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C57BL/6JCya-Tlr13em1/Cya 基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称:
Tlr13-KO
产品编号:
S-KO-08972
品系背景:
C57BL/6JCya
小鼠资源库
* 使用本品系发表的文献需注明:Tlr13-KO mice (Strain S-KO-08972) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Tlr13em1/Cya
品系编号
KOCMP-279572-Tlr13-B6J-VA
产品编号
S-KO-08972
基因名
Tlr13
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
Gm713
NCBI号
修饰方式
全身性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:3045213 Macrophages isolated from mice carrying an ENU-induced mutation respond normally to known TLR ligands and can contain various viral infections; however, mice carrying this allele have not been tested for immune responses in vivo.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Tlr13位于小鼠的X号染色体,采用基因编辑技术,通过应用高通量电转受精卵方式,获得Tlr13基因敲除小鼠,性成熟后取精子冻存。
Tlr13-KO小鼠模型是由赛业生物(Cyagen)构建的全基因组基因敲除小鼠模型。Tlr13基因位于小鼠X号染色体上,由3个外显子组成,其中ATG起始密码子在2号外显子,TGA终止密码子在3号外显子。赛业生物(Cyagen)选取了3号外显子作为目标位点进行基因编辑,该区域包含2940bp的编码序列。构建过程包括将核糖核蛋白(RNP)和靶向载体共同注入受精卵。出生后的小鼠将进行PCR和测序分析以确定基因型。此外,携带ENU诱导突变的小鼠的巨噬细胞能够对已知的TLR配体作出正常反应,并可以抵御各种病毒感染;然而,携带该等位基因的小鼠尚未在体内进行免疫反应的测试。3号外显子从编码区域的约1.24%开始,覆盖了编码区域的98.79%。有效敲除区域的长度约为2.9kb。该策略是基于现有数据库中的遗传信息设计的。由于生物过程的复杂性,现有的技术水平无法预测所有RNA剪接和蛋白质翻译的风险。
基因研究概述
Tlr13,也称为Toll-like receptor 13,是一种重要的免疫受体。Tlr13属于Toll-like受体(TLRs)家族,这些受体在哺乳动物的先天免疫系统中起着关键作用,用于检测各种类型的病原体。Tlr13主要在脾脏中表达,特别是在树突状细胞和巨噬细胞中。Tlr13激活MyD88和TAK1依赖的TLR信号通路,诱导NF-κB的激活。此外,Tlr13还可以通过IRF7激活I型干扰素。研究表明,Tlr13是一种新的TLR,能够识别并响应水泡性口炎病毒[8]。
Tlr13在维持肠道稳态和控制结肠炎相关结肠癌(CAC)中发挥着重要作用。Tlr13缺陷小鼠对DSS诱导的结肠炎易感,且在CAC早期阶段表现出严重的溃疡性结肠炎。此外,Tlr13缺陷小鼠的肠道通透性增加,细胞存活和增殖增强。转录组分析表明,Tlr13缺陷与结肠肿瘤组织的基因表达谱发生显著变化相关。Tlr13缺陷小鼠对CAC的易感性增加,与结肠组织中IL-6、IL-12、TNF-α细胞因子产生增加以及STAT3、NF-κB和MAPK信号通路增强相关。这些发现表明,Tlr13在维持肠道稳态和控制CAC中发挥着保护作用[1]。
Tlr13的基因转录受到多种转录因子的调节。研究发现,Tlr13基因转录通过三个顺式作用元件与Ets2、Sp1和PU.1转录因子相互作用。这些转录因子可能协同作用,导致Tlr13基因的最大转录。此外,NF-κB似乎作为Tlr13转录的抑制剂。过表达Ets2导致Tlr13启动子转录活性显著增加;然而,过表达NF-κB p65则显著抑制了它。此外,干扰素-β能够促进Tlr13转录,而脂多糖/TLR4和肽聚糖/TLR2的激活信号强烈抑制了Tlr13基因启动子[2]。
Tlr13在组织保护中也发挥着重要作用。研究发现,Tlr13在巨噬细胞中检测到由微生物群衍生的核糖体RNA激活的内体TLRs,从而在多个器官如脾脏和肝脏中诱导巨噬细胞积聚。Tlr13触发了紧急骨髓生成,增加了骨髓和脾脏中的髓样祖细胞数量。脾脏巨噬细胞继续增殖并成熟为表达抗炎细胞因子IL-10的巨噬细胞。在肝脏中,Tlr13激活单核细胞/巨噬细胞增殖并成熟为单核细胞衍生的KC(moKC),其中,肝脏X受体(LXR)被激活。在积聚的moKC中,组织清除基因如MerTK、AXL和巨噬细胞凋亡抑制剂(AIM)高度表达,而TLR依赖性促炎细胞因子的产生受损。因此,Rnaset2-/-小鼠对乙酰氨基酚(APAP)和LPS与D-半乳糖胺引起的急性肝损伤具有抵抗力。这些发现表明,Tlr13在溶酶体RNA应激下促进组织保护性KC的补充[3]。
Tlr13是一种内体小鼠TLR,与UNC93B相互作用,迄今为止没有特征性的配体。研究发现,TLR13是一种细菌RNA(bRNA)受体。TLR13激活小鼠DCs中的MyD88和UNC93B,从而产生细胞因子。此外,中国仓鼠卵巢细胞转染TLR13,而不是TLR7或8,能够在RNA特异性方式下对bRNA或链球菌属化脓性链球菌产生反应并激活NF-κB。TLR7拮抗剂IRS661能够抑制TLR13信号传导并减少DCs对整个革兰氏阳性菌的识别,即使在TLR7缺失的情况下也是如此。这些结果确定了TLR13是一种bRNA受体[4]。
Tlr13在鱼类中也存在。研究发现,Tlr13在鱼类中发挥着重要作用。例如,在橙色斑点 grouper(Epinephelus coioides)中,Tlr13在所有测试组织中广泛存在,在脑和免疫相关组织中相对高表达。在19-mer金黄色葡萄球菌23S核糖体RNA衍生的寡核苷酸(ORN Sa19)的挑战下,Tlr13在 grouper 脾脏细胞中的表达显著上调。此外,在人类胚胎肾293T细胞中过表达Eco. Tlr13后,ORN Sa19以剂量依赖性方式激活干扰素-β的启动子活性。这些结果表明,Eco. tlr13可能涉及细菌RNA的识别[5]。
Tlr13在识别细菌23S核糖体RNA方面具有序列特异性。研究发现,TLR13检测革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌的23S核糖体RNA。23S rRNA核糖酶活性位点附近包含13个核苷酸的序列,对于激活TLR13依赖性IL-1β的产生是必需和充分的。该序列内的单点突变破坏了23S rRNA刺激TLR13通路的活性。敲除小鼠中的TLR13消除了23S rRNA序列对IL-1β和其他细胞因子的诱导。因此,TLR13以序列特异性的方式检测细菌RNA[6]。
