Csn2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Csn2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-01911

品系全称

C57BL/6JCya-Csn2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-12991-Csn2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Csn2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-01911) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
casein beta
基因别称
Csnb
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_009972.2 | Ensembl: ENSMUST00000197422
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 5~7
敲除长度
~2201 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:88541Female mice homozygous for disruption of this gene produce mile with a low protein content and poor nutritional value.
Csn2,也称为CSN2,是一种重要的蛋白质,它属于CRISPR-Cas系统中的Cas蛋白家族。CRISPR-Cas系统是一种存在于细菌和古菌中的免疫系统,它能够识别并切割入侵的病毒DNA或质粒,从而保护宿主细胞免受外来遗传物质的侵害。Csn2在CRISPR-Cas系统中扮演着重要的角色,它参与了RNA沉默和基因表达的调控。

在口腔链球菌中,Csn2基因的缺失会影响细菌的生理特性和毒力基因的表达。一项研究表明,Csn2基因的缺失改变了链球菌的菌落形态,使其对酸性环境更加敏感[1]。此外,Csn2基因缺失还会导致与酸性耐受性相关的基因表达水平显著下调,而酸适应可以恢复酸耐受性并增强胞外多糖的合成能力[1]。另一项研究发现,Csn2基因缺失还会影响链球菌在寡营养环境下的生长和胞外多糖的合成。在营养充足的条件下,Csn2基因缺失菌株的胞外多糖/细菌比值明显高于野生型菌株,而在寡营养条件下,Csn2基因缺失菌株的胞外多糖合成能力进一步增强[2]。

除了在细菌中发挥作用,Csn2基因还存在于哺乳动物中,如猪和牛。在猪中,Csn2基因的5'-非翻译区对基因的表达调控起到了重要作用。研究显示,乳生成信号可以通过STAT5位点(-102bp至-84bp)和内含子1来调节猪Csn2基因的转录[3]。此外,Csn2基因在牛中也存在多态性,特别是A1和A2等位基因。研究结果表明,不同品种的牛中A2等位基因的频率存在差异,这可能与牛的品种和遗传背景有关[4,5]。

此外,Csn2基因的表达还受到甲状腺激素的调控。研究发现,在鼠脑中,甲状腺激素可以调节Csn2基因的表达,甲状腺激素缺乏的动物Csn2 mRNA和蛋白质水平较低[6]。这表明甲状腺激素和Csn2基因之间存在负反馈机制,Csn2基因的表达可能参与甲状腺激素介导的基因沉默调控。

综上所述,Csn2基因在细菌和哺乳动物中具有重要的作用。在细菌中,Csn2基因的缺失会影响细菌的生理特性和毒力基因的表达,进而影响细菌的致病性。在哺乳动物中,Csn2基因的表达受到多种因素的调控,包括乳生成信号和甲状腺激素等。Csn2基因的研究有助于深入理解其生物学功能和在疾病发生中的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Zhang, Anqi, Chen, Jiamin, Gong, Tao, Zhou, Xuedong, Li, Yuqing. 2020. Deletion of csn2 gene affects acid tolerance and exopolysaccharide synthesis in Streptococcus mutans. In Molecular oral microbiology, 35, 211-221. doi:10.1111/omi.12308. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32794605/
2. He, X Y, Li, Y Q, Zhou, X D. . [Effect of csn2 gene deficiency on the starvation tolerance and the synthesis of extracellular polysaccharides in oligotrophic environment of Streptococcus mutans]. In Zhonghua kou qiang yi xue za zhi = Zhonghua kouqiang yixue zazhi = Chinese journal of stomatology, 57, 68-75. doi:10.3760/cma.j.cn112144-20210520-00260. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35012254/
3. Lee, Poongyeon, Chung, Hee Kyoung, Lee, Hyun-Gi, Kwon, Moosik, Park, Jin-Ki. 2008. Cloning and characterization of 5'-untranslated region of porcine beta casein gene (CSN2). In Domestic animal endocrinology, 35, 245-53. doi:10.1016/j.domaniend.2008.04.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18583090/
4. Antonopoulos, Dionysios, Vougiouklaki, Despina, Laliotis, George P, Halvatsiotis, Panagiotis, Houhoula, Dimitra. 2021. Identification of Polymorphisms of the CSN2 Gene Encoding β-Casein in Greek Local Breeds of Cattle. In Veterinary sciences, 8, . doi:10.3390/vetsci8110257. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34822630/
5. Suhail, Syed Muhammad, Ahmad, Ijaz, Zeb, Muhammad Tariq, Khan, Khalid, Khan, Aitbar. 2022. Detection of A2A2 genotype of beta casein protein (CSN2) gene in local, exotic and cross bred cattle in Pakistan. In Animal biotechnology, 34, 1462-1473. doi:10.1080/10495398.2022.2031204. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35235484/
6. Tenbaum, Stephan P, Juenemann, Stefan, Schlitt, Thomas, Muñoz, Alberto, Baniahmad, Aria. . Alien/CSN2 gene expression is regulated by thyroid hormone in rat brain. In Developmental biology, 254, 149-60. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12606288/