STT3A,也称为STT3A-containing oligosaccharyltransferase complex (OST-A)的催化亚基,是一种重要的N-连接糖基转移酶。STT3A编码的蛋白质负责将寡糖从脂质连接的寡糖转移到新生糖蛋白的N-连接糖基化位点,这一过程是蛋白质翻译后修饰的重要组成部分,对蛋白质的功能、稳定性和细胞内运输至关重要。STT3A在多种生物学过程中发挥作用,包括免疫信号传导、肿瘤免疫逃逸、先天性糖基化障碍(CDG)以及植物对盐和渗透胁迫的适应性反应。
在免疫信号传导方面,STT3A已被证明是Toll样受体4 (TLR4) N-糖基化和细胞表面定位所必需的。TLR4是LPS等炎症信号激活NF-κB的关键受体。研究发现,STT3A的催化亚基STT3A对于TLR4的N-糖基化和细胞表面定位至关重要,而NGI-1等化合物可以抑制OST复合物,从而影响TLR4的功能和炎症信号传导[1]。此外,STT3A还参与调节PD-L1的N-糖基化、稳定性和细胞膜定位,从而影响肿瘤免疫逃逸。例如,TMUB1通过竞争性结合PD-L1,抑制其泛素化和促进其N-糖基化,从而增强PD-L1的稳定性和细胞膜定位,促进肿瘤免疫逃逸[2]。FAT4通过抑制PD-L1的N-糖基化和细胞膜定位,从而促进抗肿瘤免疫[3]。
STT3A突变与先天性糖基化障碍(CDG)相关,导致蛋白质糖基化异常,影响细胞功能。例如,STT3A的活性位点突变导致STT3A-CDG,这是一种常染色体显性遗传病,表现为骨骼异常、短身材、巨颅症和智力障碍等症状[4]。此外,STT3A和STT3B的突变分别导致两种不同的CDG,这些突变影响蛋白质的N-糖基化,导致神经系统和肌肉功能障碍[5]。
STT3A和STT3B是OST复合物的主要催化亚基,分别介导共翻译和翻译后N-连接糖基化。STT3A和STT3B对蛋白质表达和N-连接糖基化具有不同的特异性。STT3A基因敲除对蛋白质表达的影响大于STT3B基因敲除,尤其是对糖蛋白的影响。STT3A基因敲除导致甘露糖基化N-糖减少和岩藻糖基化N-糖增加,这是由于糖相关酶的表达差异引起的。STT3A基因敲除还导致蛋白质过度糖基化,例如ENPL的过度糖基化是由于STT3A缺失引起的内质网应激引起的[6]。此外,STT3A和STT3B的OST复合物将N-糖基化与脂质连接的寡糖水解分开。STT3B-OST复合物水解脂质连接的寡糖,而STT3A-OST复合物则不进行水解。STT3A-OST复合物可能具有调节作用,因为它抑制STT3B-OST复合物依赖的fOSs。TREX1和STT3A抑制STT3B-OST复合物依赖的fOSs。在没有严格的翻译后N-糖基化动力学限制的情况下,STT3B-OST复合物可以用于LLO水解[7]。
在植物中,STT3a是植物适应盐和渗透胁迫的关键调节因子。STT3a基因突变导致植物对盐和渗透胁迫敏感,表现为根尖细胞有丝分裂减少。NaCl诱导STT3a突变体幼苗内质网应激和细胞周期阻滞。这些结果表明,植物对盐胁迫的适应性涉及内质网应激信号调节细胞周期进程。STT3a和STT3b在植物生长和发育过程中具有重叠和必需的功能,但STT3a异构体对从内质网应激中恢复和细胞周期进程的特定蛋白质糖基化至关重要[8]。
STT3A在甲状腺肿瘤中也发挥重要作用。STT3A在甲状腺肿瘤中的表达水平与甲状腺癌的发生和进展相关。研究发现,甲状腺癌组织中的STT3A表达水平高于良性甲状腺肿瘤,表明STT3A可能作为甲状腺癌的诊断和预后标志物[9]。
STT3A在病毒感染中也发挥重要作用。STT3A是SARS-CoV-2及其变种的N-连接糖基化的关键糖基转移酶。STT3A介导的N-连接糖基化可以增强病毒刺突蛋白与ACE2的相互作用,从而促进病毒感染。研究发现,抑制STT3A可以降低SARS-CoV-2及其变种的感染能力。此外,通过抗体-药物偶联物(ADC)靶向STT3A介导的糖基化可以增强抗体、疫苗或康复血清的中和能力,降低SARS-CoV-2变种的感染能力[10]。
综上所述,STT3A是一种重要的N-连接糖基转移酶,参与调节蛋白质的N-连接糖基化,影响蛋白质的功能、稳定性和细胞内运输。STT3A在多种生物学过程中发挥作用,包括免疫信号传导、肿瘤免疫逃逸、先天性糖基化障碍、植物对盐和渗透胁迫的适应性反应以及病毒感染。STT3A的研究有助于深入理解蛋白质糖基化的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Lampson, Benjamin L, Ramίrez, Ana S, Baro, Marta, Locher, Kaspar P, Kaelin, William G. . Positive selection CRISPR screens reveal a druggable pocket in an oligosaccharyltransferase required for inflammatory signaling to NF-κB. In Cell, 187, 2209-2223.e16. doi:10.1016/j.cell.2024.03.022. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38670073/
2. Shi, Chengyu, Wang, Ying, Wu, Minjie, Zhou, Tianhua, Lin, Aifu. 2022. Promoting anti-tumor immunity by targeting TMUB1 to modulate PD-L1 polyubiquitination and glycosylation. In Nature communications, 13, 6951. doi:10.1038/s41467-022-34346-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36376293/
