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C57BL/6JCya-Ddx21em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称:
Ddx21-flox
产品编号:
S-CKO-17839
品系背景:
C57BL/6JCya
小鼠资源库
* 使用本品系发表的文献需注明:Ddx21-flox mice (Strain S-CKO-17839) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Ddx21em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-56200-Ddx21-B6J-VB
产品编号
S-CKO-17839
基因名
Ddx21
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
D10Wsu42e;D10Ertd645e
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:1860494 Mice homozygous for an ENU-induced allele exhibit embryonic lethality. Mice homozygous for a knock-out allele show embryonic growth retardation and complete embryonic lethality prior to organogenesis, with morula-like embryos failing to hatch from the zona pellucida and to form in vitro outgrowths.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Ddx21位于小鼠的10号染色体,采用基因编辑技术,通过高通量电转受精卵方式,获得Ddx21基因条件性敲除小鼠,性成熟后取精子冻存。
Ddx21-flox小鼠模型由赛业生物(Cyagen)采用基因编辑技术构建。Ddx21基因位于小鼠10号染色体上,由15个外显子组成,其中ATG起始密码子在1号外显子,TGA终止密码子在15号外显子。条件性敲除区域(cKO区域)位于2号外显子到11号外显子,包含1871个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Ddx21基因功能的丧失。 Ddx21-flox小鼠模型的构建过程包括将基因编辑技术生成的靶向载体与受精卵结合。随后,对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。携带敲除等位基因的小鼠表现为胚胎致死。此外,敲除2号外显子到11号外显子会导致基因移码,覆盖73.29%的编码区域。第一号内含子中5'-loxP位点的插入大小为3236个碱基对,第十一号内含子中3'-loxP位点的插入大小为1779个碱基对。有效的cKO区域大小约为13.3千碱基对。该策略是基于现有数据库中的遗传信息设计的。由于生物过程的复杂性,所有loxP插入对基因转录、RNA剪接和蛋白质翻译的影响无法在现有技术水平上预测。 Ddx21-flox小鼠模型可用于研究Ddx21基因在小鼠体内的功能。
基因研究概述
Ddx21,也称为DEAD-box RNA解旋酶21,是DEAD-box RNA解旋酶家族的成员之一。DEAD-box RNA解旋酶是一类重要的RNA结合蛋白,参与调控RNA的代谢过程,包括RNA的剪接、转运、翻译和降解等。Ddx21在多种生物学事件中发挥重要作用,包括基因表达调控、DNA损伤修复、RNA剪接、转录调控等。此外,Ddx21还与多种疾病的发生发展密切相关,包括癌症、神经母细胞瘤等。
葡萄糖是一种普遍存在的生物能量来源,近年来研究发现,葡萄糖可以与多种RNA结合蛋白(RBPs)结合,包括Ddx21 RNA解旋酶。葡萄糖可以结合到Ddx21的ATP结合域,改变蛋白质的构象,抑制解旋酶活性,并使Ddx21二聚体解离。在分化过程中,葡萄糖水平的升高与Ddx21从核仁到核浆的重新定位相关,Ddx21在核浆中组装成更大的蛋白质复合物,包含RNA剪接因子。Ddx21以葡萄糖依赖的方式定位于mRNA内含子中的特定SCUGSDGC基序,并促进关键促分化基因的剪接,包括GRHL3、KLF4、OVOL1和RBPJ。这些发现揭示了葡萄糖在调节RNA解旋酶二聚化和功能方面的生化机制,这对于组织分化至关重要[1]。
