智鼠故事 
C57BL/6JCya-Dusp1em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Dusp1-flox
产品编号：
S-CKO-04579
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Dusp1-flox mice (Strain S-CKO-04579) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Dusp1em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-19252-Dusp1-B6J-VA
产品编号
S-CKO-04579
基因名
Dusp1
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
erp；MKP1；mkp-1；3CH134；Ptpn16
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:105120 Homozygous mutant mice were viable, fertile, and showed no apparent morphological defects.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Dusp1位于小鼠的17号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Dusp1基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Dusp1-flox小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Dusp1基因位于小鼠17号染色体上，由4个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TGA终止密码子在4号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于1号外显子至4号外显子，包含1104个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Dusp1基因功能的丧失。Dusp1-flox小鼠模型的构建过程包括使用BAC克隆RP23-352E3作为模板，通过PCR生成同源臂和cKO区域。随后，将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。出生的小鼠将进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。携带敲除等位基因的小鼠是可存活的、有生育能力的，并且没有明显的形态学缺陷。此外，1号外显子至4号外显子涵盖了100.0%的编码区域。有效的cKO区域的大小约为3.3kb。该策略基于现有数据库中的遗传信息设计。由于生物过程的复杂性，目前技术水平下无法预测loxP插入对基因转录、RNA剪接和蛋白质翻译的影响。
基因研究概述
Dusp1，即双特异性磷酸酶1（Dual-specificity phosphatase 1），是一种重要的信号通路调节因子，属于双特异性磷酸酶家族成员。Dusp1在细胞内信号转导中发挥着关键作用，它能够通过去磷酸化丝氨酸/苏氨酸和酪氨酸残基来调节多种信号通路的活性，包括MAPK（Mitogen-activated protein kinase）家族成员如ERK（Extracellular signal-regulated kinase）、p38 MAPK和JNK（c-Jun N-terminal kinase）的活性。Dusp1的表达和功能在多种细胞过程中发挥重要作用，包括细胞增殖、分化和凋亡。
在急性肾损伤（AKI）的研究中，Dusp1被发现可以保护肾脏免受缺血性损伤。研究显示，Dusp1在人类移植肾脏组织和小鼠AKI组织中显著上调。Dusp1基因的缺失加剧了小鼠的急性缺血性损伤、术后肾纤维化和肾小管线粒体功能障碍。机制上，DUSP1可以与JNK直接结合，DUSP1的缺失导致JNK和BAX的异常磷酸化以及BAX向线粒体的转位。BAX转位促进了线粒体DNA（mtDNA）的泄漏，并激活了cGAS-STING信号通路。抑制JNK或BAX可以抑制mtDNA泄漏。此外，STING敲除或JNK抑制可以显著减轻DUSP1缺失在缺血性AKI模型中的不良影响。这些发现表明，DUSP1在AKI期间的保护反应中起着调节作用，通过防止BAX诱导的mtDNA泄漏和通过JNK去磷酸化阻断cGAS-STING信号通路的过度激活来保护AKI[1]。
在肿瘤发生、进展和治疗的研究中，DUSP1也被发现发挥着重要作用。DUSP1在多种人类癌症中异常表达，与肿瘤患者的预后相关。DUSP1作为蛋白磷酸酶，通过直接去磷酸化苏氨酸和酪氨酸来下调p38 MAPK和JNK的信号转导。DUSP1参与了正常细胞的增殖、分化和凋亡等多种功能。此外，DUSP1在肿瘤化疗、免疫治疗和生物治疗中也发挥着作用[2]。
除了在肾脏和肿瘤中的作用，DUSP1还与哮喘的治疗有关。研究发现，DUSP1是糖皮质激素反应基因，其表达受到糖皮质激素的调控。DUSP1的过表达与吸入性皮质类固醇抵抗和支气管扩张剂反应相关。DUSP1的表达受到炎症细胞因子IL1β的诱导，并且DUSP1的敲低可以进一步增加IL1β诱导的IL6和IL8的表达。这些发现表明，DUSP1在哮喘的治疗中可能发挥着重要作用[3]。
在化疗的持久性研究中，DUSP1被发现与多种癌症的微小残留病（MRD）相关。研究发现，DUSP1是泛癌症MRD中最显著和广泛富集的基因。DUSP1对MRD的形成至关重要，并在T细胞-成纤维细胞通讯和CD4+ T细胞的细胞毒性功能中发挥作用。这些发现为预防和管理MRD提供了新的靶点和治疗策略[4]。
