Mta3-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Mta3-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-01157

品系全称

C57BL/6JCya-Mta3em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-116871-Mta3-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Mta3-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-01157) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
metastasis associated 3
基因别称
1110002J22Rik,mKIAA1266
染色体号
Chr 17 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_054082.2 | Ensembl: ENSMUST00000067826
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 7
敲除长度
~603 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MTA3,即转移相关蛋白3,属于转移相关蛋白(MTAs)家族,是一类染色质重塑蛋白。MTA家族成员在生理和病理环境中发挥着重要的调控作用。MTA3在各种组织中均有表达,并与多种生理功能相关。在癌症背景下,MTA1和MTA2通常被认为是致癌基因,因为它们能够增强转移。然而,MTA3在癌症中的作用则更为复杂,具体取决于癌症的类型和阶段。在某些癌症中,MTA3作为肿瘤抑制因子,通常下调Snail的表达,Snail是上皮-间质转化的主要调节因子,随后抑制癌细胞的侵袭和迁移。此外,MTA3可能通过增强某些癌症中癌细胞的分化而不影响增殖来发挥作用。另一方面,MTA3可能具有与MTA1和MTA2相似的致癌基因特性。

在肝细胞癌(HCC)中,MTA3的表达与肿瘤进展和不良预后相关[1]。MTA3在HCC细胞核中过度表达,而在细胞质中下调。这些发现表明MTA3是HCC的致癌基因,预测HCC的不良预后,并可能成为HCC治疗的未来标志物。

在胰腺导管腺癌(PDAC)中,MTA3介导了吉西他滨(GEM)的耐药性,因此可能成为联合化疗的潜在治疗靶点[2]。CRISPR/Cas9激活库筛选显示,MTA3是GEM处理细胞中富集度最高的基因,生物信息学和组织学分析表明其与GEM耐药性高度相关。MTA3在体外和体内实验中促进了PDAC细胞对GEM的耐药性。机制上,作为Mi-2/核小体重塑和脱乙酰化转录抑制复合物的一部分,MTA3转录抑制CRIP2的表达,CRIP2是NF-κB/p65的转录抑制因子,从而激活NF-κB信号通路,导致GEM耐药。此外,GEM处理通过激活STAT3信号通路增加PDAC细胞中MTA3的表达,从而诱导PDAC对GEM的获得性耐药。在患者来源的异种移植(PDX)小鼠模型中,秋水仙碱抑制了MTA3的表达,并增加了肿瘤细胞对GEM的敏感性。基于这些发现,MTA3在PDAC的GEM耐药中起着关键作用,是逆转GEM化疗耐药的潜在治疗靶点。

在2型糖尿病(T2DM)小鼠的Leydig细胞中,T2DM介导的氧化应激抑制了MTA3的表达[3]。胰岛素处理以浓度和时间依赖性方式降低了Leydig细胞中MTA3的表达。这表明胰岛素可能具有直接控制MTA3表达的额外内分泌作用。本研究表明,T2DM介导的MTA3抑制与睾丸氧化应激的增加相关。相反,使用强抗氧化剂褪黑激素处理有效地改善了氧化应激并恢复了MTA3的表达,但未能改变糖尿病小鼠中睾酮缺乏(TD)的血清胰岛素水平。通过多种生化方法,我们证明了氧化应激通过抑制核受体亚家族4组A成员1(NR4A1)介导的MTA3转录激活来抑制MTA3的表达。相比之下,NR4A1的异位表达改善了氧化应激受损的Leydig细胞中MTA3的表达。通过使用有效的体内基因转移方法,即通过慢病毒质粒的微注射,我们发现体内补充MTA3的表达部分恢复了糖尿病小鼠中TD的睾丸类固醇生成并改善了雄性生育能力。因此,我们揭示了氧化应激受损的NR4A1驱动的MTA3转录激活在受刺激的Leydig细胞中的中心调控枢纽,这是调节高胰岛素血症和与TD相关的雄性不育之间串扰的潜在机制。