RNA结合蛋白(RBPs)在癌症进展中发挥重要作用,但其潜在的机制尚不清楚。研究发现,Ddx21 RNA解旋酶在结直肠癌(CRC)中高度表达,这导致CRC细胞在体外迁移和侵袭,并在体内导致CRC转移到肝脏和肺部。Ddx21对CRC转移的影响与上皮-间质转化(EMT)通路的激活相关。此外,研究揭示了Ddx21蛋白在体外和CRC细胞中发生相分离,这控制了CRC转移。相分离的Ddx21高度结合在MCM5基因位点,当其内在无序区域(IDR)发生突变时,相分离被破坏,Ddx21的结合显著减少。当在CRC中敲除Ddx21时,其转移能力受损,而通过异位表达MCM5可以恢复其转移能力,表明MCM5是Ddx21下游的关键靶点,对于CRC转移至关重要。此外,Ddx21和MCM5共高表达与III期和IV期CRC患者的预后不良显著相关,表明这一机制在CRC晚期和转移阶段的重要性[2]。
RNA解旋酶在几乎所有的生物事件中都参与其中,DDXs家族是RNA解旋酶家族中最大的亚家族之一。最近的研究表明,RNA解旋酶Ddx21参与多种生物学事件,特别是在基因表达调控中。Ddx21在基因组中通过促进DNA损伤修复和解决R环,有助于维持基因组稳定性。它还通过直接结合到启动子区域、与转录因子相互作用以及通过非编码RNA增强转录来促进转录调控。此外,Ddx21还参与多种RNA代谢过程,如RNA处理、翻译和降解。有趣的是,Ddx21的活性和功能受翻译后修饰的调节,这会影响Ddx21的定位和降解。除了作为RNA解旋酶的功能外,Ddx21还作为非酶功能,解开RNA,调节转录后修饰并促进转录。接下来,讨论了Ddx21作为疾病临床预测因子的潜在应用,这可能有助于提供分子治疗的新药靶点[3]。
Ddx21 RNA解旋酶与RNA聚合酶I(Pol I)转录相关的环状结构受到SLERT lncRNA的调节。Ddx21形成的环状结构围绕多个Pol I复合物,并抑制前rRNA转录。SLERT lncRNA通过其非snoRNA序列与Ddx21相互作用,并改变单个Ddx21分子,使Ddx21环状结构松散,并消除Ddx21对Pol I转录的抑制。这些结果表明,SLERT lncRNA在rRNA生物合成中发挥重要作用,并调节Ddx21环状结构的排列,影响Pol I复合物[4]。
DEAD-box RNA解旋酶对于RNA生命周期的各个方面调节至关重要,但它们参与的分子基础,特别是在哺乳动物细胞中,仍然知之甚少。研究表明,DEAD-box RNA解旋酶Ddx21可以感知RNA聚合酶(Pol)I和II的转录状态,控制人类细胞中核糖体生物合成的多个步骤。Ddx21广泛与Pol I和Pol II转录的基因以及多种RNA种类相关联,最显著的是与非编码RNA相关,包括核糖体RNA、小核仁RNA(snoRNA)和7SK RNA。尽管这些分子相互作用在染色质和RNA水平上都相当广泛,但它们在调节核糖体基因的表达方面表现出显著的特异性。在核仁中,Ddx21占据转录的rDNA位点,直接与rRNA和snoRNA接触,并促进rRNA的转录、处理和修饰。在核浆中,Ddx21结合7SK RNA,作为7SK小核仁RNA蛋白(snRNP)复合物的一部分,被募集到Pol II转录的基因的启动子区域,编码核糖体蛋白和snoRNA。启动子结合的Ddx21通过其解旋酶活性,促进其靶基因的转录。这些结果揭示了Ddx21在核糖体生物合成多个步骤中的多方面作用,并提供了哺乳动物RNA解旋酶参与RNA修饰和Pol II延长控制的证据[5]。
急性髓细胞性白血病(AML)是一种预后不良的血液系统恶性肿瘤。尽管化疗和靶向治疗有效,但复发或耐药仍然是AML患者的主要威胁。N6-甲基腺苷(m6A)RNA甲基化和超级增强子(SEs)在AML的发生发展中起着重要作用。然而,m6A和SEs在AML中的潜在关系尚未阐明。通过分析来自Gene Expression Omnibus(GEO)队列的染色质免疫沉淀(ChIP)测序数据,发现AML中有两个与SE相关的转录本IGF2BP2和IGF2BP3。在IGF2BP2和IGF2BP3中观察到H3K27ac、H3K4me1和BRD4的高度富集,它们的表达由SE机制驱动。然后,IGF2BP2和IGF2BP3通过m6A依赖的方式增强了Ddx21 mRNA的稳定性。在AML患者中,Ddx21高度表达,这表明预后不良。功能上,敲低Ddx21抑制细胞增殖,促进细胞凋亡,并导致细胞周期阻滞。机制上,Ddx21募集转录因子YBX1,协同触发ULK1表达。此外,沉默ULK1可以逆转Ddx21过表达对AML细胞的促进作用。SE-IGF2BP2/IGF2BP3-DDX21轴的失调促进了AML的进展。这些发现为SEs和m6A修饰之间的联系提供了新的见解,阐明了IGF2BP2和IGF2BP3对Ddx21的调节机制,并揭示了Ddx21在AML中的潜在作用[6]。
DEAD-box RNA解旋酶是RNA代谢的重要调节因子,并与癌症的发生发展有关。有趣的是,这些解旋酶构成了一个重要的RNA结合蛋白家族,对于保护基因组至关重要。目前的研究为基因组稳定性与几个DEAD-box RNA解旋酶家族蛋白之间的联系提供了见解,包括Ddx1、Ddx3X、Ddx5、Ddx19、Ddx21、Ddx39B和Ddx41。对于每个解旋酶,已经回顾了支持它们在保护基因组方面的作用的证据及其提出的机制。这些解旋酶调节促进基因组稳定性的因子的表达,防止DNA损伤,并可以直接参与DNA损伤的响应和修复。最后,总结了DEAD-box RNA解旋酶与癌症之间的病理和治疗关系,以及它们在基因组稳定性方面的创新作用[7]。
