Sri-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Sri-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00781

品系全称

C57BL/6JCya-Sriem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-109552-Sri-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Sri-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00781) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
sorcin
基因别称
2210417O06Rik,2900070H08Rik,Sor
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_025618 | Ensembl: ENSMUST00000088786
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~3.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:98419Mice homozgyous for a knock-out allele exhibit impaired glucose tolerance and decreased circulating insulin levels.
基因Sri,也称为SRI-41315,是一种小分子化合物,对真核生物中的翻译终止过程具有显著影响。翻译终止是细胞内一个关键的生物学过程,它涉及识别并终止蛋白质的合成。在真核生物中,翻译终止需要eRF1(eukaryotic release factor 1)这一蛋白质,它能够识别终止密码子,催化新合成的蛋白质从核糖体上释放,并促进核糖体的再循环。

SRI-41315能够触发eRF1的降解,从而增强对提前终止密码子的翻译通过,这对于治疗因提前终止密码子而导致的疾病具有重要意义[1]。SRI-41315的作用机制是通过在eRF1的N结构域(负责终止密码子识别的部分)和核糖体亚基的解码中心附近的界面之间充当金属依赖性分子胶来实现的[1]。这种作用导致eRF1保留在核糖体上,进而引起核糖体碰撞,eRF1泛素化,并提高在近同源终止密码子处的翻译终止频率[1]。

在另一项研究中,SRI与一种被称为疟疾的疾病相关。疟疾是由一种称为疟原虫的寄生虫引起的,这种寄生虫感染人类红细胞并导致严重的健康问题。在斯里兰卡,研究人员分析了疟疾患者的宿主基因表达水平,并与健康个体和由其他病原体引起的败血症患者进行了比较[2]。研究发现,与由其他病原体引起的败血症相比,疟疾患者中与炎症反应相关的基因(如TLR4和HMGB1)和与抗原呈递相关的基因(如MICB、PSMB2、PSMB8和PSME2)的表达显著下调,而抗炎基因IL4的表达则上调[2]。这些发现表明,SRI基因可能在疟疾的发病机制中发挥重要作用。

此外,SRI基因还与水稻抗稻瘟病基因Pi-ta的多样性有关。Pi-ta是一种从水稻品种中导入的抗稻瘟病基因。在斯里兰卡水稻种质资源中,研究人员通过生物信息学、分子和疾病反应分析研究了Pi-ta基因的多样性[3]。研究发现,在47个斯里兰卡水稻品种中,10个品种具有Pi-ta基因的抗性等位基因,而其他品种则表现出高度的基因多态性,导致9种不同的等位基因类型[3]。这些发现表明,SRI基因可能在水稻对稻瘟病的抗性中发挥重要作用。

最后,SRI基因还与印度水牛的遗传多样性、杂交和适应性有关。印度水牛是一种在多种农业生态系统中具有重要作用的牛种,它们能够适应从极端炎热干旱地区到炎热湿润热带地区的环境。通过对354头印度水牛的57个品种/群体的全基因组测序数据进行分析,研究人员揭示了印度水牛从印度次大陆向东亚的迁移可能沿着沿海路线进行,并检测到来自其他牛种的杂交[4]。研究发现,携带形态、免疫和耐热相关基因的基因组区域经历了根据亚洲农业生态系统的不同而发生的分歧选择[4]。这些发现表明,SRI基因可能在印度水牛对环境的适应性中发挥重要作用。

综上所述,SRI基因是一个具有多方面功能的基因,它参与调控翻译终止过程、影响疟疾的发病机制、与水稻对稻瘟病的抗性相关,并与印度水牛的遗传多样性和适应性有关。进一步研究SRI基因的功能和作用机制将有助于深入理解其在生物学过程中的重要性,并为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Coelho, João P L, Yip, Matthew C J, Oltion, Keely, Taunton, Jack, Shao, Sichen. 2024. The eRF1 degrader SRI-41315 acts as a molecular glue at the ribosomal decoding center. In Nature chemical biology, 20, 877-884. doi:10.1038/s41589-023-01521-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38172604/
2. Krishnananthasivam, Shivankari, Jayathilaka, Nimanthi, Sathkumara, Harindra Darshana, Natesan, Mohan, De Silva, Aruna Dharshan. 2017. Host gene expression analysis in Sri Lankan melioidosis patients. In PLoS neglected tropical diseases, 11, e0005643. doi:10.1371/journal.pntd.0005643. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28628607/
3. Terensan, Suvanthini, Fernando, H Nishadi S, Silva, J Nilanthi, Kottearachchi, Nisha S, Weerasena, O V D S Jagathpriya. 2021. In silico molecular and morphological analysis of rice blast resistant gene Pi-ta in Sri Lankan rice germplasm. In Journal, genetic engineering & biotechnology, 19, 163. doi:10.1186/s43141-021-00239-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34676451/
4. Chen, Ningbo, Xia, Xiaoting, Hanif, Quratulain, Jiang, Yu, Lei, Chuzhao. 2023. Global genetic diversity, introgression, and evolutionary adaptation of indicine cattle revealed by whole genome sequencing. In Nature communications, 14, 7803. doi:10.1038/s41467-023-43626-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38016956/