Actr1a-KO 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Actr1a-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-19813

品系全称

C57BL/6JCya-Actr1aem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-54130-Actr1a-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Actr1a-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-19813) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ARP1 actin-related protein 1A, centractin alpha
基因别称
Arp1,actin-RPV,alpha-Arp1
染色体号
Chr 19 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_016860 | Ensembl: ENSMUST00000040270
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 5
敲除长度
~1.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Actr1a,也称为ARP1,是Actin-related protein 1的缩写,是一种与肌动蛋白(Actin)在结构和功能上相似但序列上差异较大的蛋白质。Actr1a属于actin相关蛋白(ARP)家族,这个家族在真核细胞中广泛存在,并在细胞骨架组织、细胞迁移、细胞分裂和信号传导等多种细胞过程中发挥作用。ARP1在细胞内的分布不仅限于细胞质,也有研究发现ARP1在细胞核中存在,参与染色质重塑等核内活动[6]。

Actr1a在多种生物学过程中扮演重要角色。在细胞骨架组织中,Actr1a与dynactin复合体相互作用,参与细胞内物质的运输和定位[7]。此外,Actr1a还在细胞分裂过程中发挥作用,通过调节微管组织中心(MTOC)的形成和定位,影响有丝分裂的进程。在信号传导方面,Actr1a参与Rho信号通路,影响细胞骨架的重组和细胞形态的改变。

Actr1a的表达稳定性在基因表达研究中也受到关注。在牛的妊娠相关研究中,Actr1a被选为潜在的参考基因,用于基因表达数据的标准化[1]。在牛的子宫内膜研究中,Actr1a同样被评估为潜在的参考基因,但最终并未被选为最稳定的参考基因[3]。这表明Actr1a的表达稳定性可能受到不同生理状态和实验条件的影响。

在疾病研究中,Actr1a的表达水平和功能也受到关注。在胰腺癌的研究中,Actr1a被鉴定为一种潜在的癌基因,其表达水平与肿瘤的早期阶段和转移能力相关[2]。在恶性胸膜间皮瘤的研究中,Actr1a的突变与患者的预后相关,突变的患者在接受铂类化疗药物治疗后具有更长的无进展生存期[4]。在结直肠癌的研究中,Actr1a被鉴定为一种潜在的肿瘤相关抗原,其表达水平与患者的免疫反应相关[5]。

综上所述,Actr1a是一种重要的actin相关蛋白,参与细胞骨架组织、细胞分裂和信号传导等多种细胞过程。Actr1a的表达稳定性受到生理状态和实验条件的影响,需要根据具体情况进行评估。在疾病研究中,Actr1a的表达水平和功能与肿瘤的发生和发展相关,可能成为潜在的生物标志物和治疗靶点。

参考文献:
1. Sozoniuk, Magdalena, Jamioł, Monika, Kankofer, Marta, Kowalczyk, Krzysztof. 2022. Reference gene selection in bovine caruncular epithelial cells under pregnancy-associated hormones exposure. In Scientific reports, 12, 12742. doi:10.1038/s41598-022-17069-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35882953/
2. Yee, Ke Xin, Lee, Yu-Cheng, Nguyen, Hieu Duc, Wu, Yung-Fu, Lee, Kuen-Haur. 2024. Uncovering the role of FXYD3 as a potential oncogene and early biomarker in pancreatic cancer. In American journal of cancer research, 14, 4353-4366. doi:10.62347/LUDE7524. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39417182/
3. Walker, Caroline G, Meier, Susanne, Mitchell, Murray D, Roche, John R, Littlejohn, Mathew. 2009. Evaluation of real-time PCR endogenous control genes for analysis of gene expression in bovine endometrium. In BMC molecular biology, 10, 100. doi:10.1186/1471-2199-10-100. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19878604/
4. Pagano, Maria, Ceresoli, Luca Giovanni, Zucali, Paolo Andrea, Normanno, Nicola, Pinto, Carmine. 2020. Mutational Profile of Malignant Pleural Mesothelioma (MPM) in the Phase II RAMES Study. In Cancers, 12, . doi:10.3390/cancers12102948. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33065998/
5. Garifulin, O M, Kykot, V O, Gridina, N Y, Gout, I T, Filonenko, V V. . Application of serex-analysis for identification of human colon cancer antigens. In Experimental oncology, 37, 173-80. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26422100/
6. Blessing, Carolyn A, Ugrinova, Gergana T, Goodson, Holly V. . Actin and ARPs: action in the nucleus. In Trends in cell biology, 14, 435-42. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15308210/
7. Tey, S, Ahmad-Annuar, A, Drew, A P, Nicholson, G A, Kennerson, M L. 2016. Mutation analysis of genes within the dynactin complex in a cohort of hereditary peripheral neuropathies. In Clinical genetics, 90, 127-33. doi:10.1111/cge.12712. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26662454/