3. Wang, Dongying, Wu, Shuying, He, Jiaxing, Wang, Yanhong, Xu, Tianmin. 2023. FAT4 overexpression promotes antitumor immunity by regulating the β-catenin/STT3/PD-L1 axis in cervical cancer. In Journal of experimental & clinical cancer research : CR, 42, 222. doi:10.1186/s13046-023-02758-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37658376/
4. Wilson, Matthew P, Garanto, Alejandro, Pinto E Vairo, Filippo, Morava, Eva, Lefeber, Dirk J. 2021. Active site variants in STT3A cause a dominant type I congenital disorder of glycosylation with neuromusculoskeletal findings. In American journal of human genetics, 108, 2130-2144. doi:10.1016/j.ajhg.2021.09.012. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34653363/
5. Shrimal, Shiteshu, Ng, Bobby G, Losfeld, Marie-Estelle, Gilmore, Reid, Freeze, Hudson H. 2013. Mutations in STT3A and STT3B cause two congenital disorders of glycosylation. In Human molecular genetics, 22, 4638-45. doi:10.1093/hmg/ddt312. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23842455/
6. Wen, Piaopiao, Chen, Jingru, Zuo, Chenyang, Fujita, Morihisa, Yang, Ganglong. 2022. Proteome and Glycoproteome Analyses Reveal the Protein N-Linked Glycosylation Specificity of STT3A and STT3B. In Cells, 11, . doi:10.3390/cells11182775. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36139350/
7. Lu, Hua, Fermaintt, Charles S, Cherepanova, Natalia A, Yan, Nan, Lehrman, Mark A. 2018. Mammalian STT3A/B oligosaccharyltransferases segregate N-glycosylation at the translocon from lipid-linked oligosaccharide hydrolysis. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 115, 9557-9562. doi:10.1073/pnas.1806034115. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30181269/
8. Koiwa, Hisashi, Li, Fang, McCully, Michael G, Bressan, Ray A, Hasegawa, Paul M. 2003. The STT3a subunit isoform of the Arabidopsis oligosaccharyltransferase controls adaptive responses to salt/osmotic stress. In The Plant cell, 15, 2273-84. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12972670/
9. Patel, Mihir R, Stadler, Michael E, Deal, Allison M, Shores, Carol G, Zanation, Adam M. . STT3A, C1orf24, TFF3: putative markers for characterization of follicular thyroid neoplasms from fine-needle aspirates. In The Laryngoscope, 121, 983-9. doi:10.1002/lary.21736. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21520112/
10. Huang, Hsiang-Chi, Lai, Yun-Ju, Liao, Chun-Che, Tao, Mi-Hua, Li, Chia-Wei. 2021. Targeting conserved N-glycosylation blocks SARS-CoV-2 variant infection in vitro. In EBioMedicine, 74, 103712. doi:10.1016/j.ebiom.2021.103712. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34839261/