PARP抑制剂(PARPi)通过诱导与DNA修复缺陷(例如,在BRCA1/2突变细胞中的合成致死性)相关的生长控制,阻止癌细胞生长。研究发现了一种PARPi介导的BRCA1/2完整乳腺癌细胞生长控制的替代途径,涉及rDNA转录和核糖体生物合成。PARP-1结合到snoRNA上,在核仁中刺激PARP-1的催化活性,独立于DNA损伤。激活的PARP-1通过ADP-核糖基化定位于核仁的RNA解旋酶Ddx21,促进rDNA转录。使用PARPi或突变ADP-核糖基化位点会减少Ddx21的核仁定位、rDNA转录、核糖体生物合成、蛋白质翻译和细胞生长。这一途径的显著特征在鼠类异种移植瘤和人乳腺癌患者样本中都很明显。PARP-1和核仁Ddx21水平的升高与癌症相关结果相关。这些研究为PARPi在缺乏DNA修复缺陷的癌细胞中的疗效提供了机制上的理由[8]。
RNA解旋酶Ddx21对于核糖体生物合成至关重要,在CRC中上调,但其失调机制以及Ddx21在CRC中促进肿瘤发生的机制尚不清楚。研究发现,Ddx21是β-catenin的直接转录靶基因,并介导β-catenin在CRC中的促肿瘤功能。Ddx21的表达与β-catenin的表达和活性相关,并且高Ddx21表达与CRC患者的预后不良相关。Ddx21的缺失导致YAP的细胞质易位和转录活性降低,并抑制CRC细胞的增殖和迁移,这可以通过YAP的再活化部分挽救。重要的是,通过使用翻译延长抑制剂和DNA嵌入剂,发现核糖体应激上调Ddx21的表达,并通过ZAKα-MKK4/7-JNK轴导致LATS下调和YAP活化。总的来说,这项研究揭示了CRC中Ddx21的转录激活机制,以及核糖体应激反应中YAP的活化,表明涉及核糖体应激诱导和YAP抑制的组合疗法的潜力[9]。
大约25%的人类神经母细胞瘤是由MYCN癌基因的扩增引起的,这导致N-Myc癌蛋白的过表达。这种患者亚型的存活率不到50%。研究发现,N-Myc蛋白结合到DEAD-box RNA解旋酶Ddx21基因启动子上,上调了Ddx21 mRNA和蛋白的表达。全基因组差异基因表达研究确定中心体蛋白CEP55是Ddx21敲低后MYCN扩增神经母细胞瘤细胞中显著下调的基因之一。敲低Ddx21或CEP55降低了神经母细胞瘤细胞的细胞骨架稳定性,细胞增殖和几乎消除了集落形成能力。重要的是,Ddx21敲低最初导致神经母细胞瘤小鼠的肿瘤消退,并抑制肿瘤进展。在人类神经母细胞瘤组织中,Ddx21的高水平表达与N-Myc的高水平表达和CEP55的表达相关,并独立预测了患者的预后不良。总而言之,这些数据表明Ddx21诱导CEP55的表达,MYCN扩增神经母细胞瘤细胞的增殖和肿瘤发生,Ddx21和CEP55是治疗MYCN扩增神经母细胞瘤的有效治疗靶点[10]。
综上所述,Ddx21是一种重要的RNA解旋酶,参与多种生物学事件,包括基因表达调控、DNA损伤修复、RNA剪接、转录调控等。Ddx21在多种疾病的发生发展中发挥重要作用,包括癌症、神经母细胞瘤等。此外,Ddx21还与多种RNA代谢过程相关,包括RNA处理、翻译和降解。Ddx21的研究有助于深入理解RNA解旋酶在生物学功能和疾病发生中的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Miao, Weili, Porter, Douglas F, Lopez-Pajares, Vanessa, Nolan, Garry P, Khavari, Paul A. . Glucose dissociates DDX21 dimers to regulate mRNA splicing and tissue differentiation. In Cell, 186, 80-97.e26. doi:10.1016/j.cell.2022.12.004. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36608661/
2. Gao, Huabin, Wei, Huiting, Yang, Yang, Wang, Jia, Han, Anjia. 2023. Phase separation of DDX21 promotes colorectal cancer metastasis via MCM5-dependent EMT pathway. In Oncogene, 42, 1704-1715. doi:10.1038/s41388-023-02687-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37029300/
3. Wang, Shaoshuai, Yang, Ruiqi, Song, Mengzhen, Dai, Chen, Song, Tongxing. 2024. Current understanding of the role of DDX21 in orchestrating gene expression in health and diseases. In Life sciences, 349, 122716. doi:10.1016/j.lfs.2024.122716. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38762067/
