Coro1b基因敲除小鼠_KO_构建_价格_活体

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C57BL/6JCya-Coro1b^em1/Cya 基因敲除小鼠

复苏/繁育服务

产品名称：

Coro1b-KO

产品编号：

S-KO-06924

品系背景：

C57BL/6JCya

小鼠资源库

* 使用本品系发表的文献需注明：Coro1b-KO mice (Strain S-KO-06924) were purchased from Cyagen.

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交付类型

周龄

性别

基因型

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只

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基本信息

品系名称

C57BL/6JCya-Coro1b^em1/Cya

品系编号

KOCMP-23789-Coro1b-B6J-VA

产品编号

S-KO-06924

基因名

Coro1b

品系背景

C57BL/6JCya

基因别称

NCBI号

23789

修饰方式

全身性基因敲除

方案下载

S-KO-06924_6J_23789_Coro1b_Exon 3~8_A_strategy.pdf

品系说明

该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。

小鼠表型

MGI:1345963 Mice homozygous for a knock-out allele exhibit normal mast cell degranulation.

质控标准

精子检测

① 冷冻前验证精子活力观察

② 冷冻验证每批次进行复苏验证

品系状态

在研小鼠

环境标准

SPF

供应地区

中国

品系详情

点击查看品系详情： S-KO-06924_6J_23789_Coro1b_Exon 3~8_A_strategy.pdf

Coro1b位于小鼠的19号染色体，采用基因编辑技术，通过应用高通量电转受精卵方式，获得Coro1b基因敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。

Coro1b-KO小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的全基因组敲除小鼠。Coro1b基因位于小鼠19号染色体上，由11个外显子组成，其中ATG起始密码子在2号外显子，TAG终止密码子在11号外显子。敲除区域（KO区域）位于3号到8号外显子，包含约1863个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Coro1b基因功能的丧失。Coro1b-KO小鼠模型的构建过程包括将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。随后，对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。此外，对于携带敲除等位基因的小鼠，其肥大细胞脱颗粒过程表现正常。该模型可用于研究Coro1b基因在小鼠体内的功能。

基因研究概述

Coro1b，也称为Coronin 1B，是人体基因组中编码的一类含有WD重复结构域的肌动蛋白相关蛋白。在人类基因组中，共有七个基因编码Coronin蛋白，分别是CORO1A、CORO1B、CORO1C、CORO2A、CORO2B、CORO6和CORO7。这些蛋白在细胞内具有多种功能，如调节细胞骨架的重组、细胞迁移和侵袭等。

在胰腺导管腺癌（PDAC）的研究中，CORO1B的表达水平被发现显著上调，并且与患者的5年生存率呈负相关。研究还发现，CORO1B的敲低可以抑制PDAC细胞的侵袭和迁移能力。此外，多种microRNA（miRNA）被证实可以调节CORO1B的表达，其中一些miRNA具有肿瘤抑制功能[1]。

在心脏发育过程中，CORO1B的表达对于细胞迁移和心脏的表型转化（EMT）过程至关重要。研究发现，Wilms瘤抑制因子Wt1可以调控CORO1B在心外膜中的表达，Wt1的缺失会导致CORO1B表达水平的降低，进而影响细胞迁移能力[2]。

在子宫内膜癌的研究中，CORO1B被纳入一个8基因预后签名中，该签名与调节性T细胞（Treg）的比例相关，并且可以用于预测患者的预后和免疫治疗效果。低风险患者具有较高的总生存期和肿瘤突变负荷（TMB），并且对化疗更为敏感[3]。

在胃癌的研究中，CORO1B的表达水平被发现与胃癌的发生和腹膜转移相关。全基因组测序和转录组测序分析发现，CORO1B基因的突变与胃癌的发生和腹膜转移相关[4]。此外，CORO1B的表达还受到PTPRCAP基因启动子区SNP rs869736的调控，该SNP与弥漫性胃癌的易感性增加相关[5]。

在乳腺癌的研究中，CORO1B的表达水平被发现与乳腺癌细胞的迁移和侵袭能力相关。研究显示，CORO1B在DCLK1过表达的乳腺癌细胞中表达上调，并且可以促进小细胞外囊泡（sEV）的形成和迁移相关蛋白的富集[6]。

在Duchenne肌营养不良（DMD）的研究中，CORO1B的表达水平被发现受到miRNA的调控。研究发现，miR-206可以下调CORO1B的表达，并且可以通过调节CORO1B的表达影响DMD患者的运动功能[7]。

