推荐搜索:
C-NKG
IL10
Apoe
VEGFA
Trp53
ob/ob
Rag1
C57BL/6JCya-Slaem1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称:
Sla-flox
产品编号:
S-CKO-05074
品系背景:
C57BL/6JCya
小鼠资源库
* 使用本品系发表的文献需注明:Sla-flox mice (Strain S-CKO-05074) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Slaem1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-20491-Sla-B6J-VA
产品编号
S-CKO-05074
基因名
Sla
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
Slap;Slap-1
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:104295 Homozygous inactivation in this locus affects T cell development.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Sla位于小鼠的15号染色体,采用基因编辑技术,通过高通量电转受精卵方式,获得Sla基因条件性敲除小鼠,性成熟后取精子冻存。
Sla-flox小鼠模型是由赛业生物(Cyagen)采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Sla基因位于小鼠15号染色体上,由8个外显子组成,其中ATG起始密码子在1号外显子,TAA终止密码子在8号外显子。条件性敲除区域(cKO区域)位于7号外显子,包含约648个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Sla基因功能的丧失。 Sla-flox小鼠模型的构建过程包括使用基因编辑技术将靶向载体和核糖核蛋白(RNP)共同注入受精卵。随后,对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。携带敲除等位基因的小鼠在T细胞发育方面受到影响。
基因研究概述
基因SLA,即猪的白细胞抗原(Swine Leukocyte Antigen),是一类位于猪主要组织相容性复合体(Major Histocompatibility Complex, MHC)上的基因,与人类的MHC基因相似。SLA基因家族在猪的免疫系统中发挥着重要作用,负责编码细胞表面的分子,这些分子在识别和响应病原体方面至关重要。SLA基因分为两类:经典MHC基因(如SLA-1, SLA-2, SLA-3)和非经典MHC基因(如SLA-6, SLA-7, SLA-8)。
经典MHC基因编码的分子能够识别并呈递抗原给T细胞,从而触发免疫反应。非经典MHC基因编码的分子则可能在免疫调节和免疫逃逸中发挥作用。例如,研究发现,SLA-7基因存在多种转录变体,编码的蛋白质在细胞质尾部长度上有所不同,这可能影响其功能[2]。此外,SLA-7基因的表达可以被甘草多糖(GCP)所促进,这表明SLA-7基因可能参与猪的免疫反应[3]。
SLA基因的表达和功能也与猪的疾病易感性相关。例如,研究发现,SLA-1和SLA-3基因的表达水平与猪对大肠杆菌F18的易感性有关,这些基因的表达在F18抵抗的猪中更高[1]。此外,SLA基因的多样性对于猪在医学研究中的应用也具有重要意义。例如,研究发现,Göttingen小型猪的SLA基因多样性较高,这表明在进行再生医学、异种移植和异种移植研究之前,需要对其SLA背景进行评估[4]。
此外,SLA基因还与某些病毒感染有关。例如,研究发现,非经典MHC II蛋白SLA-DM对于非洲猪瘟病毒(ASFV)的复制至关重要。在猪细胞中进行的全基因组CRISPR/Cas9敲除筛选表明,SLA-DM基因的敲除会导致ASFV复制缺陷[5]。
综上所述,SLA基因在猪的免疫系统中发挥着重要作用,参与抗原呈递、免疫调节和免疫逃逸等过程。SLA基因的表达和功能与猪的疾病易感性、免疫反应和病毒感染密切相关。深入研究SLA基因的生物学功能和疾病相关性,对于猪的疾病防治和医学研究具有重要意义。
参考文献:
1. Ye, L, Zi, C, Pan, Z Y, Bao, W B, Wu, S L. 2011. Investigation of the relationship between SLA-1 and SLA-3 gene expression and susceptibility to Escherichia coli F18 in post-weaning pigs. In Comparative immunology, microbiology and infectious diseases, 35, 23-30. doi:10.1016/j.cimid.2011.09.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22019298/
2. Hu, Rui, Lemonnier, Gaëtan, Bourneuf, Emmanuelle, Vincent-Naulleau, Silvia, Rogel-Gaillard, Claire. 2011. Transcription variants of SLA-7, a swine non classical MHC class I gene. In BMC proceedings, 5 Suppl 4, S10. doi:10.1186/1753-6561-5-S4-S10. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21645289/
3. Yang, Youbing, Liu, Yongjian, Lou, Ran, Xu, Zhiqian, You, Xiangbin. 2023. Glycyrrhiza polysaccharides inhibits PRRSV replication. In Virology journal, 20, 140. doi:10.1186/s12985-023-02052-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37408066/
4. Hammer, Sabine E, Duckova, Tereza, Gociman, Monica, Wenzel, Nadine, Figueiredo, Constanca. 2024. Comparative analysis of swine leukocyte antigen gene diversity in Göttingen Minipigs. In Frontiers in immunology, 15, 1360022. doi:10.3389/fimmu.2024.1360022. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38469309/
5. Pannhorst, Katrin, Carlson, Jolene, Hölper, Julia E, Fuchs, Walter, Mettenleiter, Thomas C. 2023. The non-classical major histocompatibility complex II protein SLA-DM is crucial for African swine fever virus replication. In Scientific reports, 13, 10342. doi:10.1038/s41598-023-36788-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37604847/