智鼠故事 
C57BL/6JCya-Ino80dem1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Ino80d-flox
产品编号：
S-CKO-18873
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Ino80d-flox mice (Strain S-CKO-18873) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Ino80dem1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-227195-Ino80d-B6J-VB
产品编号
S-CKO-18873
基因名
Ino80d
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
7330405I11；A430093A21Rik
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Ino80d位于小鼠的1号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Ino80d基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Ino80d-flox小鼠是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Ino80d基因位于小鼠1号染色体上，由11个外显子组成，其中ATG起始密码子在3号外显子，TGA终止密码子在11号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于5号外显子，包含109个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Ino80d基因功能的丧失。Ino80d-flox小鼠模型的构建过程包括使用BAC克隆RP24-307P10作为模板，通过PCR生成同源臂和cKO区域。随后，将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。出生的小鼠通过PCR和测序分析进行基因型鉴定。Ino80d-flox小鼠可用于研究Ino80d基因在小鼠体内的功能。
基因研究概述
Ino80d基因编码的是Ino80染色质重塑复合物的D亚基，Ino80复合物在染色质重塑、基因表达调控和DNA修复中发挥着关键作用。该复合物通过ATP依赖的方式重塑核小体结构，从而影响基因的转录活性。Ino80复合物的功能涉及细胞周期调控、DNA损伤修复、转录调控等多个生物学过程。Ino80d基因在哺乳动物精子中表达，并在染色质重塑、基因表达调控和DNA修复中发挥着重要作用。
在非小细胞肺癌（NSCLC）和其他癌症组织中，Ino80d的表达水平显著降低。长链非编码RNA（lncRNA）CR933609与Ino80d mRNA的3'-非翻译区（3'-UTR）相似，两者包含相同的microRNA（miRNA）靶位点。研究发现，lncRNA CR933609的表达水平与Ino80d的表达水平呈正相关，且两者具有独立的启动子。进一步研究发现，lncRNA CR933609作为诱饵保护Ino80d免受miRNA-5096的降解，从而维持Ino80d的表达水平[1]。
在中华绒螯蟹（Eriocheir sinensis）的精子发生过程中，Ino80d的表达水平在成年蟹中显著上调，主要定位于细胞核中，在精原细胞和初级精母细胞中表达较高，在成熟精子中表达较低。Ino80d在精子发生早期阶段通过染色质去浓缩促进基因的易位和DNA修复，随后在精子形成过程中维持染色质的去浓缩状态和遗传完整性[2]。
在雄性小鼠睾丸组织中，Ino80d mRNA和蛋白质的表达水平在成年小鼠睾丸组织中相对于幼年小鼠睾丸组织上调，而miR-92a-3p的表达水平下调。免疫荧光结果显示，Ino80d蛋白主要定位于雄性生殖细胞的细胞核中，在精原细胞、精细胞中表达较高，在初级精母细胞、次级精母细胞和精子中表达较低。过表达miR-92a-3p会下调Ino80d mRNA和蛋白质的表达水平，表明miR-92a-3p可能通过负向调节Ino80d的表达参与小鼠睾丸发育和精子发生的过程[3]。
在肺泡横纹肌肉瘤（ARMS）中，PAX3::INO80D融合是ARMS的一种非典型融合类型。通过DNA甲基化分析，发现PAX3::INO80D融合的ARMS肿瘤的甲基化特征与经典的FOXO1融合ARMS和变异的PAX3::NCOA1/INO80D融合ARMS相似，但与双表型鼻窦肉瘤（BSNS）的PAX3::MAML3/NCOA2/FOXO1/YAP1融合不同[4]。
在转移性肾细胞癌（TRCC）中，Ino80d基因突变频繁发生。Ino80d基因的突变导致细胞增殖减少，表明Ino80d在TRCC的发生发展中发挥重要作用[5]。
在多囊卵巢综合征（PCOS）中，Ino80d基因表达水平异常。Ino80d基因的表达水平在PCOS患者中上调，且与免疫细胞浸润相关，表明Ino80d在PCOS的发生发展中发挥重要作用[6]。
在母牛妊娠后期能量限制对肌肉和血液转录组的影响研究中，发现Ino80d基因在能量限制组中表达下调，表明Ino80d在肌肉代谢和发育中发挥重要作用[7]。
在鸡强制换羽过程中，Ino80d基因表达水平在恢复期上调，表明Ino80d在细胞衰老和发育过程中发挥重要作用[8]。
在硫芥暴露患者中，Ino80d基因与lncRNA和miRNA相互作用，共同调控硫芥暴露患者的基因表达模式[9]。
综上所述，Ino80d基因在染色质重塑、基因表达调控、DNA修复、细胞发育、免疫细胞浸润等多个生物学过程中发挥重要作用。Ino80d基因的突变和表达异常与多种疾病的发生发展相关，包括癌症、生殖系统疾病和免疫系统疾病。Ino80d基因的研究有助于深入理解染色质重塑的生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Chang, Chun-Chi, Liu, Ting-Yuan, Lee, Ya-Ting, Liu, Ta-Chih, Chang, Jan-Gowth. 2018. Genome-wide analysis of lncRNAs in 3'-untranslated regions: CR933609 acts as a decoy to protect the INO80D gene. In International journal of oncology, 53, 417-433. doi:10.3892/ijo.2018.4398. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29750421/
