Tra2a-flox 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Tra2a-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00201

品系全称

C57BL/6JCya-Tra2aem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-101214-Tra2a-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Tra2a-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00201) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
transformer 2 alpha
基因别称
1500010G04Rik,G430041M01Rik,TRA-2 alpha,TRA2-alpha,Tra2alpha,mAWMS1
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_198102 | Ensembl: ENSMUST00000031841
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
TRA2A,即Transformer 2 alpha homolog,是一种重要的RNA结合蛋白,属于富含丝氨酸/精氨酸的剪接因子家族。TRA2A在调控mRNA剪接中发挥着关键作用,影响着基因表达和多种生物学过程。TRA2A在细胞中主要定位于细胞核,参与调控mRNA的前体剪接,影响基因的转录后修饰,进而影响基因的表达和功能。近年来,越来越多的研究表明TRA2A在肿瘤的发生和发展中起着重要作用。

在胰腺癌中,TRA2A被发现是一个重要的低氧相关基因,其在胰腺癌组织和低氧条件下培养的胰腺癌细胞中表达上调。高TRA2A表达与胰腺癌的晚期阶段、低分化和淋巴结转移相关。在正常氧和低氧条件下,敲低TRA2A能够显著抑制胰腺癌细胞的增殖和运动能力,并抑制AKT信号通路的激活。低氧诱导因子1亚基α(HIF1α)通过直接结合到TRA2A的启动子上,上调TRA2A的转录。在胰腺癌组织中,TRA2A与HIF1α存在共表达关系。过表达TRA2A能够缓解HIF1α抑制对胰腺癌细胞增殖和运动能力的影响。这些结果表明,TRA2A是HIF1α的重要下游基因,能够促进胰腺癌细胞的增殖和运动能力[1]。

在肝细胞癌(HCC)中,长链非编码RNA(lncRNA)Lnc-ZEB2-19已被证实能够抑制HCC的进展和仑伐替尼耐药性。Lnc-ZEB2-19通过特异性结合TRA2A并促进其降解,导致RSPH14 mRNA的不稳定,进而下调Rela(p65)和p-Rela(p-p65)的表达。敲低RSPH14部分抑制了Lnc-ZEB2-19下调表达对HCC细胞转移能力和干性的影响。这些发现揭示了一个新的调控轴,即Lnc-ZEB2-19/TRA2A/RSPH14,通过下调核因子κB来抑制HCC的进展和仑伐替尼耐药性[2]。

在TNBC中,TRA2A能够促进TNBC细胞的增殖、生存、迁移和侵袭,并通过调控与癌症相关的剪接,促进TNBC对紫杉醇的耐药性。TRA2A过表达能够促进CALU、RSRC2和PALM在TNBC细胞紫杉醇处理过程中的选择性剪接。RSRC2从RSRC2s到RSRC2l的剪接改变导致RSRC2蛋白表达降低,这可能有助于TNBC对紫杉醇的耐药性。TRA2A通过特异性结合外显子4上游的内含子序列来调控RSRC2的剪接。在TNBC患者中,TRA2A的表达显著增加,与RSRC2表达降低密切相关,两者都与TNBC的不良预后相关。这些结果表明,紫杉醇可能通过TRA2A-RSRC2剪接途径发挥作用,TRA2A和RSRC2表达的失调可能导致紫杉醇耐药性[3]。

在胶质瘤中,TRA2A的表达水平高于正常组织。过表达TRA2A能够促进胶质瘤SHG44细胞系的肿瘤细胞增殖、迁移、侵袭和上皮间质转化(EMT),而敲低TRA2A则表现出相反的效果。这些结果表明,TRA2A在胶质瘤的发生和发展中起着重要作用,并且可能是胶质瘤治疗的一个潜在靶点[4]。

在食管癌中,TRA2A的表达水平上调,与不良预后相关。敲低TRA2A能够抑制异种移植裸鼠的肿瘤生长。表观转录组微阵列分析显示,TRA2A的耗竭影响了lncRNA的全局m6A甲基化,类似于沉默关键m6A甲基转移酶METTL3。MeRIP-qPCR、RNA pull-down、CLIP分析和稳定性实验表明,TRA2A的缺失降低了致癌lncRNA MALAT1的m6A修饰,从而诱导结构改变和稳定性降低。此外,共免疫沉淀实验表明,TRA2A直接与METTL3和RBMX相互作用,并影响writer KIAA1429的表达。敲低TRA2A抑制细胞增殖,而这种抑制可以通过RBMX/KIAA1429过表达来恢复。在临床方面,MALAT1、RBMX和KIAA1429是ESCA患者预后较差的预测因子。基于结构相似性的虚拟筛选在FDA批准的药物中重新定位了nebivolol,一种β1-肾上腺素受体拮抗剂,作为抑制食管癌细胞增殖的有效化合物。细胞热漂移和RIP实验表明,nebivolol可能通过与MALAT1竞争结合TRA2A。这些结果表明,TRA2A通过非规范功能与多种甲基化蛋白协同作用,在ESCA致癌过程中促进致癌的MALAT1[5]。