Tlr13介导的自身炎症在体内受到RNase T2的限制。研究发现,RNA传感TLRs在内溶酶体中战略性地定位以检测非自身RNA。RNase T2在将长结构RNA加工成短寡核苷酸方面起着关键作用,这些短寡核苷酸与TLR7或TLR8相互作用。除了其正调节作用外,RNase T2还通过未知机制限制RNA识别,因为RNase T2缺陷的患者患有神经炎症。与这一发现一致,缺乏RNase T2的小鼠表现出干扰素依赖性神经炎症、造血受损和脾肿大。然而,RNase T2缺陷如何在体内释放炎症的机制仍然未知。研究发现,Rnaset2-/-小鼠的炎症表型在没有TLR13的情况下完全逆转,这表明RNA配体异常积累。有趣的是,这种TLR13驱动的炎症表型在无菌小鼠中完全存在,这表明RNase T2在限制TLR13由尚未确定的内源性配体引起的错误激活方面发挥作用。这些结果将TLR13确立为潜在的自身传感器,受到RNase T2的抑制[7]。
综上所述,Tlr13是一种重要的免疫受体,在维持肠道稳态、控制结肠炎相关结肠癌、组织保护和细菌RNA识别中发挥着重要作用。Tlr13的基因转录受到多种转录因子的调节。此外,Tlr13在鱼类中也存在,并参与细菌RNA的识别。Tlr13的研究有助于深入理解其生物学功能和在疾病发生中的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Rafique, Asma, Ali, Irshad, Kim, Seukchan, Hyun, Chang Lim, Koh, Young-Sang. 2024. Toll-like receptor 13-mediated signaling protects against the development of colon cancer. In International journal of cancer, 155, 1858-1873. doi:10.1002/ijc.35089. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38989970/
2. Shi, Zhongcheng, Cai, Zhenyu, Wen, Shu, Finnell, Richard H, Zhang, Dekai. 2009. Transcriptional regulation of the novel Toll-like receptor Tlr13. In The Journal of biological chemistry, 284, 20540-7. doi:10.1074/jbc.M109.022541. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19487701/
3. Sato, Ryota, Liu, Kaiwen, Shibata, Takuma, Taniguchi, Hideki, Miyake, Kensuke. 2025. RNase T2 deficiency promotes TLR13-dependent replenishment of tissue-protective Kupffer cells. In The Journal of experimental medicine, 222, . doi:10.1084/jem.20230647. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39853307/
4. Hidmark, Asa, von Saint Paul, Antonia, Dalpke, Alexander H. 2012. Cutting edge: TLR13 is a receptor for bacterial RNA. In Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950), 189, 2717-21. doi:10.4049/jimmunol.1200898. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22896636/
5. Liang, Yaosi, Ding, Xu, Yu, Xue, Lin, Haoran, Lu, Danqi. 2018. Identification and functional characterization of Toll-like receptor 13 from orange-spotted grouper (Epinephelus coioides). In Fish & shellfish immunology, 74, 309-317. doi:10.1016/j.fsi.2017.12.054. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29305335/
6. Li, Xiao-Dong, Chen, Zhijian James. 2012. Sequence specific detection of bacterial 23S ribosomal RNA by TLR13. In eLife, 1, e00102. doi:10.7554/eLife.00102. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23110254/
7. Gomez-Diaz, Carlos, Greulich, Wilhelm, Wefers, Benedikt, Wurst, Wolfgang, Hornung, Veit. 2025. RNase T2 restricts TLR13-mediated autoinflammation in vivo. In The Journal of experimental medicine, 222, . doi:10.1084/jem.20241424. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39853306/
8. Shi, Zhongcheng, Cai, Zhenyu, Sanchez, Amir, Fu, Songbin, Zhang, Dekai. 2010. A novel Toll-like receptor that recognizes vesicular stomatitis virus. In The Journal of biological chemistry, 286, 4517-24. doi:10.1074/jbc.M110.159590. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21131352/