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C57BL/6JCya-2300009A05Rikem1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称:
2300009A05Rik-flox
产品编号:
S-CKO-14535
品系背景:
C57BL/6JCya
小鼠资源库
* 使用本品系发表的文献需注明:2300009A05Rik-flox mice (Strain S-CKO-14535) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-2300009A05Rikem1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-69478-2300009A05Rik-B6J-VA
产品编号
S-CKO-14535
基因名
2300009A05Rik
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
--
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
2300009A05Rik位于小鼠的9号染色体,采用基因编辑技术,通过高通量电转受精卵方式,获得2300009A05Rik基因条件性敲除小鼠,性成熟后取精子冻存。
2300009A05Rik-flox小鼠是由赛业生物(Cyagen)采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。2300009A05Rik基因位于小鼠9号染色体上,由2个外显子组成,其中ATG起始密码子在1号外显子,TGA终止密码子在2号外显子。条件性敲除区域(cKO区域)位于1号外显子,包含346个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠2300009A05Rik基因功能的丧失。此外,该基因的第一个内含子长度为4200个碱基对。2300009A05Rik-flox小鼠的构建过程包括将核糖核蛋白(RNP)和靶向载体共同注入受精卵。随后,对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。该模型可用于研究2300009A05Rik基因在小鼠体内的功能。
基因研究概述
基因2300009A05Rik,也称为Rik编码基因,是哺乳动物基因组中的一个非编码RNA基因。非编码RNA基因不编码蛋白质,但它们在基因表达调控中发挥重要作用,参与调控基因的转录和翻译过程。基因2300009A05Rik的表达调控机制尚不清楚,但其功能可能与细胞分化和发育相关。基因2300009A05Rik的序列变化和功能分化可能在动物基因组进化的过程中发生。基因复制和基因丢失是动物基因组进化中的常见事件,它们对基因数量的差异和物种间的进化多样性产生重要影响。在基因复制后,两个基因副本通常会以相似的速度积累序列变化。然而,在某些情况下,序列变化的积累可能非常不均衡,其中一个副本会与另一个副本发生显著分化。这种“非对称进化”在串联基因复制后比在基因组复制后更为常见,并可能产生具有全新功能的基因。例如,在蛾、软体动物和哺乳动物的复制同源框基因中,非对称进化产生了新的同源框基因,这些基因被招募到新的发育功能中[1]。
乳腺癌是一种异质性疾病,其发病机制与多种基因相关。大约70%的乳腺癌病例被认为是散发性的,而大约30%的患者则与家族性乳腺癌相关。家族性乳腺癌通常发生在乳腺癌发病率高的家族中,并与一些高、中、低渗透性的易感基因相关。家族连锁研究已经确定了高渗透性基因BRCA1、BRCA2、PTEN和TP53,这些基因负责遗传综合征。此外,基于家族和人群的方法表明,参与DNA修复的基因,如CHEK2、ATM、BRIP1(FANCJ)、PALB2(FANCN)和RAD51C(FANCO),与中度的乳腺癌风险相关。乳腺癌的全基因组关联研究(GWAS)发现了一些与乳腺癌风险略微增加或减少相关的常见低渗透性等位基因。目前,只有高渗透性基因在临床实践中得到广泛应用。随着下一代测序技术的发展,预计所有家族性乳腺癌基因都将被纳入遗传测试。然而,在将多基因面板测试完全纳入临床工作流程之前,需要进一步研究对中度和低风险变异的临床管理[2]。
基因调控网络是细胞内部基因和蛋白质相互连接形成的复杂网络,类似于电路图。基因和蛋白质之间的相互作用决定了细胞内各种生物现象的发生。为了系统地理解基因调控网络,需要开发一个数学框架来描述网络的结构。从工程学的角度来看,构建和分析网络的基本模块是建立这种框架的自然途径。近年来,测序和基因工程技术的进步使得设计和实施合成基因网络成为可能,这些网络可以进行数学建模和定量分析。这些进展标志着基因电路学科的出现,该学科为预测和评估细胞过程的动力学提供了一个框架。合成基因网络还将导致新的细胞控制逻辑形式,这可能对功能基因组学、纳米技术和基因和细胞治疗等领域产生重要影响[3]。
