Fadd-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Fadd-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-02347

品系全称

C57BL/6JCya-Faddem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-14082-Fadd-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Fadd-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-02347) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
Fas associated via death domain
基因别称
Mort1/FADD
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010175 | Ensembl: ENSMUST00000033394
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.8 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:109324Mice homozygous for a knock-out allele exhibit embryonic lethality associated with abnormal embryogenesis.
FADD,全称Fas相关死亡结构域蛋白(Fas-associated death domain protein),是一种在细胞凋亡过程中起关键作用的蛋白质。FADD是一种接头蛋白,它能够连接死亡受体和下游的凋亡信号传导分子,从而触发细胞凋亡过程。FADD的死亡结构域能够与死亡受体如Fas(也称为CD95或APO-1)的胞内结构域结合,进而激活caspase-8,启动细胞凋亡信号通路。此外,FADD还能够与其他蛋白质相互作用,如RIPK1和RIPK3,参与调节细胞凋亡和炎症反应。

FADD在多种生物学过程中发挥作用,包括细胞凋亡、炎症反应和免疫调节。FADD的异常表达或功能改变与多种疾病的发生和发展有关,如癌症、自身免疫性疾病和病毒感染。在癌症中,FADD的表达和功能改变可能导致肿瘤细胞对凋亡信号的抵抗,从而促进肿瘤的发生和发展。例如,在胶质瘤中,ATRX/EZH2复合物通过表观遗传调控FADD/PARP1轴,导致肿瘤细胞对替莫唑胺(TMZ)的耐药性增加[1]。在头颈鳞状细胞癌中,FADD的基因扩增和蛋白过表达与患者的淋巴结转移、疾病进展和预后不良密切相关[5][6]。

在免疫系统中,FADD参与调节炎症反应和免疫细胞的功能。例如,在杂交黄颡鱼中,FADD基因的表达在细菌感染后显著上调,表明FADD在鱼类中的免疫反应中发挥重要作用[2]。此外,FADD还能够促进I型干扰素的产生,抑制猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)的感染[4]。

FADD的功能还与脂肪组织炎症、脂肪生成和脂肪细胞存活有关。FADD的缺失导致脂肪组织炎症反应增强,脂肪生成减少和脂肪细胞存活率降低[3]。

综上所述,FADD是一种多功能蛋白质,参与调节细胞凋亡、炎症反应、免疫调节、脂肪组织炎症和脂肪生成等生物学过程。FADD的异常表达或功能改变与多种疾病的发生和发展有关,如癌症、自身免疫性疾病和病毒感染。深入研究FADD的生物学功能和作用机制,对于理解疾病的发生机制和开发新的治疗方法具有重要意义。

参考文献:
1. Han, Bo, Meng, Xiangqi, Wu, Pengfei, Cai, Jinquan, Jiang, Tao. 2020. ATRX/EZH2 complex epigenetically regulates FADD/PARP1 axis, contributing to TMZ resistance in glioma. In Theranostics, 10, 3351-3365. doi:10.7150/thno.41219. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32194873/
2. Guo, Shengtao, Zeng, Mengsha, Chen, Lei, Shi, Qiong, Song, Zhaobin. 2023. Characterization and expression profiling of fadd gene in response to exogenous Aeromonas hydrophila or Edwardsiella tarda challenge in the hybrid yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco ♀ × P. vachelli ♂). In Fish & shellfish immunology, 141, 109021. doi:10.1016/j.fsi.2023.109021. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37633342/
3. Tang, Jianlei, Ma, Yue, Li, Meilin, Jia, Zhihao, Feng, Yu. 2024. FADD regulates adipose inflammation, adipogenesis, and adipocyte survival. In Cell death discovery, 10, 323. doi:10.1038/s41420-024-02089-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39009585/
4. Chang, Xiaobo, Wang, Mengqi, Li, Zhaopeng, Chang, Yafei, Hu, Jianhe. 2024. FADD promotes type I interferon production to suppress porcine reproductive and respiratory syndrome virus infection. In Frontiers in veterinary science, 11, 1380144. doi:10.3389/fvets.2024.1380144. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38650851/
5. Chien, Huei-Tzu, Cheng, Sou-De, Chuang, Wen-Yu, Wang, Hung-Ming, Huang, Shiang-Fu. 2016. Clinical Implications of FADD Gene Amplification and Protein Overexpression in Taiwanese Oral Cavity Squamous Cell Carcinomas. In PloS one, 11, e0164870. doi:10.1371/journal.pone.0164870. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27764170/
6. González-Moles, Miguel Ángel, Ayén, Ángela, González-Ruiz, Isábel, Ruiz-Ávila, Isábel, Ramos-García, Pablo. 2020. Prognostic and Clinicopathological Significance of FADD Upregulation in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma: A Systematic Review and Meta-Analysis. In Cancers, 12, . doi:10.3390/cancers12092393. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32847023/