Rnh1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Rnh1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00595

品系全称

C57BL/6JCya-Rnh1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-107702-Rnh1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Rnh1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00595) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ribonuclease/angiogenin inhibitor 1
基因别称
RNH
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_145135 | Ensembl: ENSMUST00000106033
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3~8
敲除长度
~3.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1195456Mice homozygous for a knock-out allele exhibit complete embryonic lethality and anemia associated with defects in embryonic erythropoiesis, erythroid differentiation, and GATA1 translation. Heterozygotes exhibit decreased adult erythropoiesis in spleen.
基因Rnh1,也称为RNase H1或ribonuclease H1,是一种重要的核糖核酸酶,能够特异性地降解RNA-DNA杂交体中的RNA链。在真核生物中,Rnh1基因的表达和功能与多种生物学过程密切相关,包括细胞分化、发育、代谢和疾病发生。

在克鲁蒂迪亚·法西库拉塔(Crithidia fasciculata)中,Rnh1基因编码两种蛋白质形式:一种38 kDa的蛋白质和一种45 kDa的蛋白质,分别定位于线粒体和细胞核。研究显示,Rnh1基因的开放阅读框(ORF)预测编码一个53.7 kDa的蛋白质。通过在Rnh1基因的C端插入表位标签,发现该蛋白质定位于线粒体和细胞核。进一步的研究表明,Rnh1基因的翻译起始位点位于第二个内框甲硫氨酸密码子,预测编码一个38 kDa的蛋白质。通过在ORF的第一个ATG密码子和第二个内框ATG密码子之间插入两个连续的终止密码子,发现仅表达38 kDa的蛋白质,并且该蛋白质特异性地定位于细胞核。而将第二个甲硫氨酸密码子突变为缬氨酸密码子,导致仅表达45 kDa的蛋白质,并且该蛋白质特异性地定位于线粒体。这些结果表明,线粒体酶是由全长53.7 kDa蛋白质的加工产生的,而细胞核酶则是由翻译起始位点位于第二个内框ATG密码子的ORF产生的。这是在锥虫中首次发现的由单个基因产生核和线粒体两种蛋白质形式的例子,也是唯一一个已知编码线粒体RNase H的RNA酶HI基因家族的基因[1]。

在膀胱癌中,Rnh1的表达与预后密切相关。研究发现,低Rnh1表达与膀胱癌的侵袭和转移能力增强有关。通过对Rnh1相关基因的功能状态分析,确定了95个与侵袭和转移相关的核心基因。富集分析表明,这些核心基因与免疫激活显著相关。进一步的研究表明,Rnh1能够塑造炎症肿瘤微环境(TME),促进免疫反应循环的激活,并有可能预测免疫检查点阻断(ICB)治疗反应。此外,高Rnh1表达与多种治疗信号通路和药物靶点相关,表明Rnh1在膀胱癌的治疗中具有重要的临床价值[2]。

Rnh1基因的破坏导致克鲁蒂迪亚·法西库拉塔细胞中两种活性形式的RNase H(38 kDa和45 kDa)的丧失。通过使用潮霉素或G418抗性盒进行基因敲除,发现野生型细胞或仅一个Rnh1等位基因被破坏的细胞提取物中存在两种活性形式的RNase H。而在两个Rnh1等位基因都被破坏的细胞提取物中,这两种活性形式的RNase H均缺失,表明克鲁蒂迪亚·法西库拉塔的RNase H的两种形式均由Rnh1基因编码[3]。

Rnh1介导的细胞类型特异性翻译调节机制研究表明,Rnh1缺失导致造血起源细胞的全局翻译选择性降低,而非造血起源细胞的全局翻译不受影响。进一步的研究发现,Rnh1介导的细胞类型特异性翻译与angiogenin诱导的核糖体生物合成相关。这些研究结果揭示了细胞类型特异性全局翻译调节剂的存在,并强调了脊椎动物中复杂的翻译调节机制[4]。

在神经系统中,Rnh1的表达与神经元损伤和再生过程以及分化的少突胶质细胞相关。研究发现,Rnh1通过RhoA-ROCK信号通路促进少突胶质细胞的分化和髓鞘形成。此外,Rnh1的表达变化调节了少突胶质细胞中Fyn的表达和磷酸化,Fyn是RhoA活性的调节因子。这些结果表明,Rnh1介导的RhoA激活增强了少突胶质细胞的分化和髓鞘形成[5]。

Rnh1作为一种核糖核酸酶抑制剂,在细胞中发挥着重要的保护作用。研究发现,敲除Rnh1基因的HeLa细胞对分泌型核糖核酸酶的致死性核糖核酸酶活性变得敏感。这表明Rnh1能够保护细胞质RNA免受入侵的核糖核酸酶的降解[6]。

RNase H1在果蝇的线粒体DNA复制中发挥重要作用。研究发现,RNase H1的RNA干扰(RNAi)导致果蝇S2细胞的线粒体DNA完整性和拷贝数受损,并且在完整的果蝇中也产生了线粒体功能障碍的表型。此外,RNase H1的敲低和过表达对mtDNA复制中间体产生了相反的影响。RNase H1的缺失导致这些区域中复制中间体的积累,丰富的mtDNA分子通过四向连接连接,并且物种与叉子回归的起源一致。这些结果表明,RNase H1的缺乏导致复制停滞,可能由于未加工的RNA/DNA杂合体的存在,导致折叠的叉子降解或通过链入侵机制重新复制[7]。

