Eaf2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Eaf2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00502

品系全称

C57BL/6JCya-Eaf2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-106389-Eaf2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Eaf2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00502) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ELL associated factor 2
基因别称
FESTA-L,FESTA-S,Festa,Traits,U19
染色体号
Chr 16 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001113401.1 | Ensembl: ENSMUST00000114829
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 4
敲除长度
~646 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2146616Mice homozygous for a null allele exhibit premature death, enlarged heart and prostate associated with hypertrophy, increased tumor incidence, prostate inflammation and an increased prostatic intraepithelial neoplasia incidence.
Eaf2,也称为ELL-associated factor 2,是一种在多种生物学过程中发挥重要作用的肿瘤抑制基因。它最早在1997年被发现,作为一种雄激素反应基因。Eaf2在前列腺癌中表现出肿瘤抑制功能,同时,序列研究也表明Eaf2与多种恶性疾病和多种生理过程有关,如转录、凋亡、胚胎发生和DNA修复。进一步理解Eaf2将为癌症,尤其是前列腺癌,提供新的治疗方法和策略。

Eaf2在前列腺癌中发挥重要作用。研究发现,Eaf2通过Ku70/Ku80调节DNA修复。Eaf2敲除或其同源基因EAF1的敲低,使前列腺癌细胞对DNA损伤更为敏感,并且这种敏感性不需要p53。Eaf2敲除小鼠的前列腺也对γ射线更为敏感。此外,Eaf2敲除阻止了雄激素对LNCaP或C4-2细胞从多柔比星诱导的γH2ax(一种DNA损伤标记物)的抑制。在人类前列腺癌标本中,Eaf2的表达与γH2ax的水平呈负相关。进一步分析显示,Eaf2和EAF1对于Ku70/Ku80在DNA损伤位点上的招募和保留是必需的,并在非同源末端连接DNA修复中发挥功能性作用。这些发现为Eaf2作为介导雄激素保护DNA损伤的关键因素提供了证据[1]。

Eaf2的下降调节在前列腺癌中招募肿瘤相关巨噬细胞。Eaf2作为一种肿瘤抑制基因,在前列腺癌中常被下调。研究发现,Eaf2基因敲除小鼠表现出大量的炎症细胞浸润到前列腺基质中。一项研究选取了38名被诊断为前列腺癌并接受根治性前列腺切除术的患者,通过免疫组织化学(IHC)染色研究了Eaf2和CD163之间的潜在相关性。此外,还进行了体外实验,以验证Eaf2表达与巨噬细胞迁移和极化的关系。研究表明,在人类前列腺癌标本中,Eaf2的表达明显下调,这种减少与CD163阳性巨噬细胞浸润肿瘤组织的数量呈负相关。细胞共培养实验表明,当Eaf2被敲除时,肿瘤细胞对巨噬细胞的趋化作用增强,巨噬细胞分化为肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)。此外,细胞因子蛋白质微阵列显示,在Eaf2敲除后,巨噬细胞迁移抑制因子(MIF)的表达增加。这些发现表明,Eaf2可能通过MIF参与前列腺癌中CD163阳性巨噬细胞的浸润[2]。

Eaf2通过破坏其与共激活因子CBP/p300的相互作用来抑制缺氧诱导因子1α(HIF-1α)的转录活性。研究表明,Eaf2是一种缺氧反应基因,其启动子中包含缺氧反应元件(HRE)。Eaf2结合并抑制HIF-1α,但不抑制HIF-2α的转录活性。此外,Eaf2抑制HIF-1α活性是通过破坏p300的招募实现的,并且这种破坏独立于FIH-1和Sirt1。Eaf2还保护细胞免受缺氧诱导的细胞死亡,并在缺氧条件下抑制细胞的葡萄糖摄取。这些发现不仅揭示了一个Eaf2和HIF-1α之间的独特反馈调节环路,还为了解Eaf2的肿瘤抑制机制提供了新的见解[3]。

Eaf2在结直肠癌中发挥重要作用。研究发现,Eaf2在结直肠癌组织中低表达。Kaplan-Meier生存分析显示,高Eaf2水平组的生存率高于低Eaf2水平组。结果表明,Eaf2作为一种肿瘤抑制因子,可能通过调节信号转导和转录激活因子3/转化生长因子-β1交叉对话途径,抑制结直肠癌细胞的侵袭、转移和血管生成,并在结直肠癌的发生和发展中发挥癌症抑制和保护作用[4]。

Eaf2和p53在前列腺癌中共同调节STAT3的激活。Eaf2和p53是前列腺癌中经常失调的肿瘤抑制基因。研究发现,同时缺失Eaf2和p53的小鼠模型诱导了前列腺肿瘤的发生,并且同时敲低Eaf2和p53的前列腺癌细胞增强了增殖和迁移。RNA-seq分析确定了p53和Eaf2同时敲低后差异表达的基因,其中一些基因与STAT3信号通路相关。STAT3敲低消除了Eaf2和p53同时敲低对C4-2细胞增殖的刺激作用。此外,在Eaf2下调和/或p53核染色的人前列腺癌标本中,p-STAT3的免疫染色增加。这些发现表明,Eaf2和p53的同时失活可以激活STAT3并促进前列腺肿瘤的发生[5]。