在奶牛乳腺组织的研究中，CORO1B被确定为qPCR的内部对照基因之一。研究发现，CORO1B的表达在66个奶牛乳腺样本中保持稳定，可以作为qPCR的内部对照基因[8]。

在乳腺癌化疗的研究中，CORO1B的表达水平被发现受到DNA甲基化的调控。研究发现，化疗可以导致CORO1B基因启动子区的DNA甲基化水平发生改变，并且与患者的认知功能下降相关[9]。

在乳腺癌的研究中，CORO1B的表达水平被发现与乳腺癌细胞的增殖、生存和迁移能力相关。研究发现，PFN1过表达可以下调CORO1B的表达，并且可以影响与细胞增殖、生存和迁移相关的蛋白的表达[10]。

综上所述，CORO1B在多种生物学过程中发挥重要作用，包括细胞骨架的重组、细胞迁移、侵袭、心脏发育、肿瘤发生和免疫调节等。CORO1B的表达水平受到多种因素的调控，包括miRNA、DNA甲基化等。CORO1B的研究有助于深入理解其生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献：

1. Fukuda, Kosuke, Seki, Naohiko, Yasudome, Ryutaro, Kurahara, Hiroshi, Ohtsuka, Takao. 2023. Coronin 1C, Regulated by Multiple microRNAs, Facilitates Cancer Cell Aggressiveness in Pancreatic Ductal Adenocarcinoma. In Genes, 14, . doi:10.3390/genes14050995. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37239355/

2. Hsu, Wen-Hsin, Yu, Yi-Ru, Hsu, Shih-Han, Chen, Chun-Ming, You, Li-Ru. 2013. The Wilms' tumor suppressor Wt1 regulates Coronin 1B expression in the epicardium. In Experimental cell research, 319, 1365-81. doi:10.1016/j.yexcr.2013.03.027. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23562652/

3. Liu, Jinhui, Geng, Rui, Yang, Sheng, Cai, Lixin, Bai, Jianling. 2021. Development and Clinical Validation of Novel 8-Gene Prognostic Signature Associated With the Proportion of Regulatory T Cells by Weighted Gene Co-Expression Network Analysis in Uterine Corpus Endometrial Carcinoma. In Frontiers in immunology, 12, 788431. doi:10.3389/fimmu.2021.788431. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34970268/

4. Zhang, J, Huang, J Y, Chen, Y N, Zhu, Z G, Yu, Y Y. 2015. Whole genome and transcriptome sequencing of matched primary and peritoneal metastatic gastric carcinoma. In Scientific reports, 5, 13750. doi:10.1038/srep13750. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26330360/

5. Ju, Hyoungseok, Lim, Byungho, Kim, Minjin, Choi, Bo Youl, Kang, Changwon. . A regulatory polymorphism at position -309 in PTPRCAP is associated with susceptibility to diffuse-type gastric cancer and gene expression. In Neoplasia (New York, N.Y.), 11, 1340-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20019842/

6. Carli, Annalisa L E, Afshar-Sterle, Shoukat, Rai, Alin, Greening, David W, Buchert, Michael. 2021. Cancer stem cell marker DCLK1 reprograms small extracellular vesicles toward migratory phenotype in gastric cancer cells. In Proteomics, 21, e2000098. doi:10.1002/pmic.202000098. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33991177/

7. Liu, Da Zhi, Stamova, Boryana, Hu, Shengyong, Sharp, Frank R, Wong, Brenda. . MicroRNA and mRNA Expression Changes in Steroid Naïve and Steroid Treated DMD Patients. In Journal of neuromuscular diseases, 2, 387-396. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27858746/

8. Kadegowda, A K G, Bionaz, M, Thering, B, Erdman, R A, Loor, J J. . Identification of internal control genes for quantitative polymerase chain reaction in mammary tissue of lactating cows receiving lipid supplements. In Journal of dairy science, 92, 2007-19. doi:10.3168/jds.2008-1655. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19389958/

9. Yao, Song, Hu, Qiang, Kerns, Sarah, Liu, Song, Janelsins, Michelle C. 2019. Impact of chemotherapy for breast cancer on leukocyte DNA methylation landscape and cognitive function: a prospective study. In Clinical epigenetics, 11, 45. doi:10.1186/s13148-019-0641-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30867049/

10. Coumans, Joëlle V F, Gau, David, Poljak, Anne, Roy, Partha, Moens, Pierre D J. . Profilin-1 overexpression in MDA-MB-231 breast cancer cells is associated with alterations in proteomics biomarkers of cell proliferation, survival, and motility as revealed by global proteomics analyses. In Omics : a journal of integrative biology, 18, 778-91. doi:10.1089/omi.2014.0075. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25454514/