Slc8a2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Slc8a2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00904

品系全称

C57BL/6JCya-Slc8a2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-110891-Slc8a2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Slc8a2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00904) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
solute carrier family 8 (sodium/calcium exchanger), member 2
基因别称
Ncx2
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_148946.3 | Ensembl: ENSMUST00000211649
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1165 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:107996The clearance of elevated calcium following depolarization is delayed in homozygous mutant mice, which exhibit enhanced learning and memory.
SLC8A2,也称为Na+/Ca2+交换蛋白2或NCX2,是SLC8基因家族成员之一,编码Na+/Ca2+交换器(NCX)的一种。SLC8家族的蛋白负责调节细胞内的Ca2+水平,这对于多种细胞过程至关重要,包括神经递质释放、肌肉收缩、基因表达和细胞信号传导。NCX蛋白通过将Ca2+从细胞内泵出并与Na+进入细胞进行交换,维持细胞内Ca2+的稳态。SLC8A2主要在神经和胶质细胞中表达,参与神经元去极化后的Ca2+清除、突触可塑性、学习和记忆的巩固过程,以及在卒中后的神经保护作用。SLC8A2的表达受多种转录因子的调控,如Sp1、Sp4和CREB1,这些转录因子在突触可塑性和神经元存活中起重要作用[5]。

SLC8A2的表达具有组织特异性,仅在正常脑组织中表达,而在其他正常组织和胶质瘤中不存在。这表明SLC8A2可能是一种胶质瘤抑制基因。研究发现,在U87MG胶质母细胞瘤细胞中稳定转染SLC8A2基因可以完全抑制U87MG细胞在小鼠体内的致瘤性。SLC8A2的过表达对细胞增殖或细胞周期没有影响,但损害了U87MG细胞的侵袭和迁移能力,这可能是通过抑制ERK1/2信号通路,降低NF-κB的核转位和DNA结合活性,减少基质金属蛋白酶(MMPs)和尿激酶型纤溶酶原激活剂(uPA)及其受体(uPAR)系统的水平,以及改变上皮-间质转化(EMT)相关蛋白E-钙粘蛋白、波形蛋白和Snail的蛋白水平实现的。此外,SLC8A2还抑制了U87MG细胞的血管生成,可能是通过同时抑制内皮依赖性和非依赖性血管生成(血管拟态模式)来实现的。因此,SLC8A2作为一种肿瘤抑制基因,可以抑制胶质母细胞瘤的侵袭、血管生成和生长[1]。

除了在胶质母细胞瘤中的作用外,SLC8A2还与其他疾病有关。研究发现,C3orf20基因区域的rs12496846多态性与术后镇痛需求相关,而SLC8A2基因的表达在脑中也受到影响。携带rs12496846 G等位基因的患者在术后24小时内的镇痛需求显著增加,并且这些患者脑中C3orf20基因的mRNA表达水平也显著降低。这表明rs12496846 SNP可能作为预测镇痛需求的标记物[2]。

此外,SLC8A2还与结肠腺癌的预后相关。研究发现,钙外排相关基因的表达水平可以构建一个预后风险模型,用于预测结肠腺癌患者的预后。高钙外排相关基因风险评分的患者比低风险组的患者预后更差。此外,高风险组患者的KRAS突变率更高,而MUC16突变率更低,表明KRAS和MUC16突变与结肠腺癌中的钙稳态密切相关。研究还发现,SLC8A3和SLC24A4是两种新的肿瘤抑制基因,参与结直肠癌的进展[3]。

在脓毒症中,SLC8A2的磷酸肽的观察频率也显著增加。研究发现,与ICU对照组相比,脓毒症患者血浆中SLC8A2的磷酸肽观察频率显著增加。这表明SLC8A2可能在脓毒症的发生和发展中发挥作用[4]。

SLC8A2在胚胎发育中也发挥作用。研究发现,SLC8A2在胚胎小鼠的亚板层中特异性表达,参与突触形成、轴突生长和引导过程。在reeler突变体中,由于亚板层的位置改变,SLC8A2的表达也随之改变。这表明SLC8A2在脑发育过程中发挥重要作用[6]。

此外,SLC8A2还与母体雄激素过多引起的子代心脏肥大和左心室功能障碍有关。研究发现,母体肥胖和多囊卵巢综合征(PCOS)的表型是由慢性高脂肪高糖摄入和孕期DHT暴露引起的。孕期暴露于DHT的女性子代在成年后出现心脏肥大,但并未伴随异常的代谢特征。PNA子代心脏中与心脏肥大相关的关键基因的表达上调,而NADPH氧化酶的活性下调。新生PNA心脏中,与心脏肥大重塑相关的转录因子和钙处理基因SLC8A2的表达上调。这表明宫内雄激素暴露可导致女性子代长期的心脏重塑,与左心室肥厚相关,并可能增加患有PCOS的母亲所生女儿发生心脏功能障碍的风险[7]。