DUSP1在慢性肾病（CKD）和非酒精性脂肪性肝病（NAFLD）的诊断中也具有潜在价值。研究发现，DUSP1在CKD患者中高表达，并且与NAFLD的发展相关。DUSP1的表达水平与免疫细胞浸润相关，并且可以作为CKD患者中NAFLD的诊断标志物和治疗靶点[5]。
在非小细胞肺癌（NSCLC）的治疗中，DUSP1被发现与奥希替尼耐药性相关。研究发现，DUSP1在奥希替尼耐药的NSCLC细胞中过表达，并且DUSP1的敲低可以增强NSCLC细胞对奥希替尼的敏感性。机制上，DUSP1下调增加了JNK、ERK和p38 MAPK的磷酸化水平，激活了MAPK信号通路。这些发现表明，DUSP1的下调可以通过激活MAPK信号通路来恢复NSCLC细胞对奥希替尼的敏感性[6]。
在头颈部鳞状细胞癌（HNSCC）的肿瘤微环境中，CCR7/DUSP1信号轴被发现调节肿瘤生长。研究发现，DUSP1在CCR7敲除组中的iCAF（Inflammatory Cancer-Associated Fibroblasts）中显著上调。DUSP1的敲低可以抑制肿瘤细胞的增殖、侵袭和迁移，而DUSP1的过表达则增强了这些能力。此外，DUSP1的敲低增加了iCAF上清液中的TGF-β1浓度，而DUSP1的过表达则降低了TGF-β1浓度。这些发现表明，CCR7/DUSP1信号轴通过调节iCAF中的TGF-β1分泌来调节肿瘤生长[7]。
在唾液腺鳞状细胞癌（SG-SCC）的进展中，DUSP1和SOX2的表达被发现在控制SG-SCC进展中发挥着重要作用。研究发现，DUSP1的敲除导致SG-SCC细胞生长能力下降、自我更新能力降低以及在免疫缺陷小鼠中形成肿瘤的能力下降。机制上，DUSP1的敲除导致应激和凋亡激酶JNK1/2的过度活化。此外，RNAseq分析显示，DUSP1的敲除导致SOX2的mRNA和蛋白水平降低。然而，SOX2的敲除并没有重现DUSP1敲除表型，并且SOX2敲除的细胞表现出增强的自我更新能力和在免疫缺陷小鼠中形成肿瘤的能力。这些发现表明，DUSP1和SOX2在SG-SCC中具有相反的功能，DUSP1对于肿瘤生长是必需的，而SOX2则具有肿瘤抑制功能。DUSP1和SOX2的联合表达可能是一个有用的生物标志物，可以预测SG-SCC患者的进展[8]。
在前列腺癌（PCa）的发生中，piRNA PROPER被发现通过靶向N6-甲基腺苷（m6A）介导的RNA环化来抑制DUSP1的翻译，从而促进PCa的恶性行为。研究发现，PROPER的表达在PCa肿瘤中上调，并且与PCa的风险和恶性进展相关。机制上，PROPER与YTHDF2结合，识别m6A并促进 EIF2S3在5'-非翻译区（UTR）和YTHDF2/YBX3在3'-UTR之间的RNA结合蛋白相互作用，从而促进DUSP1的环化。这种m6A依赖的mRNA环化模式增强了DUSP1的降解并抑制了DUSP1的翻译，最终减少了DUSP1的表达，并通过p38 MAPK信号通路促进了PCa的转移。抑制PROPER的表达可以有效地抑制异种移植生长，表明其作为治疗靶点的潜力。这些发现表明，靶向piRNA PROPER介导的遗传和表观遗传精细调控是一种有希望的策略，可以同时预防和治疗PCa[9]。
在急性髓细胞白血病（AML）的治疗中，DUSP1的信号通路被发现调节对阿糖胞苷（Ara-C）的敏感性。研究发现，AML患者中DUSP1的表达水平高于对照组。生存分析表明，DUSP1表达水平较高的AML患者具有较差的临床预后。进一步的分析表明，DUSP1在NRAS突变的AML中过表达。DUSP1的敲低可以增强AML细胞对Ara-C治疗的敏感性。机制上，DUSP1下调导致NRAS G13D突变AML细胞中MAPK通路的磷酸化水平显著升高。PPI分析显示，DUSP1与NRAS突变AML中的免疫基因CREB1和CXCL8相关。此外，还揭示了RAS突变AML微环境中的肿瘤浸润免疫细胞的相关性。这些发现表明，DUSP1信号通路可能调节AML对Ara-C的敏感性[10]。
综上所述，DUSP1在多种疾病中发挥着重要作用。DUSP1通过调节信号通路活性，影响细胞增殖、分化和凋亡等多种细胞过程。DUSP1的异常表达与多种癌症的发生、进展和治疗相关，并且可能成为新的治疗靶点。此外，DUSP1还与肾脏损伤、哮喘、化疗持久性、CKD和NAFLD等疾病相关，并可能为这些疾病的治疗和诊断提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Shi, Lang, Zha, Hongchu, Pan, Zhou, Song, Zhixia, Zhu, Jiefu. 2023. DUSP1 protects against ischemic acute kidney injury through stabilizing mtDNA via interaction with JNK. In Cell death & disease, 14, 724. doi:10.1038/s41419-023-06247-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37935658/
2. Shen, Jiliang, Zhang, Yaping, Yu, Hong, Shi, Liang, Cai, Xiujun. 2016. Role of DUSP1/MKP1 in tumorigenesis, tumor progression and therapy. In Cancer medicine, 5, 2061-8. doi:10.1002/cam4.772. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27227569/