2. Mo, Yinyin, Sun, Lishuang, Li, Shu, Chen, Zhengyu, Li, Genliang. 2024. The mechanism of INO80D involved in chromatin remodeling regulating spermatogenesis in Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis). In Molecular genetics and genomics : MGG, 299, 83. doi:10.1007/s00438-024-02177-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39212752/
3. Luo, Lvjing, Sun, Lishuang, Li, Shu, Mo, Yinyin, Li, Genliang. 2024. Localization and functional analysis of miR-92a-3p regulating Ino80d in mouse testis. In Reproductive biology, 24, 100961. doi:10.1016/j.repbio.2024.100961. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39405922/
4. Dermawan, Josephine K, Malik, Faizan, Gross, John M, D'Almeida Costa, Felipe, Fritchie, Karen J. 2024. Novel PAX3::MAML3 Fusion Identified in Alveolar Rhabdomyosarcoma, Using DNA Methylation Profiling to Expand the Genetic Spectrum of "Fusion-Positive" Cases. In Modern pathology : an official journal of the United States and Canadian Academy of Pathology, Inc, 37, 100594. doi:10.1016/j.modpat.2024.100594. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39147032/
5. Malouf, Gabriel G, Su, Xiaoping, Yao, Hui, Weinstein, John, Tannir, Nizar M. 2014. Next-generation sequencing of translocation renal cell carcinoma reveals novel RNA splicing partners and frequent mutations of chromatin-remodeling genes. In Clinical cancer research : an official journal of the American Association for Cancer Research, 20, 4129-40. doi:10.1158/1078-0432.CCR-13-3036. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24899691/
6. Wang, Jiqing, Wang, Yuqing, Li, Shanshan, Xu, Shifen, Mi, Yiqun. 2024. Exploring acetylation-related gene markers in polycystic ovary syndrome: insights into pathogenesis and diagnostic potential using machine learning. In Gynecological endocrinology : the official journal of the International Society of Gynecological Endocrinology, 40, 2427202. doi:10.1080/09513590.2024.2427202. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39585802/
7. Sanglard, Leticia P, Nascimento, Moysés, Moriel, Philipe, Duarte, Márcio de S, Serão, Nick V L. 2018. Impact of energy restriction during late gestation on the muscle and blood transcriptome of beef calves after preconditioning. In BMC genomics, 19, 702. doi:10.1186/s12864-018-5089-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30253751/
8. Zhang, Tongyu, Chen, Yu, Wen, Junhui, Qu, Lujiang, Ning, Zhonghua. 2021. Transcriptomic Analysis of Laying Hens Revealed the Role of Aging-Related Genes during Forced Molting. In Genes, 12, . doi:10.3390/genes12111767. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34828373/
9. Arabfard, Masoud, Parvin, Shahram, Ghanei, Mostafa. 2025. Identification and characterization of lncRNA-miRNA-mRNA tripartite network of sulfur mustard exposed patients. In International immunopharmacology, 149, 114204. doi:10.1016/j.intimp.2025.114204. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39919453/