在高级子宫内膜腺癌中,MTA3的表达下调[4]。子宫内膜腺癌的样本来自200名患者,并使用免疫组化分析MTA3和雌激素受体α和β(ER-α和ER-β)的表达。总的来说,组织学分化等级3的子宫内膜腺癌的MTA3表达显著低于组织学等级1和2的癌(p<0.05)。MTA3的表达在分化差的子宫内膜腺癌中降低,尽管与ER-α和ER-β的表达没有相关性。此外,MTA3的表达不影响无进展生存期、特定原因生存期和总生存期。总的来说,MTA3在本研究中不是独立的预后因素,这表明MTA3不是一个有用的标志物来评估和识别子宫内膜腺癌中的高风险患者。然而,MTA3的下调使这种细胞类型在恶性转化后具有高度转移的潜力,在人类子宫内膜癌变中发挥着至关重要的作用,但其确切作用尚不清楚。

在乳腺癌中,MTA1和MTA3/TRIM21之间的反馈回路调节了乳腺癌的干细胞特性,以响应雌激素[5]。本研究旨在调查MTA1、MTA3和三重基序包含蛋白21(TRIM21)在乳腺癌细胞的增殖、侵袭、上皮-间质转化(EMT)和干细胞样特性中的作用。使用Chromatin免疫沉淀(ChIP)、荧光素酶报告基因、免疫沉淀(IP)和泛素化分析探讨了雌激素调节的MTA1和MTA3/TRIM21之间的反馈回路的分子机制。这些发现表明,MTA1通过抑制包括TRIM21和MTA3在内的肿瘤抑制基因的转录,促进乳腺癌的进展。相反,MTA3抑制MTA1的转录,而TRIM21调节乳腺癌中MTA1蛋白的稳定性。雌激素破坏了MTA1和MTA3以及MTA1和TRIM21之间的平衡,从而影响乳腺癌中的干细胞特性和EMT过程。这些发现表明,MTA1通过MTA3或TRIM21的负反馈回路响应雌激素,在干细胞命运和EMT的等级调控网络中发挥着重要作用,支持MTA1、MTA3和TRIM21作为潜在的预后生物标志物,以及MTA1作为未来乳腺癌治疗的靶点。

在胃食管交界处腺癌中,MTA3表达下调,与预后不良相关[6]。胃食管交界处(GEJ)腺癌的预后较差,这在很大程度上是由于早期和频繁的转移。癌症获得转移潜能涉及上皮-间质转化(EMT)。转移相关基因MTA3是Mi-2/NuRD转录抑制复合物的新成员,已被确定为通过抑制Snail增加E-钙粘蛋白表达来调节EMT的主导调节因子。本研究评估了MTA3途径成分的表达模式及其在GEJ腺癌中的预后意义。与正常组织和低转移潜能的肿瘤细胞系相比,肿瘤组织中的MTA3表达在蛋白质和mRNA水平上均降低。对128例病例的免疫组化分析表明,MTA3表达较低的患者预后较差。MTA3、Snail和E-钙粘蛋白的联合表达改变与恶性特征有更强的相关性。总的来说,结果表明,MTA3调节的EMT途径被改变以促进EMT,从而促进疾病进展,并且MTA3表达是GEJ腺癌患者的一个独立的预后因素。

在绒毛外滋养层细胞(EVT)侵袭中,MTA3通过NuRD复合物进行调节[7]。绒毛外滋养层细胞(EVT)侵袭对于重塑子宫三级动脉和妊娠期间的胎盘发育至关重要。EVT侵袭受损可能导致胎盘相关疾病的病理。转移相关蛋白3(MTA3)是核小体重塑和脱乙酰化(NuRD)复合物的一个亚单位,以一种组蛋白脱乙酰酶依赖的方式抑制转录。MTA3在先兆子痫胎盘中被下调,这表明它在EVT侵袭中具有潜在的作用。本研究通过研究EVT细胞中其分子机制来探讨MTA3在EVT侵袭中的作用。首先,我们使用免疫组化在人胎盘的EVT细胞中确认了MTA3的表达。然后,我们使用慢病毒介导的MTA3短发夹RNA(shRNA)敲低EVT来源的HTR8/SVneo细胞中的MTA3表达,并发现MTA3敲低细胞的侵袭能力更高。使用定量实时PCR,我们发现与对照细胞相比,MTA3敲低细胞中侵袭相关基因基质金属蛋白酶2(MMP2)、基质金属蛋白酶9(MMP9)和转录因子Snail的表达更高。免疫共沉淀-Western印迹分析显示,NuRD的一个亚单位组蛋白脱乙酰酶1(HDAC1)在HTR8/SVneo细胞中与MTA3存在蛋白-蛋白相互作用。免疫共沉淀-质谱分析进一步鉴定了71个与MTA3相互作用的蛋白,包括NuRD亚单位、异染色质蛋白、表观遗传修饰因子和转录因子。这一结果不仅表明NuRD复合物参与了MTA3的功能,还证明了MTA3和NuRD复合物介导的转录抑制在EVT中的复杂的多重协同作用者。总之,我们的数据表明,MTA3通过NuRD复合物调节EVT侵袭和相关基因表达。