基因敲除是研究基因功能的重要方法,通过完全消除基因的功能来观察细胞或生物体的表型变化。然而,基因敲除可能导致的表型最严重的后果是致死性。具有致死性敲除表型的基因被称为必需基因。在酵母中的全基因组敲除分析表明,基因组中大约四分之一的基因可能是必需的。基因必需性是受背景效应和基因-基因相互作用影响的表型-基因型关系。特别是,对于某些必需基因,由敲除引起的致死性可以通过非基因抑制因子得到挽救。这种“必需性绕过”(BOE)基因-基因相互作用是一种未被充分研究的遗传抑制类型。最近的一项系统性分析显示,令人惊讶的是,裂殖酵母Schizosaccharomyces pombe中近30%的必需基因的必需性可以通过BOE相互作用得到绕过。本文回顾了揭示和理解必需性绕过的历史和最新进展[4]。
植物CARE是一个植物顺式作用调控元件数据库,提供增强子和抑制子信息,并以位置矩阵、共识序列和特定启动子序列上的单个位点形式表示。该数据库提供了与EMBL、TRANSFAC和MEDLINE数据库的链接。转录位点的数据主要来自文献,并补充了越来越多的计算机预测数据。除了对特定转录因子位点的描述外,还提供了实验证据的置信度水平、功能信息以及位点在启动子上的位置。新功能已经实施,用于在查询序列中搜索植物顺式作用调控元件。此外,现在还提供了链接,可以使用新的聚类和基序搜索方法来研究共表达基因簇。新的调控元件可以自动发送,并在审查后添加到数据库中。植物CARE关系数据库可通过互联网获得[5]。
基因片段是基因序列的一部分,它们可能参与基因表达调控或具有其他生物学功能。基因片段的研究可以帮助我们理解基因表达调控的复杂性和多样性[6]。
植物抗病性基因介导的植物防御反应是植物抵抗病原体侵袭的重要机制。抗病性基因的激活可以引发植物的免疫反应,抑制病原体的生长和繁殖。抗病性基因的表达受到复杂的调控网络的控制,这些网络包括转录因子、非编码RNA和信号传导途径。植物抗病性基因的研究对于开发抗病作物和防治植物病害具有重要意义[7]。
MHC(主要组织相容性复合体)基因的表达受到多种因素的调控,包括转录因子、信号传导途径和表观遗传修饰。MHC基因在免疫系统中发挥重要作用,它们编码的分子参与抗原呈递和免疫识别。对MHC基因表达调控的研究有助于深入理解免疫系统的功能和疾病发生机制[8]。
基因的定义是指编码生物体遗传信息的单位。基因是DNA序列的一部分,它们通过转录和翻译过程产生蛋白质或RNA分子,从而影响生物体的生长、发育和生理功能。随着基因组和功能基因组学的发展,基因的定义和功能研究取得了重大进展[9]。
综上所述,基因2300009A05Rik是一个非编码RNA基因,可能在基因表达调控和发育过程中发挥重要作用。基因复制和基因丢失是动物基因组进化中的常见事件,它们对基因数量的差异和物种间的进化多样性产生重要影响。乳腺癌是一种异质性疾病,其发病机制与多种基因相关,包括高、中、低渗透性的易感基因。基因调控网络是细胞内部基因和蛋白质相互连接形成的复杂网络,基因和蛋白质之间的相互作用决定了细胞内各种生物现象的发生。基因敲除是研究基因功能的重要方法,但基因敲除可能导致的致死性可以通过非基因抑制因子得到挽救。植物CARE是一个植物顺式作用调控元件数据库,提供增强子和抑制子信息,以及搜索植物顺式作用调控元件的工具。基因片段是基因序列的一部分,它们可能参与基因表达调控或具有其他生物学功能。植物抗病性基因介导的植物防御反应是植物抵抗病原体侵袭的重要机制。MHC基因的表达受到多种因素的调控,包括转录因子、信号传导途径和表观遗传修饰。基因的定义是指编码生物体遗传信息的单位,基因是DNA序列的一部分,它们通过转录和翻译过程产生蛋白质或RNA分子,从而影响生物体的生长、发育和生理功能。对基因2300009A05Rik的研究有助于深入理解非编码RNA基因的功能和调控机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
3. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
4. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/
8. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/
9. Epp, C D. . Definition of a gene. In Nature, 389, 537. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9335484/