功能和调控机制,有助于我们更好地理解其参与的生物学过程,并为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Beverdam, Annemiek, Svingen, Terje, Bagheri-Fam, Stefan, Harley, Vincent R, Koopman, Peter. 2008. Sox9-dependent expression of Gstm6 in Sertoli cells during testis development in mice. In Reproduction (Cambridge, England), 137, 481-6. doi:10.1530/REP-08-0336. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19098141/
2. Sato, Wataru, Horie, Yasuo, Kataoka, Ei, Suzuki, Akira, Watanabe, Sumio. 2006. Hepatic gene expression in hepatocyte-specific Pten deficient mice showing steatohepatitis without ethanol challenge. In Hepatology research : the official journal of the Japan Society of Hepatology, 34, 256-65. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16490391/
3. Lai, Wenjia, Wang, Chunyan, Lai, Renfa, Peng, Xichun, Luo, Jianming. 2022. Lycium barbarum polysaccharide modulates gut microbiota to alleviate rheumatoid arthritis in a rat model. In NPJ science of food, 6, 34. doi:10.1038/s41538-022-00149-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35864275/
4. Chanas, Simon A, Jiang, Qing, McMahon, Michael, Yamamoto, Masayuki, Hayes, John D. . Loss of the Nrf2 transcription factor causes a marked reduction in constitutive and inducible expression of the glutathione S-transferase Gsta1, Gsta2, Gstm1, Gstm2, Gstm3 and Gstm4 genes in the livers of male and female mice. In The Biochemical journal, 365, 405-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11991805/
5. Giera, Stefanie, Braeuning, Albert, Köhle, Christoph, Buchmann, Albrecht, Schwarz, Michael. 2010. Wnt/beta-catenin signaling activates and determines hepatic zonal expression of glutathione S-transferases in mouse liver. In Toxicological sciences : an official journal of the Society of Toxicology, 115, 22-33. doi:10.1093/toxsci/kfq033. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20118494/
6. Lu, Hong, Gonzalez, Frank J, Klaassen, Curtis. 2010. Alterations in hepatic mRNA expression of phase II enzymes and xenobiotic transporters after targeted disruption of hepatocyte nuclear factor 4 alpha. In Toxicological sciences : an official journal of the Society of Toxicology, 118, 380-90. doi:10.1093/toxsci/kfq280. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20935164/