Gc-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Gc-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-02582

品系全称

C57BL/6JCya-Gcem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-14473-Gc-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Gc-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-02582) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
vitamin D binding protein
基因别称
DBP,VDB
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008096 | Ensembl: ENSMUST00000049209
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~1.8 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:95669Mice homozygous for disruption of this gene show an essentially normal phenotype. However, they have an increased sensitivity to vitamin D deficiency in the diet.
基因Gc,即GC含量,指的是基因序列中鸟嘌呤(G)和胞嘧啶(C)核苷酸的比例。GC含量的变化可以影响基因的表达和功能,进而影响生物的生理过程和进化。GC含量的差异可以存在于不同物种之间,也可以存在于同一物种的不同基因之间。

在植物基因中,GC含量的变化与过去的基因复制事件有关。研究发现,单子叶草类的基因GC含量呈双峰分布,而双子叶植物则没有这种分布。通过对9个物种的基因进行分类,发现同源基因的5'端第三位密码子处的GC含量显著高于非同源基因。低GC含量与基因复制相关,因为与远缘基因组的同源关系缺失与过去发生的随机基因复制相关。两种突变类型可以解释GC含量的偏差,即甲基化C转变为T和基因转换从A到G。基因转换涉及同源等位基因之间的非互换代换,当等位基因相同或杂合存在缺失变异时,基因转换无法检测到,这在基因复制到新位点时是常见的情况。基因复制可以导致siRNA的产生,这些siRNA可以诱导靶向甲基化,从而提高mC→T突变率。最近复制的植物基因更容易被甲基化,并且不太可能发生基因转换,这些因素共同创造了一个有利于AT核苷酸的突变环境。在草类中,具有高GC含量的同源基因是一组经历了少量复制或其复制副本已被选择清除的基因。研究人员提出了一种“偏基因复制/偏突变”(BDBM)模型,可以解释复制和基因GC偏差之间的观察到的联系。该模型通过联合分析9个被子植物物种及其基因的复制状态、GC含量、甲基化水平和功能类别得到了支持[1]。

GC丰富的DNA顺式作用元件是许多真核基因的启动子、增强子和位点控制区域中重要的转录调节元件。这些元件及其相应的结合蛋白在调节基因表达方面发挥着重要作用。研究发现,GC丰富的顺式作用元件在多种物种中普遍存在,并且与基因表达密切相关。这些元件的结构、功能和生物学意义对于理解基因表达的调节机制具有重要意义[2]。

基因结构可以指导在分离的核空间区域中的剪接结果。研究发现,核的周围和中心区域包含具有两种不同的外显子-内含子GC含量结构的基因,这些结构在剪接结果上有所不同。具有低GC含量外显子的基因,被低GC含量的长内含子所包围,定位于核的周围,并且外显子被定义为剪接单元。这些基因的替代剪接会导致外显子跳跃。相比之下,核中心包含具有高GC含量的外显子和短内含子的基因。这些基因的大多数剪接通过内含子定义进行,异常剪接会导致内含子保留。研究结果表明,核的周围和中心区域为替代剪接的调节创造了不同的环境,并且两种剪接因子形成了离散的调节子网络,用于两种基因结构。该研究将3D基因组组织与剪接联系起来,从而证明了剪接的外显子和内含子定义模式发生在不同的核区域[3]。

GC含量对基因表达模式的影响在鸡中也得到了研究。研究发现,鸡的5'非翻译区(5'UTR)的GC含量与表达水平、表达广度和最大表达水平显著正相关,而编码序列和内含子的GC含量与表达水平和表达广度呈负相关,与最大表达水平无关。这些显著的趋势不受重组率、染色体大小和基因密度的影响。此外,多元线性回归分析表明,基因中的GC含量可以解释大约10%的基因表达变异。GC含量与基因表达模式显著相关,可能是鸡基因组中重要的调节因素之一[4]。