在阿尔茨海默病(AD)的微环境中,TRA2A/LINC00662/ELK4轴在调节BBB通透性中起着重要作用。在Aβ1-42孵育的BBB模型中,TRA2A和LINC00662被富集。TRA2A通过结合LINC00662来增加其稳定性。敲低TRA2A或LINC00662能够降低BBB通透性,这是由于紧密连接相关蛋白的表达增加。在AD微环境中,ELK4在BBB模型中的表达降低。LINC00662通过SMD途径介导ELK4 mRNA的降解。ELK4的下调增加了BBB通透性,这是由于紧密连接相关蛋白的表达增加。这些结果表明,TRA2A/LINC00662/ELK4轴在AD微环境中调节BBB通透性中起着关键作用,这可能为AD的治疗提供一个新的靶点[7]。

在前列腺癌中,组蛋白甲基化转移酶EZH2通过抑制组蛋白H3K27me3的去甲基化,在前列腺癌的发生和发展中起着重要作用。EZH2的抑制或敲低能够影响MGMT、TRA2A、RPS6KA2和U2AF1基因的表达。这些结果表明,EZH2通过调控组蛋白甲基化影响前列腺癌的基因表达和生物学过程[6]。

M6A修饰是一种普遍存在于真核细胞RNA上的表观遗传修饰,参与调控RNA的稳定性和功能,影响基因表达和生物学过程。在缺血性卒中(IS)中,M6A修饰在免疫代谢和免疫病理过程中发挥着重要作用。M6A相关的生物信息学分析表明,LRPPRC是IS的免疫标志物。在GSE58294数据集中,共筛选出7个与m6A相关的差异表达基因,包括METTL3、WTAP、YWHAG、TRA2A、YTHDF3、LRPPRC和HNRNPA2B1。随机森林算法表明,这7个基因都是IS的m6A关键调控基因,并通过构建临床预测模型验证了其可靠性。基于关键调控基因的表达,IS患者被分为两组。根据LRPPRC的表达和不同亚组中免疫浸润的相关性,LRPPRC被确定为IS的免疫标志物。这些结果表明,LRPPRC在IS的免疫微环境中发挥着重要作用,可能成为IS药物治疗的靶点[8]。

综上所述,TRA2A作为一种重要的RNA结合蛋白,在多种肿瘤的发生和发展中发挥着重要作用。TRA2A通过调控mRNA的剪接,影响基因的表达和功能,进而影响肿瘤细胞的增殖、迁移、侵袭和耐药性。此外,TRA2A还与m6A修饰相关,可能通过影响m6A修饰的RNA的稳定性和功能,参与肿瘤的发生和发展。因此,TRA2A可能成为肿瘤治疗的新靶点,为肿瘤的治疗提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Cao, Wenpeng, Lei, Shan, Zeng, Zhirui, Luo, Daopeng, Yu, Wenfeng. . Transformer 2 alpha homolog is a downstream gene of hypoxia-inducible factor 1 subunit alpha and is involved in the progression of pancreatic cancer. In Bioengineered, 13, 13238-13251. doi:10.1080/21655979.2022.2079243. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35635094/
2. Cao, Mingbo, Ren, Yupeng, Li, Yuxuan, Yao, Zhicheng, Deng, Meihai. 2023. Lnc-ZEB2-19 Inhibits the Progression and Lenvatinib Resistance of Hepatocellular Carcinoma by Attenuating the NF-κB Signaling Pathway through the TRA2A/RSPH14 Axis. In International journal of biological sciences, 19, 3678-3693. doi:10.7150/ijbs.85270. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37564197/
3. Liu, Tieju, Sun, Huizhi, Zhu, Dongwang, Wang, Yi, Sun, Baocun. 2017. TRA2A Promoted Paclitaxel Resistance and Tumor Progression in Triple-Negative Breast Cancers via Regulating Alternative Splicing. In Molecular cancer therapeutics, 16, 1377-1388. doi:10.1158/1535-7163.MCT-17-0026. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28416606/
4. Tan, Ying, Hu, Xi, Deng, Yongbing, Xie, Yanfeng, Wang, Jia. 2018. TRA2A promotes proliferation, migration, invasion and epithelial mesenchymal transition of glioma cells. In Brain research bulletin, 143, 138-144. doi:10.1016/j.brainresbull.2018.10.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30367895/
5. Bei, Mingrong, Hao, Shijia, Lin, Kai, Dong, Geng, Xu, Jianzhen. 2023. Splicing factor TRA2A contributes to esophageal cancer progression via a noncanonical role in lncRNA m6 A methylation. In Cancer science, 114, 3216-3229. doi:10.1111/cas.15870. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37317053/
6. El Ouardi, Driss, Idrissou, Mouhamed, Sanchez, Anna, Guy, Laurent, Bernard-Gallon, Dominique. 2019. The Inhibition of the Histone Methyltransferase EZH2 by DZNEP or SiRNA Demonstrates Its Involvement in MGMT, TRA2A, RPS6KA2, and U2AF1 Gene Regulation in Prostate Cancer. In Omics : a journal of integrative biology, 24, 116-118. doi:10.1089/omi.2019.0162. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31895624/
7. Liu, Qianshuo, Zhu, Lu, Liu, Xiaobai, Li, Zhen, Xue, Yixue. 2020. TRA2A-induced upregulation of LINC00662 regulates blood-brain barrier permeability by affecting ELK4 mRNA stability in Alzheimer's microenvironment. In RNA biology, 17, 1293-1308. doi:10.1080/15476286.2020.1756055. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32372707/
8. Shen, Lianwei, Yue, Shouwei. 2024. M6A-related bioinformatics analysis indicates that LRPPRC is an immune marker for ischemic stroke. In Scientific reports, 14, 8852. doi:10.1038/s41598-024-57507-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38632288/