智鼠故事 
C57BL/6JCya-Srfem1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Srf-flox
产品编号：
S-CKO-05286
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Srf-flox mice (Strain S-CKO-05286) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Srfem1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-20807-Srf-B6J-VA
产品编号
S-CKO-05286
基因名
Srf
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
--
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:106658 Homozygous null mice exhibit embryonic lethality, abnormal gastrulation, no mesoderm or primitive streak formation and reduced embryo size.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Srf位于小鼠的17号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Srf基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Srf-flox小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Srf基因位于小鼠17号染色体上，由7个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TGA终止密码子在7号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于2号外显子，包含267个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Srf基因功能的丧失。Srf-flox小鼠模型的构建过程包括将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。随后，对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。需要注意的是，同源重组杂合子小鼠的子代中会出现纯合子小鼠，这些纯合子小鼠具有胚胎致死性，出现异常的胚层形成、无中胚层或原条形成，以及胚胎体积减小等现象。此外，由于内含子1中插入5'-loxP位点的长度为1501bp，内含子2中插入3'-loxP位点的长度为1767bp，有效cKO区域的长度约为1.0kb。该策略是基于现有数据库中的遗传信息设计的。然而，由于生物过程的复杂性，现有的技术无法预测loxP插入对基因转录、RNA剪接和蛋白质翻译的影响。因此，Srf-flox小鼠模型可用于研究Srf基因在小鼠体内的功能，并进一步了解Srf基因在胚胎发育中的作用。
基因研究概述
基因Srf，也称为血清反应因子（Serum Response Factor），是一种普遍存在于细胞中的核蛋白，作为转录因子，在基因表达调控中发挥重要作用。SRF通过结合特定的DNA序列（称为CArG盒）来调控基因的表达。在多种组织和细胞类型中，SRF控制着许多基因的表达，包括那些与心脏发育、肌肉功能、神经信号传导和细胞周期调控相关的基因。
在心脏发育中，SRF起着关键作用。研究显示，心脏发育过程中SRF的靶向失活会导致小鼠胚胎死亡和心肌缺陷。在一项针对中国散发性圆锥动脉干畸形（CTDs）患者的研究中，研究者们筛选了527名患者的SRF基因突变。通过目标测序和Sanger测序验证，他们发现了两个新的SRF基因突变（Mut1: c.821A>G p.G274D和Mut2: c.880G>T p.G294C）。这些突变通过生物信息学软件分析被证明可能对野生型蛋白有影响。通过Western blot和实时PCR分析，发现突变体和野生型SRF的蛋白质表达和mRNA转录没有明显差异。双荧光素酶报告基因实验表明，这两个SRF突变体（G274D和G294C）在SRF启动子和心房钠尿肽（ANF）启动子上损害了SRF的转录活性，并且与GATA4的协同作用减少。这些结果表明，SRF-p.G274D和SRF-p.G294C可能具有潜在的致病作用[1]。
为了分析SRF的功能，研究者们开发了基因组区域注释工具（GREAT）。GREAT能够分析整个基因组中通过DNA结合事件的局部测量所确定的顺式调控区域的功能意义。GREAT考虑了远端结合位点，并通过二项式检验对输入的基因组区域进行假阳性控制。GREAT包含了来自20个本体论的注释，并作为网络应用程序提供。通过将GREAT应用于来自多种转录相关因子的染色质免疫沉淀与大规模并行测序（ChIP-seq）数据集，包括SRF、NRSF、GABP、Stat3和p300，研究者们发现GREAT能够恢复现有基因工具遗漏的许多因子功能，并产生可测试的假设[2]。
SRF还在心肌肥厚中发挥重要作用。SRF是调控心脏结构和功能基因所必需的转录因子。心脏肥厚时，与胎儿基因表达特征相关的基因被认为是SRF调控的基因。研究表明，心脏特异性过度表达SRF可以诱导这种肥厚相关基因的模式，并导致病理性适应的进展。此外，从严重心力衰竭患者的心脏组织中观察到SRF表达的变化，这与SRF依赖基因的表达变化相一致。因此，SRF可能在心脏肥厚适应的起始阶段刺激病理性基因表达[3]。
在神经系统中，SRF参与介导活动诱导的基因表达和突触可塑性，但不影响神经元存活。在成年小鼠中，特定神经元群体中SRF的缺失导致活动依赖性即时早期基因表达严重缺陷，而上游信号通路和cAMP反应元件结合蛋白（CREB）依赖的转录激活仍然完整。此外，SRF缺陷的CA1锥体神经元显示出长时程突触增强的减弱，这是神经元信息存储的模型。与成年小鼠中缺乏CREB家族成员所见的广泛神经变性相比，SRF缺陷的成年神经元显示出正常的形态和基础兴奋性突触传递。这些发现表明，神经元存活和可塑性背后的转录事件是可分离的，而SRF在成年大脑中活动依赖性突触强度的使用依赖性修饰中发挥着重要作用[4]。
