Clns1a-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Clns1a-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-01747

品系全称

C57BL/6JCya-Clns1aem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-12729-Clns1a-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Clns1a-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-01747) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
chloride channel, nucleotide-sensitive, 1A
基因别称
2610036D06Rik,2610100O04Rik,Clci,Clcni,ICLN
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_023671 | Ensembl: ENSMUST00000026506
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~0.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:109638Homozygous mutants die between E3.5-E7.5. Heterozygous mutants appear normal and healthy.
CLNS1A,即氯离子通道蛋白ICln的编码基因,位于人类染色体11q13.5-q14.1区域[1]。ICln是一种氯离子通道蛋白,在细胞体积调节中发挥着重要作用。当细胞体积增加时,ICln通道开放,使氯离子流出细胞,从而减少细胞体积,这一过程被称为体积调节性体积减小(regulatory volume decrease, RVD)。ICln的表达在哺乳动物中是普遍的,其表达受到一个89个核苷酸组成的启动子序列的调控,该启动子序列缺乏TATA框,并且转录可以在多个位点发生[2]。此外,ICln基因还存在一个位于染色体6p12.1-6q13区域的同源基因CLNS1B,该基因编码的ICln蛋白与CLNS1A编码的蛋白具有91.3%的同源性,但CLNS1B是一个无内含子的基因[1]。

ICln基因的表达受到多种因素的调控。研究发现,在人类单核细胞U937细胞中,ICln基因的表达受到一氧化氮(NO)的影响。当细胞暴露于不同浓度的一氧化氮时,ICln基因的表达会发生显著的变化,其中一些基因如KLF2、KLF6、TSC22D3等会被上调,而KIF23、组蛋白H4、ARL6IP2、CLNS1A等基因会被下调[3]。此外,蛋白精氨酸甲基转移酶5(PRMT5)的抑制会导致一种特殊的未剪接内含子(detained introns, DIs)的表达,CLNS1A作为PRMT5的辅因子,其缺失会导致细胞生长受到抑制,并且与Sm蛋白的甲基化以及DI的上调有关[4]。

在乳腺癌中,ICln基因的扩增与患者预后相关。研究发现,在乳腺癌的luminal亚型中,CLNS1A基因的扩增与患者预后不良相关。此外,CLNS1A基因的表达可以被表观遗传调节因子BET抑制剂所下调,这表明CLNS1A基因的表达可能受到表观遗传调控的影响[5]。在肝母细胞瘤中,CLNS1A基因的表达与患者的预后相关。研究发现,CLNS1A基因的表达与LARP1蛋白的O-GlcNAcylation修饰有关,LARP1蛋白通过circCLNS1A的正向调节,促进肝母细胞瘤的进展[6]。此外,在山羊中,CLNS1A基因与绒毛性状的变异相关,这表明CLNS1A基因在动物绒毛性状的形成中也发挥重要作用[7]。

综上所述,CLNS1A基因编码的ICln蛋白在细胞体积调节中发挥重要作用,其表达受到多种因素的调控。CLNS1A基因在多种肿瘤中发挥重要作用,与肿瘤的发生、发展和预后相关。此外,CLNS1A基因的表达可能受到表观遗传调控的影响,并且与动物绒毛性状的变异相关。CLNS1A基因的研究有助于深入理解细胞体积调节的机制,以及肿瘤发生、发展的分子机制,为肿瘤的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Nagl, U O, Erdel, M, Bergmann, F, Deetjen, P, Paulmichl, M. . Characterization of the human gene coding for the swelling-dependent chloride channel ICln at position 11q13.5-14.1 (CLNS1A) and further characterization of the chromosome 6 (CLNS1B) localization. In Gene, 209, 59-63. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9524223/
2. Scandella, E, Nagl, U O, Oehl, B, Deetjen, P, Paulmichl, M. . The promoter for constitutive expression of the human ICln gene CLNS1A. In The Journal of biological chemistry, 275, 15613-20. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10821842/
3. Turpaev, Kyril, Glatigny, Annie, Bignon, Jérome, Delacroix, Hervé, Drapier, Jean-Claude. 2009. Variation in gene expression profiles of human monocytic U937 cells exposed to various fluxes of nitric oxide. In Free radical biology & medicine, 48, 298-305. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2009.10.054. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19892011/
4. Fowler, Colin E, O'Hearn, Natalie A, Salus, Griffin J, Boutz, Paul L, Lees, Jacqueline A. 2024. The PRMT5-splicing axis is a critical oncogenic vulnerability that regulates detained intron splicing. In bioRxiv : the preprint server for biology, , . doi:10.1101/2024.12.17.628905. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39763796/
5. Noblejas-López, María Del Mar, López-Cade, Igor, Fuentes-Antrás, Jesús, García-Barberán, Vanesa, Ocaña, Alberto. 2021. Genomic Mapping of Splicing-Related Genes Identify Amplifications in LSM1, CLNS1A, and ILF2 in Luminal Breast Cancer. In Cancers, 13, . doi:10.3390/cancers13164118. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34439272/
6. Cui, Zhongqi, He, Jiangtu, Zhu, Jiabei, Huang, Nan, Ma, Ji. . O-GlcNAcylated LARP1 positively regulated by circCLNS1A facilitates hepatoblastoma progression through DKK4/β-catenin signalling. In Clinical and translational medicine, 13, e1239. doi:10.1002/ctm2.1239. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37070251/
7. Lu, Xiaotian, Suo, Langda, Yan, Xiaochun, Wu, Yujiang, Su, Rui. 2024. Genome-wide association analysis of fleece traits in Northwest Xizang white cashmere goat. In Frontiers in veterinary science, 11, 1409084. doi:10.3389/fvets.2024.1409084. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38872797/