Cox6a1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Cox6a1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-01833

品系全称

C57BL/6JCya-Cox6a1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-12861-Cox6a1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Cox6a1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-01833) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cytochrome c oxidase subunit 6A1
基因别称
VIaL
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_007748 | Ensembl: ENSMUST00000040154
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~1.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:103099Homozygous null mice exhibit impaired coordination, thinned sciatic nerves, neurogenic muscular changes and delayed motor nerve conduction velocity.
COX6A1基因编码细胞色素c氧化酶(COX)亚基VIa(VIa-L)的普遍异构体,该基因位于12号染色体q24.2区域的CpG岛内。COX6A1基因在细胞中作为前蛋白合成,与其他COX亚基相似。通过引物延伸分析,在人类大脑和淋巴母细胞RNA中发现了相同的转录起始位点。对COX6A1启动子的分析揭示了在其他COX基因中发现的保守序列元素,包括核呼吸因子1(NRF-1)、核呼吸因子2/GA结合蛋白(NRF-2/GABP)和阴阳蛋白1(YY1)的结合位点。这些保守元素被证明与来自HeLa细胞核提取物的核蛋白结合。COX6A1 cDNA从人类大脑cDNA文库中分离出来,其序列与人类肝脏中的序列相同。通过原位杂交,在猴子大脑切片中用人类大脑cDNA展示了该基因的表达。单眼冲动阻断在成年猴子的剥夺视觉神经元中诱导COX6A1表达的下调,这表明该亚基基因受神经元活动的调节[1]。

在黎巴嫩进行的一项为期20年的临床和遗传性神经肌肉疾病(NMD)队列分析中,发现了103个基因中的49个基因的103个变异。在这些患者中,81.4%被诊断为运动神经元疾病和肌营养不良,其中近一半的患者患有脊髓性肌萎缩(SMA)。估计黎巴嫩的SMA发病率为1/7500。杜氏和贝克肌营养不良是第二常见的NMDs(占患者的17%)。这些疾病与本研究中鉴定的变异数量最多(39个)。值得注意的是,还发现了一种高度异质性的Limb Girdle肌营养不良和夏科-马里病。最不常见的疾病(占患者的5.5%)包括先天性、代谢性和线粒体肌病、先天性肌无力综合征和肌强直性肌营养不良。本研究表明,黎巴嫩异质性NMDs的患病率和未报告情况很高,这是一个主要挑战,因为在许多新型NMD治疗方法中,需要建立一个区域性的NMD患者登记册[2]。

通过全基因组测序和基因敲除实验,发现COX20基因的双等位基因功能丧失突变会导致常染色体隐性感觉神经病。COX20编码一种关键的跨膜蛋白,参与线粒体复合物IV的组装。研究发现,COX20突变会导致患者成纤维细胞和转染细胞系中COX20蛋白减少,与功能丧失机制一致。敲低ND7/23感觉神经元细胞中的COX20表达导致复合物IV缺陷和复合物IV组装受损,进而损害细胞在代谢应激下的呼吸能力和增殖能力。与敲低细胞中线粒体功能障碍一致,在患者的成纤维细胞中也发现复合物IV组装减少、酶活性降低和耗氧量降低。研究推测,COX20的机制与其他导致周围神经病的致病基因(如SURF1、COX6A1、COA3和SCO2)相似,这些基因在复合物IV的结构和组装中起重要作用。该研究确定了常染色体隐性感觉神经病的一个新的致病基因,其在复合物IV中的关键功能和在本体感觉神经元中的高表达进一步强调了COX20的丧失导致线粒体生物能功能障碍作为周围感觉神经元疾病机制的可能性[3]。

