Cyp2j11-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Cyp2j11-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-00062

品系全称

C57BL/6JCya-Cyp2j11em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-100066-Cyp2j11-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Cyp2j11-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-00062) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cytochrome P450, family 2, subfamily j, polypeptide 11
基因别称
Cyp2j11-ps
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001004141 | Ensembl: ENSMUST00000015368
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~0.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Cyp2j11是小鼠细胞色素P450家族中的成员,属于CYP2J亚家族。CYP2J亚家族成员广泛分布于多种组织中,具有催化多种底物氧化反应的能力。Cyp2j11在代谢花生四烯酸(AA)和亚油酸(LA)等脂肪酸以及外源性物质中发挥着重要作用。研究表明,Cyp2j11在小鼠的肾脏、心脏和肝脏等组织中均有表达,且在肾脏中的表达量最高[1]。

Cyp2j11的转录本在小鼠的肾脏和心脏中最为丰富,蛋白质主要在肾脏的近端肾小管、肝脏和心脏的心肌细胞中检测到[1]。此外,Cyp2j11的表达还受到性别和炎症等因素的影响。在雄性小鼠的肾脏中,Cyp2j5和Cyp2j13的表达量较高,而Cyp2j11在雄性和雌性小鼠的肾脏中均有较高表达[2]。在炎症模型中,Cyp2j6和Cyp2j9的表达受到抑制[2]。

Cyp2j11的生物学功能与生长激素(GH)的分泌模式密切相关。研究发现,GH的脉冲式分泌(雄性模式)与持续的GH分泌(雌性模式)对心脏中AA代谢酶的表达具有不同的影响。脉冲式GH分泌能够更有效地降低CYP1A1和CYP2J11的mRNA水平,而CYP1B1的mRNA水平在脉冲式GH分泌后升高。在野生型和生长激素受体(GHR)缺陷小鼠中,CYP1A1、CYP1B1和CYP2J11的mRNA水平表现出性别差异。持续的GH输注可以诱导雄性小鼠心脏中CYP1A1和CYP2J11的表达,同时降低CYP1B1的表达[3]。

Cyp2j11的表达还受到硒元素的影响。研究发现,硒可以通过RNA测序技术分析小鼠肝脏损伤过程中基因表达谱的变化,发现Cyp2j11等基因在亚油酸代谢、视黄醇代谢和JAK-STAT信号通路等功能类别中显著富集。硒可能通过调节这些基因的表达,发挥对肝脏损伤的保护作用[4]。

小鼠心房HL-1细胞系是一种可靠的体外模型,可用于研究心脏中的药物代谢酶。研究表明,HL-1细胞中Cyp2j11的表达水平与小鼠心脏相似。HL-1细胞能够代谢花生四烯酸,生成环氧二十碳三烯酸、二羟基二十碳三烯酸和20-羟基二十碳四烯酸等生物活性物质。因此,HL-1细胞为研究Cyp2j11在心血管疾病中的作用提供了一个有价值的体外模型[5]。

综上所述,Cyp2j11是一种重要的细胞色素P450酶,在脂肪酸代谢和外源性物质代谢中发挥着重要作用。Cyp2j11的表达受到性别、炎症和硒元素等因素的调节,并参与心血管疾病的发生和发展。进一步研究Cyp2j11的生物学功能和调控机制,有助于深入理解其在疾病中的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Graves, Joan P, Edin, Matthew L, Bradbury, J Alyce, Tomer, Kenneth B, Zeldin, Darryl C. 2013. Characterization of four new mouse cytochrome P450 enzymes of the CYP2J subfamily. In Drug metabolism and disposition: the biological fate of chemicals, 41, 763-73. doi:10.1124/dmd.112.049429. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23315644/
2. Graves, Joan P, Gruzdev, Artiom, Bradbury, J Alyce, Edin, Matthew L, Zeldin, Darryl C. 2015. Quantitative Polymerase Chain Reaction Analysis of the Mouse Cyp2j Subfamily: Tissue Distribution and Regulation. In Drug metabolism and disposition: the biological fate of chemicals, 43, 1169-80. doi:10.1124/dmd.115.064139. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25994032/
3. Zhang, Furong, Yu, Xuming, He, Chunyan, Wan, Yu, Yue, Jiang. 2015. Effects of sexually dimorphic growth hormone secretory patterns on arachidonic acid metabolizing enzymes in rodent heart. In Toxicology and applied pharmacology, 289, 495-506. doi:10.1016/j.taap.2015.10.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26493931/
4. He, Kan, Tang, Qingyang, Gong, Mengting, Liu, Dahai, Huang, Bei. 2019. A transcriptomic study of selenium against liver injury induced by beta-cypermethrin in mice by RNA-seq. In Functional & integrative genomics, 20, 343-353. doi:10.1007/s10142-019-00719-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31659573/
5. Elshenawy, Osama H, Anwar-Mohamed, Anwar, Abdelhamid, Ghada, El-Kadi, Ayman O S. 2012. Murine atrial HL-1 cell line is a reliable model to study drug metabolizing enzymes in the heart. In Vascular pharmacology, 58, 326-33. doi:10.1016/j.vph.2012.12.002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23268359/