Rack1,也称为受体激活的C激酶1,是一种多功能支架蛋白,在细胞信号转导和动物发育中发挥着重要作用。Rack1通过与其他蛋白质的相互作用,调节各种细胞功能和信号通路。研究发现,Rack1在多种疾病中发挥重要作用,包括病毒复制、神经发育、癌症发生和发展等。
研究发现,Rack1是多种黄病毒复制的关键宿主因子。通过CRISPR/Cas9基因组编辑技术,研究人员发现Rack1对于寨卡病毒(ZIKV)的复制至关重要。进一步的研究表明,Rack1对于蚊媒和蜱媒黄病毒的复制也具有重要作用,包括西尼罗病毒(WNV)、登革热病毒(DENV)、波瓦桑病毒(POWV)和兰加特病毒(LGTV)等。此外,Rack1还与冠状病毒SARS-CoV-2的复制相关,但与黄热病毒(YFV)、埃博拉病毒(EBOV)、水泡性口炎病毒(VSV)或单纯疱疹病毒(HSV)的复制无关。Rack1的缺失会导致病毒复制工厂的形态改变,病毒复制体(VPs)的形成减少。Rack1还可以与多种黄病毒的NS1蛋白相互作用,NS1蛋白是病毒复制复合体形成的关键蛋白[1]。
Rack1在神经发育中也发挥重要作用。FMRP(脆性X智力低下蛋白1)是脆性X综合征(FXS)的关键基因,FXS是一种自闭症谱系障碍。研究发现,FMRP可以与CNOT1相互作用,维持Rack1的水平。Rack1的基因减少会导致线粒体功能障碍和神经元兴奋性增加,这与FXS神经元的表型相似。此外,增强线粒体功能可以挽救FMRP缺乏的皮质神经元在产前发育中的缺陷,这表明靶向线粒体功能障碍可能是FXS的一种潜在治疗方法[2]。
Rack1还与癌症的发生和发展相关。研究发现,Rack1在口腔鳞状细胞癌(OSCC)中表达上调,并促进OSCC细胞的增殖、迁移和侵袭。此外,Rack1与乳腺癌基因1(BRCA1)相互作用,调节中心体复制。Rack1定位于中心体和纺锤极,参与BRCA1在中心体的正确定位。Rack1与BRCA1的相互作用对于中心体数量的调节至关重要。此外,Rack1还通过调节PLK1活性,参与中心粒复制。Rack1与PLK1和Aurora A直接结合,促进PLK1的磷酸化和Aurora A/PLK1信号轴的激活。Rack1的过表达会导致中心体扩增,特别是在乳腺上皮细胞中,导致PLK1过度激活,随后中心粒分离和中心粒重新复制。此外,Rack1还与缺氧诱导因子α、Von Hippel-Lindau蛋白、热休克蛋白90、β-连环蛋白和糖原合酶激酶-3β等蛋白质相互作用,在中心体调节中发挥作用[3]。
Rack1的稳定与癌症的发生和发展也密切相关。研究发现,OTUB1(泛素醛结合蛋白1)在肝细胞癌(HCC)中表达上调,并促进HCC的增殖和转移。OTUB1与Rack1直接结合,并通过其非经典的泛素化抑制降低Rack1的K48连接泛素化,从而稳定Rack1蛋白水平。因此,OTUB1显著增加多种原癌基因的表达,并通过激活PI3K/AKT和FAK/ERK信号通路在HCC中发挥作用。此外,转录因子MAZ通过识别OTUB1启动子区域的潜在反应元件上调OTUB1的表达[4]。
Rack1在胰腺腺鳞状癌(PASC)中也发挥重要作用。研究发现,Rack1在PASC细胞中表达上调,并与EGFR信号通路的激活相关。此外,Rack1还与TRIM26相互作用,TRIM26是一种三结构域含家族基因,在多种癌症中发挥抑癌作用。TRIM26可以与Rack1相互作用,并促进Rack1的降解,从而抑制MEK/ERK信号通路。TRIM26的过表达抑制了骨肉瘤细胞的增殖和侵袭,而Rack1的过表达可以逆转TRIM26过表达对骨肉瘤细胞增殖和侵袭的抑制作用[5]。
Rack1在肠道的发育和细胞死亡机制中也发挥重要作用。研究发现,在肛门直肠畸形(ARM)大鼠中,Rack1的表达下调,导致P38磷酸化和MAPK信号通路的激活。抑制该通路下调Nqo1和Gpx4的表达,导致细胞内铁离子、活性氧(ROS)和脂质过氧化物的水平升高。Gpx4在ARM后肠中的下调与Rack1共定位和一致的线粒体形态一致,表明铁死亡的发生。Rack1作为枢纽基因,通过P38-MAPK/Nqo1/Gpx4轴调节铁离子、脂质过氧化物和ROS,导致肠道上皮细胞中的铁死亡,可能影响ARM发生时的后肠发育[6]。
综上所述,Rack1是一种多功能支架蛋白,在细胞信号转导和动物发育中发挥着重要作用。Rack1在多种疾病中发挥重要作用,包括病毒复制、神经发育、癌症发生和发展等。Rack1的稳定与癌症的发生和发展密切相关,OTUB1可以稳定Rack1蛋白水平,促进HCC的发生和发展。TRIM26可以与Rack1相互作用,并促进Rack1的降解,从而抑制骨肉瘤的发生和发展。Rack1在肠道的发育和细胞死亡机制中也发挥重要作用,Rack1的表达下调可能导致铁死亡的发生,影响ARM发生时的后肠发育。因此,Rack1的研究有助于深入理解细胞信号转导和动物发育的机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Shue, Byron, Chiramel, Abhilash I, Cerikan, Berati, Best, Sonja M, Beard, Michael R. 2021. Genome-Wide CRISPR Screen Identifies RACK1 as a Critical Host Factor for Flavivirus Replication. In Journal of virology, 95, e0059621. doi:10.1128/JVI.00596-21. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34586867/
2. Shen, Minjie, Sirois, Carissa L, Guo, Yu, Werling, Donna M, Zhao, Xinyu. 2023. Species-specific FMRP regulation of RACK1 is critical for prenatal cortical development. In Neuron, 111, 3988-4005.e11. doi:10.1016/j.neuron.2023.09.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37820724/
3. Yoshino, Yuki, Chiba, Natsuko. 2021. Roles of RACK1 in centrosome regulation and carcinogenesis. In Cellular signalling, 90, 110207. doi:10.1016/j.cellsig.2021.110207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34843916/
4. Peng, Liqun, Wu, Tiangen, Liu, Yingyi, He, Wenzhi, Yuan, Yufeng. 2024. OTUB1 accelerates hepatocellular carcinoma by stabilizing RACK1 via its non-canonical ubiquitination. In Cellular oncology (Dordrecht, Netherlands), 47, 987-1004. doi:10.1007/s13402-023-00913-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38315284/
5. Xia, Kezhou, Zheng, Di, Wei, Zhun, Liu, Wenda, Guo, Weichun. 2023. TRIM26 inhibited osteosarcoma progression through destabilizing RACK1 and thus inactivation of MEK/ERK signaling. In Cell death & disease, 14, 529. doi:10.1038/s41419-023-06048-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37591850/
6. Wang, Chen-Yi, Li, Mu-Yu, Li, Si-Ying, Tang, Xiao-Bing, Bai, Yu-Zuo. 2024. Rack1-mediated ferroptosis affects hindgut development in rats with anorectal malformations: Spatial transcriptome insights. In Cell proliferation, 57, e13618. doi:10.1111/cpr.13618. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38523594/