在两个具有CMT(轴突和混合表型)的近亲家族中,通过全基因组关联分析,在12q24上发现了一个4.3Mb的区域,最大多点LOD分数为4.23。随后对其中一个先证者进行全基因组测序,并对两个家族进行突变筛查,发现了一个疾病特异性5bp缺失(c.247-10_247-6delCACTC),该缺失位于2号内含子中的剪接元件(嘧啶区)中,紧邻细胞色素c氧化酶亚基VIa多肽1(COX6A1)的3号外显子。COX6A1是线粒体呼吸链IV(细胞色素c氧化酶[COX])的组成部分,位于自交连锁区域内。功能分析显示,受影响个体的外周白细胞中COX6A1的表达和EB病毒转化淋巴细胞中的COX活性显著降低。此外,Cox6a1基因敲除小鼠的COX活性显著降低,神经性肌肉萎缩导致行走困难。这些数据表明,COX6A1突变导致常染色体隐性轴突或混合CMT[4]。

牛的心/肌肉异构体细胞色素c氧化酶亚基VIa(COX6A1)基因从牛基因组DNA文库中分离并测序。该基因全长760bp,包含三个外显子和两个小内含子。外显子1编码一个193bp的5'非翻译区域、一个12个氨基酸的前序列和成熟COX VIa蛋白的前12个氨基酸。外显子2编码氨基酸13至58,外显子3编码氨基酸59至85加上35bp的3'非翻译区域。外显子2和外显子3之间由一个仅96bp的小内含子分隔。所有外显子-内含子边界都与保守的剪接连接序列相匹配。COX6A1转录本存在于牛心脏RNA中,但不存在于大脑RNA中。使用引物延伸和核糖核酸酶保护测定法绘制了心脏中COX6A1转录本的5'末端,两种方法都确定了COX6A1 mRNA在5'末端的异质性。近端5'侧翼区域富含AT,并包含与组织特异性基因相关的潜在基础启动子元件,如TATA和CCAAT框。在该AT富含区域内还发现了一个肌肉特异性转录因子MyoD1的单个保守结合位点。远端启动子区域包含一个完美的AP4位点以及潜在的增强子元件(NRF-1、Mt1、Mt3和Mt4)的结合位点,这些增强子元件被认为是调节线粒体蛋白基因表达的[5]。

青少年个体在皮层动力学和行为结果方面表现出巨大的变异性。发育中的青少年大脑对社交经历和环境伤害高度敏感,影响着人格特征的显现。青春期前额叶皮层(PFC)中线粒体基因表达的独特模式强调了线粒体在脑成熟和精神疾病发展中的重要作用。某些脑区中的线粒体特征解释了成年期行为差异。然而,尚不清楚不同的青少年行为表型和早期青少年应激暴露的行为后果是否伴随着PFC中线粒体相关基因和线粒体呼吸链容量的变化。在青春期晚期(出生后第47-50天)进行行为特征分析,包括非应激动物和从出生后第31-40天(10天足部电击和3次束缚)暴露于应激的动物。通过主成分分析,确定了三个簇:具有较高行为z分数的应激动物(HBZ)、具有较低行为z分数的应激动物(LBZ)和应激动物。全基因组转录分析揭示了与应激动物相比,在非应激LBZ和应激动物中,线粒体相关基因的表达存在差异。编码氧化磷酸化复合物亚基的基因在非应激LBZ和应激动物中显著下调,并与表型的行为z分数呈正相关。对线粒体相关基因的网络拓扑分析发现,Ndufa10和Cox6a1基因分别是非应激LBZ和应激动物的关键标志物。通过高分辨率呼吸测量分析,发现非应激LBZ和应激动物都表现出前额叶磷酸化能力和氧化还原调节受损。这些发现确定了线粒体特征与不同青少年行为表型之间的关联,同时也强调了青少年应激对PFC的损害性功能后果[6]。