4. Xing, Yu-Hang, Yao, Run-Wen, Zhang, Yang, Yang, Li, Chen, Ling-Ling. . SLERT Regulates DDX21 Rings Associated with Pol I Transcription. In Cell, 169, 664-678.e16. doi:10.1016/j.cell.2017.04.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28475895/
5. Calo, Eliezer, Flynn, Ryan A, Martin, Lance, Chang, Howard Y, Wysocka, Joanna. 2014. RNA helicase DDX21 coordinates transcription and ribosomal RNA processing. In Nature, 518, 249-53. doi:10.1038/nature13923. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25470060/
6. Zhao, Yanchun, Zhou, Yutong, Qian, Yu, Sun, Jie, Jin, Jie. . m6A-dependent upregulation of DDX21 by super-enhancer-driven IGF2BP2 and IGF2BP3 facilitates progression of acute myeloid leukaemia. In Clinical and translational medicine, 14, e1628. doi:10.1002/ctm2.1628. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38572589/
7. Cargill, Michael, Venkataraman, Rasika, Lee, Stanley. 2021. DEAD-Box RNA Helicases and Genome Stability. In Genes, 12, . doi:10.3390/genes12101471. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34680866/
8. Kim, Dae-Seok, Camacho, Cristel V, Nagari, Anusha, Challa, Sridevi, Kraus, W Lee. 2019. Activation of PARP-1 by snoRNAs Controls Ribosome Biogenesis and Cell Growth via the RNA Helicase DDX21. In Molecular cell, 75, 1270-1285.e14. doi:10.1016/j.molcel.2019.06.020. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31351877/
9. Tang, Wenbo, Yang, Yiqing, Fu, Zhuoyue, Du, Peng, Liu, Chen-Ying. 2024. The RNA helicase DDX21 activates YAP to promote tumorigenesis and is transcriptionally upregulated by β-catenin in colorectal cancer. In Oncogene, 43, 3227-3239. doi:10.1038/s41388-024-03160-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39285230/
10. Putra, Vina, Hulme, Amy J, Tee, Andrew E, Liu, Tao, Liu, Pei Y. 2021. The RNA-helicase DDX21 upregulates CEP55 expression and promotes neuroblastoma. In Molecular oncology, 15, 1162-1179. doi:10.1002/1878-0261.12906. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33497018/
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