基因表达的调节机制还包括替代RNA剪接(AS)。AS是一种重要的基因表达调节机制,与多种疾病相关,特别是与肿瘤相关。研究发现,AS的类型包括外显子跳跃、内含子保留、互斥外显子、替代5'或3'剪接位点、替代第一个或最后一个外显子和替代3'非翻译区。AS的机制包括cis-元件和trans-acting因子的调节,通过RNA剪接,可以产生具有不同形式和功能的不同蛋白质,可能与致癌发生有关。AS的类型与胃癌相关基因及其剪接变体有关,研究表明,同一基因的不同剪接变体在胃癌及其癌前病变中的表达存在差异,表明AS在胃癌的发展中具有重要作用[5]。

在生物信息学研究中,GC含量也是一个重要的指标。例如,luxCDABE基因簇是发光细菌Photorhabdus luminescens的一个转录报告基因。编码luxCDABE基因的序列是AT丰富的(>69%),因此它们在GC丰富的细菌中表达效率不高。研究人员构建了一个合成的luxCDABE操纵子,编码P. luminescens的Lux蛋白,优化了在GC丰富的细菌中的表达。通过转录融合实验,证明合成的lux基因在S. coelicolor中具有功能,并且能够准确报告复杂的发育基因表达模式。这项研究为高GC细菌的研究提供了新的工具和策略[6]。

人类基因组中,GC含量在基因的5'端附近存在峰值,这一特征对于RNA代谢具有重要意义。研究发现,GC峰值在羊膜动物的共同祖先中存在,并且在灵长类和啮齿类动物中,由于PRDM9的存在,GC峰值正在发生突变衰减。而在犬科动物中,由于缺乏PRDM9,GC峰值正在增加。这些结果表明,GC峰值的动态变化受到历史重组模式的影响。由于向突变率平衡的衰减是功能非功能性DNA的默认状态,因此灵长类和啮齿类动物在TSS处GC含量的降低表明,GC峰值不是由对大多数蛋白质编码基因的选择维持的[7]。

综上所述,基因Gc是一个重要的生物信息学指标,可以影响基因的表达和功能,进而影响生物的生理过程和进化。GC含量的变化与基因复制、基因表达调节和RNA剪接等生物学过程密切相关。对GC含量的研究和理解对于深入理解基因表达和生物进化的机制具有重要意义。

参考文献:
1. Bowers, John E, Tang, Haibao, Burke, John M, Paterson, Andrew H. 2022. GC content of plant genes is linked to past gene duplications. In PloS one, 17, e0261748. doi:10.1371/journal.pone.0261748. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35025913/
2. Hapgood, J P, Riedemann, J, Scherer, S D. . Regulation of gene expression by GC-rich DNA cis-elements. In Cell biology international, 25, 17-31. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11237405/
3. Tammer, Luna, Hameiri, Ofir, Keydar, Ifat, Carmo-Fonseca, Maria, Ast, Gil. 2022. Gene architecture directs splicing outcome in separate nuclear spatial regions. In Molecular cell, 82, 1021-1034.e8. doi:10.1016/j.molcel.2022.02.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35182478/
4. Rao, You Sheng, Chai, Xue Wen, Wang, Zhang Feng, Nie, Qing Hua, Zhang, Xi Quan. 2013. Impact of GC content on gene expression pattern in chicken. In Genetics, selection, evolution : GSE, 45, 9. doi:10.1186/1297-9686-45-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23557030/
5. Li, Ying, Yuan, Yuan. 2016. Alternative RNA splicing and gastric cancer. In Mutation research. Reviews in mutation research, 773, 263-273. doi:10.1016/j.mrrev.2016.07.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28927534/
6. Craney, Arryn, Hohenauer, Tobias, Xu, Ye, Li, Yingfu, Nodwell, Justin. 2007. A synthetic luxCDABE gene cluster optimized for expression in high-GC bacteria. In Nucleic acids research, 35, e46. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17337439/
7. Qiu, Yi, Kang, Yoon Mo, Korfmann, Christopher, Eckford, Andrew, Palazzo, Alexander F. 2024. The GC-content at the 5' ends of human protein-coding genes is undergoing mutational decay. In Genome biology, 25, 219. doi:10.1186/s13059-024-03364-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39138526/