Fam50b-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Fam50b-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00672

品系全称

C57BL/6JCya-Fam50bem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-108161-Fam50b-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Fam50b-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00672) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
family with sequence similarity 50, member B
基因别称
D0H6S2654E,X5L,XAP-5-like
染色体号
Chr 13 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_138746 | Ensembl: ENSMUST00000221037
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
--
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Fam50b,也称为FAM50B,是一种人类基因,属于FAM50家族。FAM50家族是一个多基因家族,其成员在细胞功能和生物过程中发挥着重要作用。Fam50b基因的具体功能尚不完全清楚,但研究表明它在肿瘤发生、生殖细胞发育和表观遗传调控等方面具有重要作用。

Fam50b基因在肿瘤细胞中表现出重要的功能。研究表明,Fam50b基因的沉默在多种肿瘤类型中发生,包括非梗阻性无精子症(NOA)和睾丸生殖细胞肿瘤[2]。Fam50b基因的沉默可能导致细胞适应性和肿瘤生长的调节[1]。此外,Fam50b基因的表达与肿瘤细胞对化疗药物的反应有关,其表达水平的改变可能影响肿瘤细胞的存活和治疗效果。

Fam50b基因在生殖细胞发育中也发挥着重要作用。研究表明,Fam50b基因的表达受到印记调控,即在父源和母源染色体上的表达存在差异[3]。Fam50b基因的印记调控可能在精子发生和生殖细胞肿瘤的发生中发挥重要作用。此外,Fam50b基因的甲基化水平与精子DNA碎片化程度有关,精子DNA碎片化可能导致男性不育[6]。

Fam50b基因的表观遗传调控机制也得到了研究。研究发现,Fam50b基因启动子区域的甲基化水平与基因表达相关,甲基化水平的改变可能影响基因的表达和功能[4]。此外,Fam50b基因的表达与RNA剪接调控有关,RNA剪接的异常可能导致基因功能的改变[5]。

综上所述,Fam50b基因在肿瘤发生、生殖细胞发育和表观遗传调控等方面发挥着重要作用。Fam50b基因的沉默和表达改变可能与肿瘤的发生和发展有关,其印记调控和甲基化水平可能影响基因的表达和功能。进一步研究Fam50b基因的功能和调控机制,有助于深入理解其在人类疾病中的作用,并为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Thompson, Nicola A, Ranzani, Marco, van der Weyden, Louise, Jackson, Stephen P, Adams, David J. 2021. Combinatorial CRISPR screen identifies fitness effects of gene paralogues. In Nature communications, 12, 1302. doi:10.1038/s41467-021-21478-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33637726/
2. Malcher, Agnieszka, Stokowy, Tomasz, Berman, Andrea, Yatsenko, Alexander N, Kurpisz, Maciej K. 2022. Whole-genome sequencing identifies new candidate genes for nonobstructive azoospermia. In Andrology, 10, 1605-1624. doi:10.1111/andr.13269. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36017582/
3. Zhang, Aiping, Skaar, David A, Li, Yue, Murphy, Susan K, Jirtle, Randy L. 2011. Novel retrotransposed imprinted locus identified at human 6p25. In Nucleic acids research, 39, 5388-400. doi:10.1093/nar/gkr108. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21421564/
4. Xu, J, Zhang, A, Zhang, Z, Xing, Q, Du, J. 2016. DNA methylation levels of imprinted and nonimprinted genes DMRs associated with defective human spermatozoa. In Andrologia, 48, 939-947. doi:10.1111/and.12535. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26804237/
5. Qiu, Jiting, Wang, Chunhui, Hu, Hongkang, Ding, Xuehua, Cai, Yu. 2020. Transcriptome analysis and prognostic model construction based on splicing profiling in glioblastoma. In Oncology letters, 21, 138. doi:10.3892/ol.2020.12399. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33552257/
6. Zhu, Weijian, Jiang, Lei, Pan, Chengshuang, Huang, Xuefeng, Ni, Wuhua. 2021. Deoxyribonucleic acid methylation signatures in sperm deoxyribonucleic acid fragmentation. In Fertility and sterility, 116, 1297-1307. doi:10.1016/j.fertnstert.2021.06.025. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34253331/