3. Himes, Blanca E, Jiang, Xiaofeng, Wagner, Peter, Weiss, Scott T, Lu, Quan. 2014. RNA-Seq transcriptome profiling identifies CRISPLD2 as a glucocorticoid responsive gene that modulates cytokine function in airway smooth muscle cells. In PloS one, 9, e99625. doi:10.1371/journal.pone.0099625. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24926665/
4. Liu, Yuanhui, Peng, Bi, Chen, Ziqi, Zhang, Jingmin, Yuan, Xianglin. 2024. Pan-cancer transcriptional atlas of minimal residual disease links DUSP1 to chemotherapy persistence. In Experimental hematology & oncology, 13, 42. doi:10.1186/s40164-024-00509-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38627863/
5. Cao, Yang, Du, Yiwei, Jia, Weili, Tao, Kaishan, Yang, Zhaoxu. 2023. Identification of biomarkers for the diagnosis of chronic kidney disease (CKD) with non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD) by bioinformatics analysis and machine learning. In Frontiers in endocrinology, 14, 1125829. doi:10.3389/fendo.2023.1125829. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36923221/
6. He, Wenjuan, Liu, Ping, Lei, Quan, Xu, Jun, Liu, Li. 2024. DUSP1 Promotes Osimertinib Drug-Tolerant Persistence by Inhibiting MAPK/ERK Signaling in Non-small Cell Lung Cancer. In Molecular biotechnology, 67, 1256-1268. doi:10.1007/s12033-024-01127-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38551790/
7. Gao, Jiaxing, Wang, Zengxu, Lin, Shanfeng, Li, Zhenning, Liu, Fayu. 2024. CCR7/DUSP1 signaling Axis mediates iCAF to regulates head and neck squamous cell carcinoma growth. In Cellular signalling, 122, 111305. doi:10.1016/j.cellsig.2024.111305. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39067836/
8. Acero-Riaguas, Lucía, Griso-Acevedo, Ana Belén, SanLorenzo-Vaquero, Alejandro, Sastre, Leandro, Sastre-Perona, Ana. 2024. DUSP1 and SOX2 expression determine squamous cell carcinoma of the salivary gland progression. In Scientific reports, 14, 15007. doi:10.1038/s41598-024-65945-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38951654/
9. Ben, Shuai, Ding, Zhutao, Xin, Junyi, Cheng, Gong, Wang, Meilin. 2024. piRNA PROPER Suppresses DUSP1 Translation by Targeting N6-Methyladenosine-Mediated RNA Circularization to Promote Oncogenesis of Prostate Cancer. In Advanced science (Weinheim, Baden-Wurttemberg, Germany), 11, e2402954. doi:10.1002/advs.202402954. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38962952/
10. Sun, Huali, Ren, Yanling, Zhou, Xinping, Ying, Shenpeng, Lin, Peipei. . DUSP1 Signaling Pathway Regulates Cytarabine Sensitivity in Acute Myeloid Leukemia. In Technology in cancer research & treatment, 22, 15330338231207765. doi:10.1177/15330338231207765. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37872685/
