智鼠故事 
C57BL/6JCya-Hsf2em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
产品名称：
Hsf2-flox
产品编号：
S-CKO-02988
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Hsf2-flox mice (Strain S-CKO-02988) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Hsf2em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-15500-Hsf2-B6J-VA
产品编号
S-CKO-02988
基因名
Hsf2
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
-
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:96239 Homozygotes for targeted null mutations exhibit increased late-gestational lethality associated with collapsed lateral ventricles and ventricular bleeding. Survivors may show ventricular dilation, sterility in females, and reduced sperm counts in males.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
全球范围
品系详情
Hsf2位于小鼠的10号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Hsf2基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Hsf2-flox小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）构建的条件性基因敲除小鼠。Hsf2基因位于小鼠10号染色体上，由12个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TAA终止密码子在12号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于4号外显子，包含125个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Hsf2基因功能的丧失。Hsf2-flox小鼠模型的构建过程包括将靶向载体共同注入受精卵，随后，对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。携带敲除等位基因的小鼠表现出妊娠晚期死亡率增加，与侧脑室塌陷和脑室出血有关。幸存者可能表现出脑室扩张、雌性不育以及雄性精子计数减少。Hsf2-flox小鼠模型可用于研究Hsf2基因在小鼠体内的功能。
基因研究概述
Hsf2，即热休克因子2，是一种转录因子，在生物体中发挥着重要的调节作用。它主要与热休克蛋白（HSPs）的转录调控有关，这些蛋白在细胞应对应激（如高温）时扮演着关键角色，帮助维持蛋白质的稳定性和功能。Hsf2的表达和活性受到严格调控，以确保细胞能够适应各种环境压力，同时避免过度应激反应导致的损伤。
在早期小鼠胚胎发育过程中，Hsf2的表达呈现明显的发育调控特征。在囊胚阶段即可检测到Hsf2的DNA结合活性，并在发育的第10天达到峰值[1]。尽管Hsf2的表达水平与HSPs的表达没有明显的相关性，但Hsf2可能参与了HSPs表达的起始、调节或其他尚未发现的发育相关基因的表达控制。
在牛-牦牛杂交后代中，Hsf2基因的表达和表观遗传特征与雄性不育密切相关。研究发现，Hsf2基因在牛-牦牛睾丸组织中表达丰富，并在睾丸发育过程中呈现动态变化，成年时达到高峰[2]。此外，Hsf2基因启动子区域的甲基化程度在牛-牦牛中高于牦牛，提示Hsf2基因的甲基化可能是导致雄性不育的原因之一。
Hsf2不仅在应激反应中发挥作用，还与自噬过程有关。研究发现，Hsf2可以激活自噬相关基因BTG2的转录，进而通过BTG2-SOD2轴影响自噬的诱导和调控[3]。这表明Hsf2在维持细胞内稳态和应对应激过程中具有多种功能。
此外，Hsf2的表达与多种癌症的预后相关。研究发现，Hsf2的表达水平在不同癌症中呈现差异，并与肿瘤浸润免疫细胞、免疫检查点、肿瘤突变负荷（TMB）和微卫星不稳定性（MSI）等因素相关[4]。这提示Hsf2可能成为癌症免疫治疗的潜在靶点。
Hsf2还可以自调控其自身的转录。研究发现，Hsf2可以抑制其自身启动子的活性，形成负反馈调节环路，从而维持其在细胞内的表达水平[5]。
综上所述，Hsf2作为一种重要的转录因子，在细胞应激反应、发育、自噬和癌症等多种生物学过程中发挥着重要作用。对Hsf2的研究有助于深入理解其功能机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Loones, M T, Rallu, M, Mezger, V, Morange, M. . HSP gene expression and HSF2 in mouse development. In Cellular and molecular life sciences : CMLS, 53, 179-90. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9118006/
2. Yang, Qinhui, Xie, Yumian, Pan, Bangting, Li, Jian, Xiong, Xianrong. 2024. The Expression and Epigenetic Characteristics of the HSF2 Gene in Cattle-Yak and the Correlation with Its Male Sterility. In Animals : an open access journal from MDPI, 14, . doi:10.3390/ani14101410. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38791628/
3. Kanugovi Vijayavittal, Abhijnya, Kumar, Pankaj, Sugunan, Sreedevi, Paithankar, Khanderao, Amere Subbarao, Sreedhar. 2022. Heat shock transcription factor HSF2 modulates the autophagy response through the BTG2-SOD2 axis. In Biochemical and biophysical research communications, 600, 44-50. doi:10.1016/j.bbrc.2022.02.018. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35182974/
4. Chen, Fei, Fan, Yumei, Liu, Xiaopeng, Cao, Pengxiu, Tan, Ke. 2022. Pan-Cancer Integrated Analysis of HSF2 Expression, Prognostic Value and Potential Implications for Cancer Immunity. In Frontiers in molecular biosciences, 8, 789703. doi:10.3389/fmolb.2021.789703. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35087869/
5. Park, Seon-Mi, Kim, Soo-A, Ahn, Sang-Gun. 2015. HSF2 autoregulates its own transcription. In International journal of molecular medicine, 36, 1173-9. doi:10.3892/ijmm.2015.2309. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26260034/