在人类胶质瘤中,SLC8A2的表达通常缺失。研究发现,在19q13.3区域的杂合性缺失是胶质瘤中的常见遗传改变,这表明该染色体区域可能存在胶质瘤特异性肿瘤抑制基因。SLC8A2位于19q13.32染色体上,编码Na+/Ca2+交换器,参与细胞内Ca2+稳态的维持。其表达仅限于脑组织,在胶质瘤中不存在。研究发现,除了三个已知的基因内单核苷酸多态性(SNPs)外,在所有肿瘤样本中均未检测到SLC8A2的序列变异。此外,SLC8A2启动子区域的CpG岛未甲基化。有趣的是,位于外显子2、内含子2-3和外显子3中的三个基因体CpG岛以及与所谓的CpG岛岸相关的5' CpG富集区域在所有八个胶质瘤样本和三个已建立的胶质瘤细胞系中都发生了甲基化。令人惊讶的是,将DNA甲基化抑制剂5-aza-2'-脱氧胞苷添加到NCX2完全沉默的胶质瘤细胞系中可以激活NCX2。结果表明,DNA甲基化可能在NCX2的转录沉默中起关键作用[8]。

此外,19q13.32微缺失综合征与SLC8A2的缺失有关。研究发现,19q13.32微缺失与智力障碍、面部不对称、眼睑下垂、眼动异常、口面部裂隙、心脏缺陷、脊柱侧凸和慢性便秘等独特表型相关。研究发现,三个无关联的患者都存在19q13.32微缺失,表现为发育迟缓和面部畸形。这些发现表明,19q13.32微缺失综合征可能与SLC8A2等基因的缺失相关,这些基因在脑实质、胶质、心脏、胃肠道和肌肉骨骼系统中表达,可能在表达这种表型中起重要作用[9]。

综上所述,SLC8A2是一种重要的Na+/Ca2+交换蛋白,参与细胞内Ca2+稳态的维持,并在多种生物学过程中发挥作用。SLC8A2在胶质母细胞瘤中作为一种肿瘤抑制基因,可以抑制肿瘤的侵袭、血管生成和生长。此外,SLC8A2还与其他疾病有关,如术后镇痛需求、结肠腺癌预后、脓毒症、脑发育和母体雄激素过多引起的子代心脏肥大和左心室功能障碍。SLC8A2的缺失可能与胶质瘤的发生和发展相关,并且可能与19q13.32微缺失综合征的表型相关。因此,SLC8A2的研究对于理解其在多种疾病中的作用机制以及开发针对SLC8A2的药物具有重要意义。

参考文献:
1. Qu, Mingqi, Yu, Ju, Liu, Hongyuan, Bu, Xingyao, Lan, Qing. 2017. The Candidate Tumor Suppressor Gene SLC8A2 Inhibits Invasion, Angiogenesis and Growth of Glioblastoma. In Molecules and cells, 40, 761-772. doi:10.14348/molcells.2017.0104. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29047259/
2. Nishizawa, Daisuke, Nagashima, Makoto, Kasai, Shinya, Hayashida, Masakazu, Ikeda, Kazutaka. 2022. Associations between the C3orf20 rs12496846 Polymorphism and Both Postoperative Analgesia after Orthognathic and Abdominal Surgeries and C3orf20 Gene Expression in the Brain. In Pharmaceutics, 14, . doi:10.3390/pharmaceutics14040727. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35456561/
3. Jin, Mingpeng, Yin, Chun, Yang, Jie, Zhu, Jianjun, Yuan, Jian. 2024. Identification and validation of calcium extrusion-related genes prognostic signature in colon adenocarcinoma. In PeerJ, 12, e17582. doi:10.7717/peerj.17582. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39006025/
4. Thavarajah, Thanusi, Dos Santos, Claudia C, Slutsky, Arthur S, Romaschin, Alexander, Marshall, John G. 2020. The plasma peptides of sepsis. In Clinical proteomics, 17, 26. doi:10.1186/s12014-020-09288-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32636717/
5. Calabrese, Lucrezia, Serani, Angelo, Natale, Silvia, Annunziato, Lucio, Molinaro, Pasquale. 2022. Identification and characterization of the promoter and transcription factors regulating the expression of cerebral sodium/calcium exchanger 2 (NCX2) gene. In Cell calcium, 102, 102542. doi:10.1016/j.ceca.2022.102542. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35114589/
6. Oeschger, Franziska M, Wang, Wei-Zhi, Lee, Sheena, Rakic, Sonja, Molnár, Zoltán. 2011. Gene expression analysis of the embryonic subplate. In Cerebral cortex (New York, N.Y. : 1991), 22, 1343-59. doi:10.1093/cercor/bhr197. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21862448/
7. Manti, Maria, Fornes, Romina, Pironti, Gianluigi, Andersson, Daniel, Stener-Victorin, Elisabet. . Maternal androgen excess induces cardiac hypertrophy and left ventricular dysfunction in female mice offspring. In Cardiovascular research, 116, 619-632. doi:10.1093/cvr/cvz180. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31382275/
8. Qu, M, Jiao, H, Zhao, J, Kere, J, Nistér, M. 2010. Molecular genetic and epigenetic analysis of NCX2/SLC8A2 at 19q13.3 in human gliomas. In Neuropathology and applied neurobiology, 36, 198-210. doi:10.1111/j.1365-2990.2010.01070.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20132488/
9. Castillo, Angela, Kramer, Nancy, Schwartz, Charles E, Rosenfeld, Jill A, Graham, John M. 2014. 19q13.32 microdeletion syndrome: three new cases. In European journal of medical genetics, 57, 654-8. doi:10.1016/j.ejmg.2014.08.009. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25230004/