MTA3在绒毛外滋养层细胞中调节CGB5和Snail基因的表达[8]。人绒毛膜促性腺激素(hCG)是胎盘绒毛外滋养层分泌的重要激素,在妊娠期间起着重要作用,并需要维持妊娠。先前的研究表明,hCG表达的失调与子痫前期相关。然而,hCG水平改变与子痫前期发展之间的确切关系尚不清楚。转移相关蛋白3(MTA3)是染色质重塑蛋白,在胎盘绒毛外滋养层中大量表达,但其功能尚不清楚。在乳腺癌中,MTA3已被证明抑制Snail和细胞迁移的表达。然而,MTA3是否在绒毛外滋养层中发挥类似作用尚未进行研究。本研究探讨了MTA3在调节绒毛外滋养层细胞系BeWo中的hCG β亚基基因(基因名称:CGB5)和Snail表达中的作用,以及其与子痫前期中hCG高表达水平的相关性。首先,我们通过基因表达微阵列和qRT-PCR比较了先兆子痫胎盘与正常对照胎盘中MTA3的表达,发现先兆子痫胎盘中的MTA3显著下调,而CGB5和Snail均上调。其次,我们敲低绒毛外滋养层细胞系BeWo中的MTA3基因,发现Snail和hCG均上调,这表明MTA3在绒毛外滋养层中抑制Snail和hCG基因的表达。接下来,我们将CGB5和Snail启动子分别克隆到pGL3-basic载体中,发现通过siRNA沉默MTA3导致CGB5和Snail启动子活性增加。为了证实这种MTA3抑制是直接作用,我们进行了染色质免疫沉淀(ChIP)分析,发现MTA3占据了BeWo细胞中Snail和hCG的启动子近端区域。此外,我们通过免疫组化检测了绒毛外滋养层中的MTA3表达,发现MTA3在绒毛细胞滋养层中的表达高于合体滋养层,这支持了MTA3与hCG表达的反向关联。最后,使用特征明显的绒毛外滋养层融合模型,我们检查了 forskolin处理的BeWo细胞中MTA3和hCG的水平,发现MTA3下调伴随着hCG的上调。这些数据进一步表明,MTA3抑制了胎盘绒毛外滋养层中的hCG表达。总的来说,MTA3在抑制胎盘绒毛外滋养层中的hCG和Snail中发挥着重要作用,其失调与子痫前期相关。

在舌鳞状细胞癌(TSCC)中,MTA3-SOX2模块调节了癌症干细胞的特性和临床结果[9]。癌细胞可塑性在肿瘤发生和肿瘤进展中发挥着重要作用。转移相关蛋白3(MTA3),作为核小体重塑和组蛋白脱乙酰酶(NuRD)复合物和多效核心调节因子,在许多癌症类型中可以作为肿瘤抑制因子。然而,MTA3在舌鳞状细胞癌(TSCC)中的作用尚不清楚,尽管它是最常见的头颈癌,且预后往往较差。通过分析已发表的数集和临床标本,我们发现TSCC中MTA3的水平低于正常舌组织。基因集富集分析(GSEA)的数据也表明,MTA3与癌症干细胞特性呈负相关。此外,TSCC患者和TSCC细胞系中MTA3的水平与SOX2的水平呈负相关,SOX2是癌症干细胞(CSCs)可塑性的关键调节因子。我们还发现SOX2在MTA3介导的CSC抑制中发挥着不可或缺的作用。使用模拟人类TSCC的动物模型,我们发现肿瘤发生和进展过程中,MTA3和SOX2的水平分别降低和升高。最后,我们发现MTA3低/SOX2高的患者预后最差,这表明MTA3低/SOX2高可以作为TSCC患者的独立预后因素。总的来说,我们的数据表明,MTA3能够通过下调SOX2来抑制TSCC癌症干细胞特性和肿瘤生长,MTA3低/SOX2高可能是TSCC患者的潜在预后因素。

