智鼠故事 
C57BL/6JCya-Rasd1em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Rasd1-flox
产品编号：
S-CKO-04702
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Rasd1-flox mice (Strain S-CKO-04702) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Rasd1em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-19416-Rasd1-B6J-VA
产品编号
S-CKO-04702
基因名
Rasd1
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
Dexras1
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:1270848 Mice homozygous for disruptions in this gene have a reduced ability to entrain to low intensity light with resulting abnormalities in circadian rhythm.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Rasd1位于小鼠的11号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Rasd1基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Rasd1-flox小鼠是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Rasd1基因位于小鼠11号染色体上，由2个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TAG终止密码子在2号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于1号外显子和2号外显子，覆盖100.0%的编码区域。删除该区域会导致小鼠Rasd1基因功能的丧失。Rasd1-flox小鼠模型的生成过程包括将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。随后，对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。携带敲除等位基因的小鼠表现出对低强度光线同步能力降低，导致昼夜节律异常。Rasd1-flox小鼠可用于研究Rasd1基因在小鼠体内的功能。
基因研究概述
RASD1，也称为Dexamethasone-induced Ras-related protein 1（Dexras1），是一种在信号转导中发挥重要作用的单核G蛋白，属于Ras超家族。它参与多种生物学过程，包括细胞信号转导、激素调节、应激反应和细胞周期调控等。RASD1的功能与其在细胞内的定位密切相关，它主要存在于细胞质和细胞核中，通过与其他蛋白质相互作用，参与调控细胞内的信号通路。
RASD1在多种疾病的发生发展中发挥重要作用。例如，研究表明，RASD1的表达与精神分裂症的发生发展相关。在一项针对土耳其人群的研究中，研究人员发现RASD1基因的两个罕见变异（c.722A>T和c*31G>A）与精神分裂症的发生相关[1]。此外，RASD1还与肥厚型心肌病的发生发展相关。一项研究利用机器学习方法预测了肥厚型心肌病的诊断基因生物标志物，其中RASD1被确定为诊断肥厚型心肌病的潜在生物标志物[3]。此外，RASD1还与卵巢卵母细胞的成熟相关。一项研究发现，RASD1在卵母细胞成熟过程中发挥重要作用，其表达下调会导致卵母细胞成熟受阻[6]。
RASD1的表达受多种因素的调控。例如，研究表明，RASD1的表达受糖皮质激素的调控。一项研究发现，地塞米松可以诱导RASD1的表达，而地塞米松诱导的RASD1表达主要发生在垂体前叶的促皮质细胞中[4]。此外，RASD1的表达还受雌激素的调控。一项研究发现，RASD1的表达受雌激素的调控，其表达在雌性大鼠的垂体前叶细胞中随雌激素水平的变化而变化[2]。此外，RASD1的表达还受m6A甲基化修饰的调控。一项研究发现，KIAA1429可以通过m6A-YTHDF2依赖机制调控RASD1的表达，从而影响胃癌的发生发展[5]。
综上所述，RASD1是一种在信号转导中发挥重要作用的单核G蛋白，参与多种生物学过程，包括细胞信号转导、激素调节、应激反应和细胞周期调控等。RASD1在多种疾病的发生发展中发挥重要作用，包括精神分裂症、肥厚型心肌病和卵巢卵母细胞的成熟等。RASD1的表达受多种因素的调控，包括糖皮质激素、雌激素和m6A甲基化修饰等。RASD1的研究有助于深入理解信号转导的生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Durmaz, Ceren Damla, Karabulut, Halil Gürhan, Saka, Meram Can, Atbaşoğlu, Cem, Ilgın Ruhi, Hatice. 2022. Genetic Analysis of RASD1 as a Candidate Gene for Schizophrenia. In Balkan medical journal, 39, 422-428. doi:10.4274/balkanmedj.galenos.2022.2022-5-90. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36305088/
2. Wang, Linghong, Mitsui, Tetsuo, Ishida, Maho, Izawa, Michi, Arita, Jun. 2017. Rasd1 is an estrogen-responsive immediate early gene and modulates expression of late genes in rat anterior pituitary cells. In Endocrine journal, 64, 1063-1071. doi:10.1507/endocrj.EJ17-0148. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28835591/
3. You, Hongjun, Dong, Mengya. . Prediction of diagnostic gene biomarkers for hypertrophic cardiomyopathy by integrated machine learning. In The Journal of international medical research, 51, 3000605231213781. doi:10.1177/03000605231213781. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38006610/
4. Foradori, Chad D, Mackay, Laci, Huang, Chen-Che J, Kemppainen, Robert J. 2021. Expression of Rasd1 in mouse endocrine pituitary cells and its response to dexamethasone. In Stress (Amsterdam, Netherlands), 24, 659-666. doi:10.1080/10253890.2021.1907340. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33840368/
5. Ren, Mengting, Pan, Hanghai, Zhou, Xinxin, Yu, Mosang, Ji, Feng. 2024. KIAA1429 promotes gastric cancer progression by destabilizing RASD1 mRNA in an m6A-YTHDF2-dependent manner. In Journal of translational medicine, 22, 584. doi:10.1186/s12967-024-05375-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38902717/
6. Lee, Youngeun, Kim, Kyeoung-Hwa, Yoon, Hyemin, Chang, Eun Mi, Choi, Youngsok. 2016. RASD1 Knockdown Results in Failure of Oocyte Maturation. In Cellular physiology and biochemistry : international journal of experimental cellular physiology, biochemistry, and pharmacology, 40, 1289-1302. doi:10.1159/000453182. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27997888/
