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B6-4*hSMN2小鼠

复苏/繁育服务
产品名称

B6-4*hSMN2

产品编号

C001682

品系全称

C57BL/6NCya-Smn1tm1(hSMN2/hSMN2)Gt(ROSA)26Sortm1(hSMN2/hSMN2)/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

说明

本产品为HUGO-GT® (Humanized Genomic Ortholog for Gene Therapy) 系列小鼠

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: B6-4*hSMN2 mice (Catalog C001682) were purchased from Cyagen.
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基本信息

应用领域

验证数据

基因
基因别称
SMNC,BCD541,GEMIN1,TDRD16B,C-BCD541
NCBI ID
染色体号
Chr 5

品系介绍

脊髓性肌萎缩症(SMA)是一种常染色体隐性遗传病,其病因在于脊髓前角运动神经元退行性变性,表现为严重进行性肌无力和肌萎缩。SMA为婴幼儿期最常见的致死性神经遗传病之一,发病率为1/6000~1/10000 [1]。SMA主要因SMN1基因“双等位基因缺失”所致。SMN1基因在全身各组织均有表达,且在脊髓中表达最高,其编码的生存运动神经元(SMN)蛋白对维持运动神经元存活和功能至关重要。SMN蛋白参与信使核糖核酸(mRNA)加工,并对神经细胞突起(轴突与树突)发育发挥重要作用 [2]。此外,人体内还存在与SMN1高度同源的SMN2基因,两者仅存在数个核苷酸差异。SMN2基因第7号外显子剪接增强子处存在c.840C>T点突变,该突变破坏剪接增强子和/或产生剪接抑制子,致使SMN2 pre-mRNA剪接模式不同于SMN1,大部分mRNA缺失第7号外显子,从而生成功能缺失的截短SMN蛋白并迅速降解。仅约10%~15%的SMN2 pre-mRNA可剪接为全长mRNA并编码功能性SMN蛋白 [2-3]。约95%的SMA患者存在SMN1第7号外显子纯合缺失,导致SMN2无法充分代偿SMN蛋白缺乏而发病 [2-4]因此,目前认为SMN2拷贝数是影响SMA病型表型的重要修饰因子。大多数患者中SMN2拷贝数介于1~6个,拷贝数越高,全长SMN蛋白产生越多,通常对应较轻的临床表型 [5-6]故调控SMN2剪接以生成正常功能性SMN蛋白已成为SMA治疗的重点研究方向。与人类不同,小鼠仅有Smn1一个SMN蛋白编码基因,其纯合敲除会致死,这在构建SMA模型及模拟人类SMN2基因代偿机制时存在局限 [7]。因此,构建既能模拟SMA致病机制(尤其是SMN2拷贝数)又符合人类病程的人源化小鼠模型,对SMN2靶向疗法的开发和验证具有重要意义。
赛业生物开发了两款基于不同策略构建的SMN2人源化基础品系,并利用其繁育获得了包含不同SMN2拷贝数的SMA疾病模型。其中一款基础品系(Smn1hSMN2/hSMN2)通过将小鼠内源性Smn1基因的双拷贝原位替换为人源SMN2基因构建,即在敲除小鼠Smn1基因的同时引入双拷贝人源SMN2基因,旨在模拟携带双拷贝SMN2基因的SMA患者。另一款基础品系则通过在小鼠ROSA26安全位点上插入双拷贝人源SMN2基因(即ROSA26hSMN2/hSMN2)构建。通过对Smn1hSMN2/hSMN2小鼠和ROSA26hSMN2/hSMN2小鼠进行不同方式的多次繁育,可以获得在Smn1基因缺失的基础上,分别携带2、3和4拷贝SMN2基因的SMA模型。B6-4*hSMN2小鼠(基因型:Smn1hSMN2/hSMN2ROSA26hSMN2/hSMN2)即为携带4个人源SMN2基因拷贝的人源化疾病模型,可用于模拟存在4拷贝SMN2基因的SMA患者。由于SMN2基因主要产生7号外显子缺失的SMNΔ7蛋白,而非全长SMN蛋白,因此人源化SMN2基因无法完全补偿Smn1缺失所致的异常,从而导致该模型表现出SMA样表型。
参考文献
Wirth B, Karakaya M, Kye MJ, Mendoza-Ferreira N. Twenty-Five Years of Spinal Muscular Atrophy Research: From Phenotype to Genotype to Therapy, and What Comes Next. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2020 Aug 31;21:231-261.
Nicolau S, Waldrop MA, Connolly AM, Mendell JR. Spinal Muscular Atrophy. Semin Pediatr Neurol. 2021 Apr;37:100878.
Kolb SJ, Kissel JT. Spinal Muscular Atrophy. Neurol Clin. 2015 Nov;33(4):831-46.
Day JW, Howell K, Place A, Long K, Rossello J, Kertesz N, Nomikos G. Advances and limitations for the treatment of spinal muscular atrophy. BMC Pediatr. 2022 Nov 3;22(1):632.
Cuscó I, Bernal S, Blasco-Pérez L, Calucho M, Alias L, Fuentes-Prior P, Tizzano EF. Practical guidelines to manage discordant situations of SMN2 copy number in patients with spinal muscular atrophy. Neurol Genet. 2020 Nov 18;6(6):e530.
Calucho M, Bernal S, Alías L, March F, Venceslá A, Rodríguez-Álvarez FJ, Aller E, Fernández RM, Borrego S, Millán JM, Hernández-Chico C, Cuscó I, Fuentes-Prior P, Tizzano EF. Correlation between SMA type and SMN2 copy number revisited: An analysis of 625 unrelated Spanish patients and a compilation of 2834 reported cases. Neuromuscul Disord. 2018 Mar;28(3):208-215.
Edens BM, Ajroud-Driss S, Ma L, Ma YC. Molecular mechanisms and animal models of spinal muscular atrophy. Biochim Biophys Acta. 2015 Apr;1852(4):685-92.

构建方案

图1.ROSA26hSMN2/hSMN2小鼠基因编辑策略。采用胚胎干细胞(ES)基因编辑技术,将人类SMN2基因组序列(含上游及下游非编码区)逆向克隆至ROSA26第1内含子中。
图2. Smn1hSMN2/hSMN2小鼠基因编辑策略。利用胚胎干细胞(ES)基因编辑技术,将小鼠Smn1基因上游至下游间的区域,替换为人源SMN2基因上游至下游的序列。