智鼠故事 
C57BL/6JCya-Aqp12em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Aqp12-flox
产品编号：
S-CKO-05376
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Aqp12-flox mice (Strain S-CKO-05376) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Aqp12em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-208760-Aqp12-B6J-VA
产品编号
S-CKO-05376
基因名
Aqp12
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
mAQP12
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:2664636 Mice deficient for this marker have elevated total cholesterol levels and show an increased susceptibility to caerulein induced acute pancreatitis.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Aqp12位于小鼠的1号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Aqp12基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Aqp12-flox小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Aqp12基因位于小鼠1号染色体上，由3个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TAG终止密码子在3号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于1号外显子，覆盖了编码区域的69.77%。删除该区域会导致小鼠Aqp12基因功能的丧失。Aqp12-flox小鼠模型的构建过程包括使用BAC克隆RP23-41N14作为模板，通过PCR生成同源臂和cKO区域。随后，将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。出生的小鼠将进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。此外，对于携带敲除等位基因的小鼠，它们具有升高的总胆固醇水平，并且对caerulein诱导的急性胰腺炎表现出更高的易感性。
基因研究概述
Aqp12，也称为水通道蛋白12，是哺乳动物水通道蛋白家族中最近被确认的成员之一。Aqp12主要在胰腺腺泡细胞中特异性表达，其功能与胰腺液体的分泌调控有关。研究表明，Aqp12可能参与胰腺腺泡细胞中消化酶的成熟和分泌过程。在生理条件下，Aqp12基因敲除小鼠与野生型小鼠在生长、血液生化、胰腺液体含量和胰腺组织学等方面没有明显差异。然而，在诱导急性胰腺炎的实验中，Aqp12基因敲除小鼠表现出更严重的组织病理损伤，这表明Aqp12可能在胰腺液体的分泌调控中发挥重要作用[2]。
除了在胰腺中的作用外，Aqp12还可能参与其他生物学过程。例如，研究发现在斑马鱼中，聚苯乙烯纳米塑料（PS-NPs）与三氯生（TCS）的共同暴露会影响Aqp12的表达，从而影响TCS引起的生殖毒性。在雌性斑马鱼中，PS-NPs的暴露减少了卵巢、肝脏和大脑中的TCS水平，并缓解了TCS引起的卵巢发育抑制。而在雄性斑马鱼中，PS-NPs的暴露增加了睾丸和肝脏中的TCS水平，并加剧了TCS引起的精子发生抑制。这些结果表明，Aqp12的表达受到PS-NPs和TCS的共同暴露的影响，并且这种影响具有性别特异性[1]。
除了在胰腺和生殖系统中的作用外，Aqp12还可能参与其他生物学过程。例如，研究表明，Aqp12在小鼠的心脏中也存在表达，尽管其具体功能尚未完全明确，但Aqp12可能与心脏的水分和能量平衡有关，也可能参与心脏衰竭和砷中毒等疾病的发生[3]。此外，Aqp12还可能参与肺部的健康和疾病过程，例如慢性阻塞性肺病（COPD）和肺癌等[4]。研究表明，Aqp12在哺乳动物的肾脏中也存在表达，并可能参与体液平衡的调节[5]。
综上所述，Aqp12是一种在哺乳动物中广泛表达的水通道蛋白，其功能与胰腺液体的分泌调控、生殖系统的健康和疾病、心脏功能以及肺部的健康和疾病过程等有关。Aqp12的研究有助于深入理解水通道蛋白的生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Li, Zhiming, Xian, Hongyi, Ye, Rongyi, Yang, Zhu, Huang, Zhenlie. 2024. Gender-specific effects of polystyrene nanoplastic exposure on triclosan-induced reproductive toxicity in zebrafish (Danio rerio). In The Science of the total environment, 932, 172876. doi:10.1016/j.scitotenv.2024.172876. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38692326/
2. Ohta, Eriko, Itoh, Tomohiro, Nemoto, Tomomi, Sasaki, Sei, Rai, Tatemitsu. 2009. Pancreas-specific aquaporin 12 null mice showed increased susceptibility to caerulein-induced acute pancreatitis. In American journal of physiology. Cell physiology, 297, C1368-78. doi:10.1152/ajpcell.00117.2009. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19726746/
3. Verkerk, Arie O, Lodder, Elisabeth M, Wilders, Ronald. 2019. Aquaporin Channels in the Heart-Physiology and Pathophysiology. In International journal of molecular sciences, 20, . doi:10.3390/ijms20082039. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31027200/
4. Yadav, Ekta, Yadav, Niket, Hus, Ariel, Yadav, Jagjit S. 2020. Aquaporins in lung health and disease: Emerging roles, regulation, and clinical implications. In Respiratory medicine, 174, 106193. doi:10.1016/j.rmed.2020.106193. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33096317/
5. Nishimura, Hiroko, Yang, Yimu. 2013. Aquaporins in avian kidneys: function and perspectives. In American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology, 305, R1201-14. doi:10.1152/ajpregu.00177.2013. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24068044/
