SMN1,全称为生存运动神经元基因1,是导致脊肌萎缩症(SMA)的关键基因。SMA是一种常见的常染色体隐性遗传病,主要表现为脊髓前角运动神经元的退行性变,导致四肢和躯干的进行性肌无力,最终引起肌肉萎缩。SMA的发病率很高,每50人中就有1人携带致病基因。该疾病的临床表现差异很大,根据发病年龄和临床病程,患者被分为I型至III型。所有三种类型的SMA均由SMN1基因的突变引起。在染色体5q13上存在两个几乎相同的拷贝,即SMN1和SMN2。只有SMN1基因的纯合缺失会导致SMA,而SMN2基因的纯合缺失在约5%的正常人中并未观察到任何临床症状。大约96%的SMA患者存在SMN1基因的突变,而4%的患者则与5q13区域无关。在5q13区域相关的SMA患者中,96.4%的患者表现为SMN1基因第7和第8外显子的纯合缺失或仅第7外显子的纯合缺失,而3.6%的患者表现为一种复杂的杂合状态,即一个染色体上存在一个轻微的突变,而另一个染色体上存在缺失或基因转换。迄今为止,已描述了23种不同的轻微突变,其中Y272C错义突变最为常见,占20%。由于这种均匀的突变谱,直接分子遗传学检测对于大多数SMA患者来说是一种简单且快速的检测方法。然而,直接检测杂合子并不简单,因为在约4%的个体中,每个染色体上有两个SMN1拷贝。SMN2基因拷贝数可以调节SMA表型,但不应用于预测SMA的严重程度[1]。
目前,针对SMA的治疗方法主要集中在提高SMN2表达和选择性剪接,以增加SMN蛋白的产生。近期的研究表明,并非所有的SMN2或SMN1基因都是相同的,SMN基因在基因组水平上具有高度的异质性。例如,通过基因转换事件产生的杂交SMN1-SMN2基因以及SMN基因的部分缺失都可能影响SMA的表型和治疗效果[2]。
此外,SMN1基因的缺失不仅影响运动神经元,还可能对肌肉产生负面影响。例如,在Smn1基因敲除的小鼠骨骼肌模型中,观察到功能障碍的线粒体积累。Smn1基因缺失导致肌肉中线粒体和溶酶体基因的下调,形态异常的线粒体积累,并产生过量的活性氧。这些发现表明,针对肌肉线粒体功能障碍的治疗可能有助于补充当前的基因治疗[3]。
为了更准确地分析SMN1基因,研究人员开发了一种名为Paraphase的informatics方法,利用长读PacBio HiFi测序数据来确定SMN1和SMN2基因的完整长度的单倍型、基因拷贝数以及相位的变异。这种方法对于检测SMA患者中的致病变异和潜在的隐性携带者具有重要意义[4]。
最近的研究还揭示了SMN基因的剪接调控机制。SMN1和SMN2基因编码相同的蛋白,但只有SMN1基因的纯合缺失会导致SMA。研究发现,SMN1和SMN2基因之间存在5个核苷酸的差异,其中第7外显子的C到T转变是导致SMA的关键因素。这种转变会减弱一个外显子增强子的活性,导致SMN2基因无法完全补偿SMN1基因的功能[5]。
此外,基因治疗在SMA的治疗中显示出巨大的潜力。例如,通过使用密码子优化的hSMN1转基因和hSMN1基因衍生的启动子,可以更有效地恢复SMN基因的表达,从而改善SMA小鼠模型的病情[6]。
除了SMA,SMN1基因还与散发性肌萎缩侧索硬化症(ALS)相关。研究发现,SMN1基因的重复与ALS的易感性相关,而SMN1和SMN2基因的缺失或拷贝数变异并未发现与ALS相关[7]。
综上所述,SMN1基因是导致SMA的关键基因,其突变会导致脊髓前角运动神经元的退行性变和肌肉萎缩。SMN2基因拷贝数可以调节SMA表型,但不应用于预测SMA的严重程度。基因治疗是SMA治疗的重要方向,而SMN1基因的突变也与ALS的易感性相关。深入研究SMN1基因的生物学功能和致病机制,将有助于开发更有效的治疗方法,改善SMA和ALS患者的预后。
参考文献:
1. Wirth, B. . An update of the mutation spectrum of the survival motor neuron gene (SMN1) in autosomal recessive spinal muscular atrophy (SMA). In Human mutation, 15, 228-37. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10679938/
2. Butchbach, Matthew E R. 2021. Genomic Variability in the Survival Motor Neuron Genes (SMN1 and SMN2): Implications for Spinal Muscular Atrophy Phenotype and Therapeutics Development. In International journal of molecular sciences, 22, . doi:10.3390/ijms22157896. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34360669/
3. Chemello, Francesco, Pozzobon, Michela, Tsansizi, Lorenza Iolanda, Scorrano, Luca, Bean, Camilla. 2023. Dysfunctional mitochondria accumulate in a skeletal muscle knockout model of Smn1, the causal gene of spinal muscular atrophy. In Cell death & disease, 14, 162. doi:10.1038/s41419-023-05573-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36849544/
4. Chen, Xiao, Harting, John, Farrow, Emily, Pastinen, Tomi, Eberle, Michael A. 2023. Comprehensive SMN1 and SMN2 profiling for spinal muscular atrophy analysis using long-read PacBio HiFi sequencing. In American journal of human genetics, 110, 240-250. doi:10.1016/j.ajhg.2023.01.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36669496/
5. Lorson, C L, Hahnen, E, Androphy, E J, Wirth, B. . A single nucleotide in the SMN gene regulates splicing and is responsible for spinal muscular atrophy. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 96, 6307-11. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10339583/
6. Xie, Qing, Chen, Xiupeng, Ma, Hong, Gao, Guangping, Xie, Jun. 2024. Improved gene therapy for spinal muscular atrophy in mice using codon-optimized hSMN1 transgene and hSMN1 gene-derived promotor. In EMBO molecular medicine, 16, 945-965. doi:10.1038/s44321-024-00037-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38413838/
7. Blauw, H M, Barnes, C P, van Vught, P W J, Veldink, J H, van den Berg, L H. 2012. SMN1 gene duplications are associated with sporadic ALS. In Neurology, 78, 776-80. doi:10.1212/WNL.0b013e318249f697. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22323753/