Rnh1在红细胞生成中发挥重要作用。研究发现,Rnh1缺失的小鼠在胚胎发育的早期阶段死亡,这是由于从祖细胞产生成熟红细胞的能力受损。在Rnh1缺失的胚胎中,Gata1 mRNA水平正常,但GATA1蛋白水平降低。进一步的研究发现,Rnh1与核糖体的40S亚基结合,促进Gata1 mRNA在多聚体上的形成,从而控制GATA1 mRNA的特异性翻译。此外,Rnh1在人类CD34+祖细胞中的敲低降低了红系分化,而不影响髓系生成。这些结果表明,Rnh1在控制GATA1 mRNA翻译和红细胞生成中发挥着重要作用[8]。

R-loop的动态与RNA聚合酶II的调控关系研究表明,R-loop的形成与RNA聚合酶II的丰度相关,包括活性启动子和增强子,以及H3K27me3修饰的抑制区域和基因间重复序列。通过敲除Spt6,发现全局R-loop的形成与RNA聚合酶II的暂停相关。重要的是,根据基因长度,基因经历了上调或下调,这两种情况在很大程度上被rnh1过表达所逆转,表明R-loop在转录的分歧调控中发挥着重要作用。DNA损伤、存活缺陷和角质层发育异常也得到了缓解[9]。

综上所述,基因Rnh1在多种生物学过程中发挥着重要作用。Rnh1基因编码的蛋白质具有细胞类型特异性,能够定位于细胞核和线粒体。Rnh1的表达与膀胱癌的侵袭和转移能力密切相关,并有可能预测免疫治疗反应。Rnh1基因的破坏导致克鲁蒂迪亚·法西库拉塔细胞中两种活性形式的RNase H的丧失。Rnh1介导的细胞类型特异性翻译调节机制表明,Rnh1缺失导致造血起源细胞的全局翻译选择性降低。Rnh1在神经系统中促进少突胶质细胞的分化和髓鞘形成。Rnh1作为一种核糖核酸酶抑制剂,保护细胞质RNA免受入侵的核糖核酸酶的降解。RNase H1在果蝇的线粒体DNA复制中发挥重要作用。Rnh1在红细胞生成中通过控制GATA1 mRNA的翻译发挥重要作用。R-loop的动态与RNA聚合酶II的调控关系研究表明,R-loop在基因表达调控、基因组稳定性维持和果蝇的发育中发挥着重要作用。Rnh1的研究有助于深入理解其在细胞分化、发育、代谢和疾病发生中的生物学功能和调控机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Engel, M L, Hines, J C, Ray, D S. . The Crithidia fasciculata RNH1 gene encodes both nuclear and mitochondrial isoforms of RNase H. In Nucleic acids research, 29, 725-31. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11160895/
2. Chen, Sen, Ran, Jun, Fan, Zhouqian, Peng, Jian, Hu, Zuquan. 2023. Functional status analysis of RNH1 in bladder cancer for predicting immunotherapy response. In Scientific reports, 13, 12625. doi:10.1038/s41598-023-39827-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37537337/
3. Ray, D S, Hines, J C. . Disruption of the Crithidia fasciculata RNH1 gene results in the loss of two active forms of ribonuclease H. In Nucleic acids research, 23, 2526-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7630731/
4. Stillinovic, Martina, Sarangdhar, Mayuresh Anant, Andina, Nicola, Angelillo-Scherrer, Anne, Allam, Ramanjaneyulu. 2024. Ribonuclease inhibitor and angiogenin system regulates cell type-specific global translation. In Science advances, 10, eadl0320. doi:10.1126/sciadv.adl0320. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38820160/
5. Zhao, C F, Liu, Y, Que, H P, Hui, H D, Liu, Shaojun. 2013. Rnh1 promotes differentiation and myelination via RhoA in oligodendrocytes. In Cell and tissue research, 353, 381-9. doi:10.1007/s00441-013-1625-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23624614/
6. Neu, Carolina, Beckers, Christian, Frank, Nadine, Kraemer, Sandra, Zechendorf, Elisabeth. 2024. Ribonuclease inhibitor 1 emerges as a potential biomarker and modulates inflammation and iron homeostasis in sepsis. In Scientific reports, 14, 14972. doi:10.1038/s41598-024-65778-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38951571/
7. Thomas, Sydney P, Kim, Eunji, Kim, Jin-Soo, Raines, Ronald T. 2016. Knockout of the Ribonuclease Inhibitor Gene Leaves Human Cells Vulnerable to Secretory Ribonucleases. In Biochemistry, 55, 6359-6362. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27806571/
8. González de Cózar, Jose M, Gerards, Mike, Teeri, Eveliina, Jacobs, Howard T, Jõers, Priit. 2019. RNase H1 promotes replication fork progression through oppositely transcribed regions of Drosophila mitochondrial DNA. In The Journal of biological chemistry, 294, 4331-4344. doi:10.1074/jbc.RA118.007015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30635398/
9. Chennupati, Vijaykumar, Veiga, Diogo Ft, Maslowski, Kendle M, Hoang, Trang, Allam, Ramanjaneyulu. 2018. Ribonuclease inhibitor 1 regulates erythropoiesis by controlling GATA1 translation. In The Journal of clinical investigation, 128, 1597-1614. doi:10.1172/JCI94956. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29408805/