使用加权基因共表达网络分析(WGCNA)来识别与KRAS突变(MT)肺腺癌(LUAD)发病和预后相关的中心基因。本研究纳入了TCGA数据库中184例IIIB至IV期LUAD样本和59例正常肺组织样本。使用R包"limma"识别差异表达基因(DEGs)。使用R包"WGCNA"和"survival"分别进行WGCNA和生存分析。使用R包"clusterProfiler"和GSEA软件进行功能分析。使用Cytoscape_v3.6.1进行网络构建和MCODE分析。在LUAD和正常肺组织之间发现了2590个KRAS MT特异性DEGs,并确定了10个WGCNA模块。对关键模块的功能分析显示,核糖体生物发生相关术语被富集。观察到8个基因的表达与KRAS MT LUAD患者的较差生存率呈正相关,其中7个基因通过Kaplan-Meier plotter数据库(kmplot.com/)得到验证(胸腺素β10 [TMSB10]、核糖体蛋白S16 [RPS16]、线粒体核糖体蛋白L27 [MRPL27]、细胞色素c氧化酶亚基6A1 [COX6A1]、HCLS1相关蛋白X-1 [HAX1]、核糖体蛋白L38 [RPL38]和ATP合酶膜亚基DAPIT [ATP5MD])。GSEA分析发现,mTOR和STK33通路在KRAS MT LUAD中上调(P < 0.05,FDR < 0.25)。总之,本研究首次使用WGCNA识别了KRAS MT LUAD发展中相关的中心基因。这些鉴定的预后因素可能是临床应用中的潜在生物标志物。需要进一步的研究来确认这些基因在KRAS MT LUAD中的机制[7]。

使用空间转录组测序技术研究了帕金森病(PD)中炎症和免疫改变的发生机制。近年来,越来越多的证据强调了炎症在PD发病机制中的重要作用。然而,炎症损伤PD中多巴胺能神经元的精确机制仍然不清楚。因此,我们建立了MPTP诱导的PD小鼠模型,并进行了空间转录组测序,以更深入地了解PD发展的特定脑区。结果表明,PD的病理变化主要表现在中脑,特别是在黑质区域,其中少突胶质细胞和Agt标记的星形胶质细胞显著减少,而Gfap标记的星形胶质细胞增加。巨噬细胞在PD环境中呈上升趋势,表明PD诱导的免疫调节模式。此外,通路分析揭示了离子迁移能力受损、异常Ca2+通道、cAMP信号传导和突触损伤。在PD中,Mt1和Mt2显著下调,Atp1b2、Gpi1和Cox6a1上调,这进一步强调了炎症和免疫改变的发生。基于这些发现,通过测定其含量,我们验证了PD环境中中脑组织Ca2+的显著积累。此外,通过评估组织中铁含量、丙二醛(MDA)水平和GPX4和TH的蛋白表达,我们证实了多巴胺能神经元的减少与铁死亡密切相关。我们提出假设,PD相关的炎症和免疫变化可以通过诱导铁死亡来损伤神经元和少突胶质细胞,从而进一步加速PD的进展[8]。

通过整合分析帕金森病(PD)的微阵列研究,确定了PD与正常对照(NC)相比的关键差异表达基因(DEGs)和上调基因。基于这些DEGs,进行了功能注释和转录调控网络构建。Q-RT-PCR用于验证DEGs的表达。从GEO获得了7个数据集。与正常对照相比,在PD中鉴定了276个DEGs(262个上调和14个下调),筛选标准为p值<0.05。PD中显著富集的GO项包括呼吸电子传递链、蛋白质结合和细胞质。PD中显著富集的通路包括氧化磷酸化、帕金森病、阿尔茨海默病和亨廷顿病。根据蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络,SNCA是PD中的中心蛋白。根据覆盖下游DEGs最多的前3个转录因子(TFs),分别是Oct-1、Pax-4和Evi-1。在本研究的整合分析中,首次鉴定了19个DEGs,这些DEGs没有来自本研究中纳入的其他单个数据集。几个DEGs,包括SNCA、COX17、COX4I1、COX7B、COX6A1和ATP5J,是Pax-4、Oct-1和Evi-1的靶点,可能通过调节氧化磷酸化、ATP产生和氧化应激,参与PD的神经退行性和发病机制,这有助于揭示PD的机制,并为开发新的诊断和治疗策略提供益处[9]。

口腔白斑病(OLK)是口腔中最常见的潜在恶性疾病。本研究旨在使用GEO数据库和实验筛选OLK恶性转化的关键基因。本研究利用GEO数据库筛选OLK恶性转化相关基因,并通过一系列生物信息学分析进行鉴定。外部验证表明,基于LAPTM4B、NR3C1和COX6A1的模型在诊断OLK恶性转化方面具有高度的准确性。此外,体内DMBA诱导的潜在恶性疾病和OSCC模型以及体外实时PCR实验进一步验证了数据库分析结果。总之,三种关键基因(LAPTM4B、NR3C1和COX6A1)被筛选为OLK恶性转化的诊断和治疗潜在生物标志物[10]。

