智鼠故事 
C57BL/6JCya-Rln3em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Rln3-flox
产品编号：
S-CKO-05614
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Rln3-flox mice (Strain S-CKO-05614) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Rln3em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-212108-Rln3-B6J-VA
产品编号
S-CKO-05614
基因名
Rln3
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
M3；insl7
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:2158015 Mice homozygous for a knock-out allele exhibit abnormal body weight regulation, actvity levels, social investigation and behavioral despair.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Rln3位于小鼠的8号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Rln3基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Rln3-flox小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Rln3基因位于小鼠8号染色体上，由两个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TAG终止密码子在2号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于1号外显子，包含187个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Rln3基因功能的丧失。Rln3-flox小鼠模型的构建过程包括使用基因编辑技术对1号外显子进行修饰，并利用PCR和测序分析对出生的小鼠进行基因型鉴定。此外，赛业生物（Cyagen）的研究表明，携带敲除等位基因的小鼠表现出异常的体重调节、活动水平、社交调查和行为绝望。Rln3基因的1号外显子涵盖了44.21%的编码区域。3'-loxP位点插入的1号内含子大小为1438 bp。有效的cKO区域大小约为0.5 kb。这一策略是基于现有数据库中的遗传信息设计的。由于生物过程的复杂性，现有的技术无法预测loxP插入对基因转录、RNA剪接和蛋白质翻译的影响。
基因研究概述
基因Rln3，也称为Relaxin3，是胰岛素超家族的一员，是一种神经肽激素。它主要由大脑中的神经元表达，参与调节多种生理过程，包括生殖、能量代谢、免疫反应、情绪、社会识别等[3,4,6]。Rln3通过与特定的受体—— relaxin家族肽3受体（RXFP3）结合，发挥其生物学功能。RXFP3是一种G蛋白偶联受体，广泛分布于大脑和身体其他部位。
Rln3在哺乳动物中的表达模式较为保守，主要在大脑中表达，尤其是在脑干和下丘脑等区域。在鱼类等脊椎动物中，Rln3的表达模式也具有保守性，主要在脑中表达，但同时也存在于其他部位，如生殖器官[1,5]。Rln3的表达受到多种因素的调节，包括生殖激素、压力激素等。
Rln3的生物学功能主要与其在大脑中的表达有关。研究表明，Rln3可以调节情绪、认知、社交行为等[3,4,6]。Rln3的缺失会导致动物出现焦虑、抑郁等行为异常。此外，Rln3还与生殖功能有关。例如，在鱼类中，Rln3a基因的缺失会导致雄性鱼类精子数量减少、精子活力下降，从而影响其生育能力[1]。在鸟类中，Rln3的表达与卵泡发育和产蛋性状有关[2]。在哺乳动物中，Rln3的表达与生殖激素水平有关，可能参与调节生殖功能。
Rln3的生物学功能还与其受体RXFP3的表达有关。RXFP3广泛分布于大脑和身体其他部位，其表达受到多种因素的调节，包括生殖激素、压力激素等。RXFP3的表达与Rln3的表达模式相似，提示Rln3/RXFP3系统可能参与调节多种生理过程。
近年来，Rln3的研究取得了许多进展。例如，研究表明，Rln3可以调节胶原蛋白的正常周转，从而影响心脏和肺的功能[3]。此外，Rln3还与神经退行性疾病、肿瘤等疾病的发生发展有关。因此，Rln3的研究具有重要的理论和临床意义。
综上所述，Rln3是一种重要的神经肽激素，参与调节多种生理过程，包括生殖、能量代谢、免疫反应、情绪、社会识别等。Rln3的研究有助于深入理解神经肽激素的生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Yang, Lanying, Li, Yanlong, Wu, You, Wang, Deshou, Zhou, Linyan. 2019. Rln3a is a prerequisite for spermatogenesis and fertility in male fish. In The Journal of steroid biochemistry and molecular biology, 197, 105517. doi:10.1016/j.jsbmb.2019.105517. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31678357/
2. Zhang, Chunfeng, Sun, Yi, Kang, Li, Jiang, Yunliang. 2024. Characterization of chicken Relaxin3 gene: mRNA expression and response to reproductive hormone treatment in ovarian granulosa cells, and single nucleotide polymorphisms associated with egg laying traits in hens. In Animal biotechnology, 35, 2370810. doi:10.1080/10495398.2024.2370810. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38940516/
3. Bathgate, Ross A D, Samuel, Chrishan S, Burazin, Tanya C D, Gundlach, Andrew L, Tregear, Geoffrey W. . Relaxin: new peptides, receptors and novel actions. In Trends in endocrinology and metabolism: TEM, 14, 207-13. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12826326/
4. Blasiak, Anna, Gugula, Anna, Gundlach, Andrew L, Aniello, Francesco, Donizetti, Aldo. 2022. Relaxin ligand/receptor systems in the developing teleost fish brain: Conserved features with mammals and a platform to address neuropeptide system functions. In Frontiers in molecular neuroscience, 15, 984524. doi:10.3389/fnmol.2022.984524. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36277494/
5. Hu, Guo-Bin, Kusakabe, Makoto, Takei, Yoshio. 2011. Localization of diversified relaxin gene transcripts in the brain of eels. In General and comparative endocrinology, 172, 430-9. doi:10.1016/j.ygcen.2011.04.013. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21530530/
6. Boukherroub, Kahina, Kosonsiriluk, Sunantha, Santativongchai, Pitchaya, Ehresmann, Lillian, Diehl, Kristen. 2025. Expression of relaxin-3 and its receptors in the hypothalamic-pituitary-ovary axis in layers and broiler breeders. In Poultry science, 104, 105048. doi:10.1016/j.psj.2025.105048. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40120249/
