Crabp1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Crabp1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-01852

品系全称

C57BL/6JCya-Crabp1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-12903-Crabp1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Crabp1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-01852) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cellular retinoic acid binding protein I
基因别称
CRABP-I,Crabp-1,CrabpI,Rbp-5
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_013496 | Ensembl: ENSMUST00000034830
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~0.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:88490Homozygotes for targeted null mutations are phenotypically normal and fertile.
Crabp1,即细胞视黄酸结合蛋白1,是一种重要的细胞内蛋白,属于视黄酸结合蛋白家族。其主要功能是结合并转运视黄酸(RA),一种维生素A的活性代谢物。RA作为一种重要的信号分子,参与调节细胞生长、分化和凋亡等多种生物学过程。Crabp1在细胞内广泛表达,其表达水平与细胞类型、分化状态和生理病理状态密切相关。近年来,Crabp1在多种疾病中的作用逐渐受到关注,包括癌症、神经退行性疾病、代谢性疾病等。

在单细胞RNA测序技术的研究中,Crabp1在特定的下丘脑亚区域中被发现,并与Pax6+神经元群相关。这一发现揭示了Crabp1在下丘脑细胞多样性中的表达特征,为理解下丘脑功能和相关疾病提供了新的线索[1]。此外,研究发现Crabp1在非典型视黄酸活性中发挥重要作用,如调节MAPK和CaMKII活性,参与干细胞增殖、癌症、脂肪细胞健康和神经免疫调节等过程[2]。Crabp1还可以通过形成信号体来介导RA的快速非典型活性,影响细胞内的信号传导和功能[3]。

进一步的研究发现,Crabp1与细胞外囊泡(exosome)的分泌有关。在Crabp1基因敲除小鼠中,exosome的表型发生改变,提示Crabp1可能通过形成新的信号体来调节exosome的分泌。通过生物信息学和分子生物学方法,研究者发现了Crabp1与细胞骨架动力学、激酶和exosome分泌相关的相互作用蛋白,并验证了Crabp1在调节exosome分泌中的作用[3]。

在生殖领域,Crabp1被发现在兔子的卵巢组织中高度表达,并且与产仔数相关。研究发现,Crabp1可以促进卵泡细胞凋亡和抑制其增殖,并通过调节与类固醇激素合成和卵泡发育相关的基因和蛋白的表达,影响兔子的生殖能力[4]。

在乳腺癌细胞中,Crabp1和Crabp2蛋白水平与彼此相关,但与细胞对RA的敏感性无关。这表明Crabp1可能通过非RA结合的方式发挥功能,并与Crabp2相互作用,共同调节细胞内的信号传导和功能[5]。

在神经生物学领域,Crabp1被发现与HPA轴的稳态和焦虑样行为有关。Crabp1基因敲除小鼠表现出较低的焦虑样行为和应激诱导的皮质酮水平,这与其在HPA轴中调节FKBP5表达,进而影响GR信号传导有关[6]。

在癌症领域,Crabp1被发现与间充质和神经内分泌肿瘤的发病机制有关。研究发现,Crabp1在间充质肿瘤中具有促进转移和肿瘤发生的活性,并且其表达水平与神经内分泌肿瘤的恶性程度和临床行为相关[7]。

综上所述,Crabp1作为一种重要的细胞内蛋白,在多种生物学过程中发挥重要作用。Crabp1参与调节RA的活性,影响细胞内的信号传导和功能,与多种疾病的发生发展密切相关。深入研究Crabp1的功能和机制,有助于揭示疾病的发病机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Chen, Renchao, Wu, Xiaoji, Jiang, Lan, Zhang, Yi. . Single-Cell RNA-Seq Reveals Hypothalamic Cell Diversity. In Cell reports, 18, 3227-3241. doi:10.1016/j.celrep.2017.03.004. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28355573/
2. Nhieu, Jennifer, Lin, Yu-Lung, Wei, Li-Na. 2022. CRABP1 in Non-Canonical Activities of Retinoic Acid in Health and Diseases. In Nutrients, 14, . doi:10.3390/nu14071528. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35406141/
3. Nhieu, Jennifer, Wei, Chin-Wen, Ludwig, Megan, Drake, Justin M, Wei, Li-Na. 2024. CRABP1-complexes in exosome secretion. In Cell communication and signaling : CCS, 22, 381. doi:10.1186/s12964-024-01749-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39075476/
4. Bao, Zhiyuan, Chen, Yang, Li, Jiali, Zhao, Bohao, Wu, Xinsheng. . 4D label-free quantitative proteomic analysis identifies CRABP1 as a novel candidate gene for litter size in rabbits†. In Biology of reproduction, 111, 110-122. doi:10.1093/biolre/ioae038. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38478424/
5. Enikeev, Adel D, Komelkov, Andrey V, Axelrod, Maria E, Kuzmichev, Sergey A, Tchevkina, Elena M. . CRABP1 and CRABP2 Protein Levels Correlate with Each Other but Do Not Correlate with Sensitivity of Breast Cancer Cells to Retinoic Acid. In Biochemistry. Biokhimiia, 86, 217-229. doi:10.1134/S0006297921020103. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33832420/
6. Lin, Yu-Lung, Wei, Chin-Wen, Lerdall, Thomas A, Nhieu, Jennifer, Wei, Li-Na. 2021. Crabp1 Modulates HPA Axis Homeostasis and Anxiety-like Behaviors by Altering FKBP5 Expression. In International journal of molecular sciences, 22, . doi:10.3390/ijms222212240. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34830120/
7. Kainov, Yaroslav, Favorskaya, Irina, Delektorskaya, Vera, Zborovskaya, Irina, Tchevkina, Elena. 2014. CRABP1 provides high malignancy of transformed mesenchymal cells and contributes to the pathogenesis of mesenchymal and neuroendocrine tumors. In Cell cycle (Georgetown, Tex.), 13, 1530-9. doi:10.4161/cc.28475. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24626200/