综上所述,COX6A1基因在多种生物学过程中发挥作用,包括神经元活动的调节、感觉神经病的发病机制、CMT的发生、线粒体基因表达、青少年行为表型、LUAD的发病和预后、PD中的炎症和免疫改变以及OLK的恶性转化。COX6A1基因的表达和功能改变与多种疾病的发生和发展密切相关,因此,深入研究COX6A1基因的功能和调控机制对于理解疾病的发病机制和开发新的治疗方法具有重要意义。

参考文献:
1. Wong-Riley, M, Guo, A, Bachman, N J, Lomax, M I. . Human COX6A1 gene: promoter analysis, cDNA isolation and expression in the monkey brain. In Gene, 247, 63-75. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10773445/
2. Megarbane, Andre, Bizzari, Sami, Deepthi, Asha, Delague, Valérie, Urtizberea, J Andoni. . A 20-year Clinical and Genetic Neuromuscular Cohort Analysis in Lebanon: An International Effort. In Journal of neuromuscular diseases, 9, 193-210. doi:10.3233/JND-210652. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34602496/
3. Dong, Hai-Lin, Ma, Yin, Yu, Hao, Bai, Ge, Wu, Zhi-Ying. . Bi-allelic loss of function variants in COX20 gene cause autosomal recessive sensory neuronopathy. In Brain : a journal of neurology, 144, 2457-2470. doi:10.1093/brain/awab135. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33751098/
4. Tamiya, Gen, Makino, Satoshi, Hayashi, Makiko, Onodera, Osamu, Hayasaka, Kiyoshi. 2014. A mutation of COX6A1 causes a recessive axonal or mixed form of Charcot-Marie-Tooth disease. In American journal of human genetics, 95, 294-300. doi:10.1016/j.ajhg.2014.07.013. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25152455/
5. Smith, E O, Lomax, M I. . Structural organization of the bovine gene for the heart/muscle isoform of cytochrome c oxidase subunit VIa. In Biochimica et biophysica acta, 1174, 63-71. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7687470/
6. Santos-Silva, Thamyris, Hazar Ülgen, Doğukan, Lopes, Caio Fábio Baeta, Sandi, Carmen, Gomes, Felipe V. 2023. Transcriptomic analysis reveals mitochondrial pathways associated with distinct adolescent behavioral phenotypes and stress response. In Translational psychiatry, 13, 351. doi:10.1038/s41398-023-02648-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37978166/
7. Dai, Dongjun, Shi, Rongkai, Han, Shuting, Jin, Hongchuan, Wang, Xian. . Weighted gene coexpression network analysis identifies hub genes related to KRAS mutant lung adenocarcinoma. In Medicine, 99, e21478. doi:10.1097/MD.0000000000021478. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32769881/
8. Zhang, Sen, Geng, Yifan, Jiang, Xing, Tian, Xuewen, Wang, Qinglu. 2024. Investigating the mechanisms of inflammation and immune alterations in Parkinson's disease using spatial transcriptomics techniques. In Brain research bulletin, 217, 111076. doi:10.1016/j.brainresbull.2024.111076. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39306046/
9. Kong, Ping, Lei, Ping, Zhang, Shishuang, Zhao, Jing, Zhang, Benshu. 2017. Integrated microarray analysis provided a new insight of the pathogenesis of Parkinson's disease. In Neuroscience letters, 662, 51-58. doi:10.1016/j.neulet.2017.09.051. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28965931/
10. Li, Fengji, Qiu, Lin, Gao, Qian, Xue, Zhijun, Tao, Anqi. 2023. Comprehensive bioinformatics analysis combined with experimental validation to screen biomarkers for malignant transformation of oral leukoplakia. In Genomics, 115, 110686. doi:10.1016/j.ygeno.2023.110686. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37454941/