在GnRH信号通路中，SRF也发挥着重要作用。GnRH诱导LβT2细胞中的c-Fos基因，需要SRF结合位点，但不需要Ets/ELK1位点。这与在其他细胞类型中，c-Fos由多种刺激诱导，通过磷酸化ELK1并需要ELK1结合位点的转录激活不同。SRF位点足以由GnRH诱导，而由12-十四烷酰佛波醇-13-乙酸酯（TPA）诱导则需要ELK1和SRF位点。尽管ELK1位点不是必需的，但在GnRH刺激下，ELK1与SRF相互作用并被募集到SRF位点。GnRH通过ERK1/2和p38 MAPK信号通路磷酸化ELK1，这与其c-Fos和FSHβ诱导的信号通路一致。GnRH还通过钙调蛋白依赖性激酶II（CamKII）途径导致SRF的磷酸化，这导致其结合位点的结合增加。CamKII激活足以磷酸化SRF并通过SRF位点诱导c-Fos基因。因此，GnRH使用生长因子信号通路和CamKII途径的组合来诱导c-Fos，从而调节GnRH在促性腺细胞中的FSHβ基因表达[5]。
在平滑肌细胞中，SRF通过结合CArG盒DNA序列来控制平滑肌基因的转录。在培养和活体内，SMC限制性SRF与小鼠SMC基因CArG盒染色质的结合与该染色质中特定的组蛋白翻译后修饰模式相关，包括H3和H4残基的甲基化和乙酰化。研究者们发现，促肌形成SRF共激活剂心肌素增加了SRF与甲基化组蛋白和CArG盒染色质的结合，在SMC基因表达激活期间。相反，肌形成抑制剂Kruppel样因子4募集H4去乙酰化酶活性到SMC基因，并在SMC基因表达抑制期间阻止SRF与甲基化组蛋白和CArG盒染色质的结合。最后，他们观察到在血管损伤导致SMC分化抑制期间，H4去乙酰化与SRF结合的丧失。这些发现提供了新的证据，表明SMC选择性表观遗传控制SRF与染色质的结合在调节SMC基因表达中发挥关键作用，以响应活体内的病理生理刺激[6]。
综上所述，基因Srf在多种生物学过程中发挥着重要作用，包括心脏发育、心肌肥厚、神经信号传导和细胞周期调控。SRF的突变和表达变化与多种疾病相关，包括心脏畸形和神经变性。SRF的功能和调控机制的研究对于理解基因表达调控和疾病发生机制具有重要意义。
参考文献：
1. Mengmeng, Xu, Yuejuan, Xu, Sun, Chen, Fen, Li, Kun, Sun. 2020. Novel mutations of the SRF gene in Chinese sporadic conotruncal heart defect patients. In BMC medical genetics, 21, 95. doi:10.1186/s12881-020-01032-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32380971/
2. McLean, Cory Y, Bristor, Dave, Hiller, Michael, Wenger, Aaron M, Bejerano, Gill. 2010. GREAT improves functional interpretation of cis-regulatory regions. In Nature biotechnology, 28, 495-501. doi:10.1038/nbt.1630. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20436461/
3. Nelson, Timothy J, Balza, Robert, Xiao, Qi, Misra, Ravi P. . SRF-dependent gene expression in isolated cardiomyocytes: regulation of genes involved in cardiac hypertrophy. In Journal of molecular and cellular cardiology, 39, 479-89. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15950986/
4. Stern, Sina, Knöll, Bernd. 2014. CNS axon regeneration inhibitors stimulate an immediate early gene response via MAP kinase-SRF signaling. In Molecular brain, 7, 86. doi:10.1186/s13041-014-0086-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25406759/
5. Gerber, A, Saini, C, Curie, T, Franken, P, Schibler, U. . The systemic control of circadian gene expression. In Diabetes, obesity & metabolism, 17 Suppl 1, 23-32. doi:10.1111/dom.12512. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26332965/
6. Cenik, Bercin K, Garg, Ankit, McAnally, John R, Olson, Eric N, Liu, Ning. 2015. Severe myopathy in mice lacking the MEF2/SRF-dependent gene leiomodin-3. In The Journal of clinical investigation, 125, 1569-78. doi:10.1172/JCI80115. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25774500/