综上所述,MTA3在多种癌症中发挥着重要作用,包括HCC、PDAC、T2DM相关的Leydig细胞、子宫内膜腺癌、乳腺癌、GEJ腺癌和TSCC。MTA3的功能和表达与癌症的进展和预后密切相关。MTA3在调节癌症干细胞特性、侵袭、转移和耐药性中发挥着重要作用。此外,MTA3还与糖尿病和男性不育等非癌症相关疾病有关。因此,MTA3是癌症研究和治疗的重要靶点,深入了解MTA3的生物学功能和调控机制,对于开发新的治疗策略具有重要意义。

参考文献:
1. Wang, Chuanxi, Li, Guanzhen, Li, Jiamei, Yu, Jinyu, Qin, Chengyong. . Overexpression of the metastasis-associated gene MTA3 correlates with tumor progression and poor prognosis in hepatocellular carcinoma. In Journal of gastroenterology and hepatology, 32, 1525-1529. doi:10.1111/jgh.13680. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27992674/
2. Wu, Liangliang, Ge, Yi, Yuan, Yudong, Hao, Jihui, Huang, Chongbiao. 2022. Genome-wide CRISPR screen identifies MTA3 as an inducer of gemcitabine resistance in pancreatic ductal adenocarcinoma. In Cancer letters, 548, 215864. doi:10.1016/j.canlet.2022.215864. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35981571/
3. Liu, Fei, Chen, Zhen-Zhen, Zhao, Jie, Ma, Jing, Li, Wei. 2022. T2DM-elicited oxidative stress represses MTA3 expression in mouse Leydig cells. In Reproduction (Cambridge, England), 163, 267-280. doi:10.1530/REP-21-0413. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35239504/
4. Brüning, Ansgar, Jückstock, Julia, Blankenstein, Thomas, Kunze, Susanne, Mylonas, Ioannis. . The metastasis-associated gene MTA3 is downregulated in advanced endometrioid adenocarcinomas. In Histology and histopathology, 25, 1447-56. doi:10.14670/HH-25.1447. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20865667/
5. Zhang, Jingyao, Wang, Yinuo, Zhang, Jingjing, Xu, Binghe, Wang, Yan. 2024. The feedback loop between MTA1 and MTA3/TRIM21 modulates stemness of breast cancer in response to estrogen. In Cell death & disease, 15, 597. doi:10.1038/s41419-024-06942-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39154024/
6. Dong, Hongmei, Guo, Hong, Xie, Liangxi, Tan, Dongfeng, Zhang, Hao. 2013. The metastasis-associated gene MTA3, a component of the Mi-2/NuRD transcriptional repression complex, predicts prognosis of gastroesophageal junction adenocarcinoma. In PloS one, 8, e62986. doi:10.1371/journal.pone.0062986. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23671646/
7. Chen, Ying, Khoo, Sok Kean, Leach, Richard, Wang, Kai. 2017. MTA3 Regulates Extravillous Trophoblast Invasion Through NuRD Complex. In AIMS medical science, 4, 17-27. doi:10.3934/medsci.2017.1.17. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28959722/
8. Chen, Ying, Miyazaki, Jun, Nishizawa, Haruki, Leach, Richard, Wang, Kai. 2013. MTA3 regulates CGB5 and Snail genes in trophoblast. In Biochemical and biophysical research communications, 433, 379-84. doi:10.1016/j.bbrc.2013.02.102. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23510993/
9. Yao, Zhimeng, Du, Liang, Xu, Min, Coppes, Robert P, Zhang, Hao. 2019. MTA3-SOX2 Module Regulates Cancer Stemness and Contributes to Clinical Outcomes of Tongue Carcinoma. In Frontiers in oncology, 9, 816. doi:10.3389/fonc.2019.00816. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31552166/