Eaf2通过Wnt信号通路保护人晶状体上皮细胞免受氧化应激诱导的凋亡。Eaf2在晶状体发育和成熟中起着重要作用,但其对氧化应激诱导的白内障形成的作用尚不清楚。研究发现,Eaf2能够通过抑制caspase 3的产生和激活Wnt3a信号通路,有效抑制H2O2诱导的HLE细胞凋亡。此外,在Eaf2过表达细胞中敲低Wnt3a明显抵消了Eaf2在对抗H2O2诱导的凋亡中的作用。这些发现表明,Eaf2可能通过激活Wnt3a信号通路抑制HLE-B3细胞氧化应激诱导的凋亡[6]。

Eaf2/U19和Pten的协同失活在小鼠模型中促进前列腺癌的发生。研究发现,Eaf2/U19和Pten的失活或下调在晚期前列腺癌中经常发生。Eaf2敲除小鼠在多个器官中形成肿瘤,并且在2岁时没有发展为前列腺癌。为了进一步确定Eaf2在前列腺癌发生中的作用,研究者将Pten+/-和EAF2+/-小鼠在C57/BL6背景中杂交,生成了EAF2-/-Pten+/-、Pten+/-、EAF2-/-和野生型小鼠。结果表明,Eaf2功能缺失和Pten等位基因的失活共同诱导了33%的小鼠自发前列腺癌。同时,在Gleason评分为8-9分的临床前列腺癌标本中,超过50%的标本中观察到Eaf2和Pten的共同下调。这些发现共同证明了Eaf2和Pten在前列腺癌发生中的协同功能和临床相关性[7]。

Eaf2在紫外线辐射诱导的小鼠晶状体细胞凋亡中的调节作用。研究发现,紫外线辐射导致正常对照组小鼠和Eaf2基因敲除小鼠的晶状体细胞凋亡。正常对照组小鼠的caspase 3活性显著高于Eaf2基因敲除小鼠。在紫外线照射条件下,Eaf2基因敲除小鼠和正常对照组小鼠的p53蛋白表达相似。在紫外线照射后,实时RT-PCR分析显示,正常对照组小鼠的Puma和Noxa mRNA水平显著高于Eaf2基因敲除小鼠,而Bax、Bid和Apaf-1 mRNA水平在基因敲除小鼠和正常对照组小鼠之间没有显著差异。这些发现表明,Eaf2上调紫外线辐射诱导的晶状体细胞凋亡,并且Eaf2上调Puma和Noxa的表达以在紫外线照射后作用于晶状体细胞凋亡[8]。

综上所述,Eaf2是一种重要的肿瘤抑制基因,在前列腺癌、结直肠癌等多种癌症中发挥重要作用。Eaf2通过调节DNA修复、招募肿瘤相关巨噬细胞、抑制缺氧诱导的因子1α转录活性、调节STAT3的激活、保护晶状体上皮细胞免受氧化应激诱导的凋亡等多种途径发挥肿瘤抑制功能。深入研究Eaf2的功能和机制,将为癌症的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Ai, J, Pascal, L E, Wei, L, Lan, L, Wang, Z. 2016. EAF2 regulates DNA repair through Ku70/Ku80 in the prostate. In Oncogene, 36, 2054-2065. doi:10.1038/onc.2016.373. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27721405/
2. Cao, Tianyu, Sun, Qian, Shi, Xiaoqin, Jing, Yifeng, Guo, Wenhuan. 2024. EAF2 Downregulation Recruits Tumor-associated Macrophages in Prostate Cancer through Upregulation of MIF. In Biological procedures online, 26, 21. doi:10.1186/s12575-024-00247-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38969982/
3. Chen, Zhu, Liu, Xing, Mei, Zhichao, Wang, Zhou, Xiao, Wuhan. 2014. EAF2 suppresses hypoxia-induced factor 1α transcriptional activity by disrupting its interaction with coactivator CBP/p300. In Molecular and cellular biology, 34, 1085-99. doi:10.1128/MCB.00718-13. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24421387/
4. Feng, Ming-Liang, Wu, Can, Zhang, Hui-Jing, Liu, Meng-Yuan, Sun, Ming-Jun. . Overexpression of ELL-associated factor 2 suppresses invasion, migration, and angiogenesis in colorectal cancer. In World journal of gastrointestinal oncology, 14, 1949-1967. doi:10.4251/wjgo.v14.i10.1949. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36310706/
5. Pascal, Laura E, Wang, Yao, Zhong, Mingming, Parwani, Anil V, Wang, Zhou. 2018. EAF2 and p53 Co-Regulate STAT3 Activation in Prostate Cancer. In Neoplasia (New York, N.Y.), 20, 351-363. doi:10.1016/j.neo.2018.01.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29518696/
6. Feng, Ke, Guo, Hai-Ke. 2017. Eaf2 protects human lens epithelial cells against oxidative stress‑induced apoptosis by Wnt signaling. In Molecular medicine reports, 17, 2795-2802. doi:10.3892/mmr.2017.8246. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29257273/
7. Ai, J, Pascal, L E, O'Malley, K J, Nelson, J B, Wang, Z. 2013. Concomitant loss of EAF2/U19 and Pten synergistically promotes prostate carcinogenesis in the mouse model. In Oncogene, 33, 2286-94. doi:10.1038/onc.2013.190. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23708662/
8. Xiao, Fan, Zhang, Jin-Song, Zhao, Jiang-Yue, Wu, Di. 2012. Regulation of Eaf2 in mouse lens cells apoptosis induced by ultraviolet radiation. In International journal of ophthalmology, 5, 570-5. doi:10.3980/j.issn.2222-3959.2012.05.05. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23166866/