推荐搜索:
C-NKG
IL10
Apoe
VEGFA
Trp53
ob/ob
Rag1
C57BL/6JCya-Prps1em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称:
Prps1-flox
产品编号:
S-CKO-04468
品系背景:
C57BL/6JCya
小鼠资源库
* 使用本品系发表的文献需注明:Prps1-flox mice (Strain S-CKO-04468) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Prps1em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-19139-Prps1-B6J-VA
产品编号
S-CKO-04468
基因名
Prps1
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
PRS-I;Prps-1;2310010D17Rik
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Prps1位于小鼠的X号染色体,采用基因编辑技术,通过高通量电转受精卵方式,获得Prps1基因条件性敲除小鼠,性成熟后取精子冻存。
Prps1-flox小鼠模型是由赛业生物(Cyagen)采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Prps1基因位于小鼠X号染色体上,由7个外显子组成,其中ATG起始密码子在1号外显子,TAA终止密码子在7号外显子。条件性敲除区域(cKO区域)位于2号外显子,包含184个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Prps1基因功能的丧失。 Prps1-flox小鼠模型的构建过程包括将基因编辑技术制备的靶向载体和核糖核蛋白(RNP)共同注入受精卵。出生的小鼠随后进行PCR和测序分析进行基因型鉴定,以确保构建成功。 该模型可用于研究Prps1基因在小鼠体内的功能。通过条件性敲除Prps1基因,研究人员可以研究该基因在小鼠体内对特定生物学过程的影响,例如蛋白质合成和细胞功能。此外,该模型还可以用于研究Prps1基因与特定疾病的关系,例如神经退行性疾病或癌症。通过研究Prps1-flox小鼠模型,可以为相关疾病的治疗和预防提供重要的线索和基础。
基因研究概述
PRPS1,即磷酸核糖焦磷酸合成酶1,是一种关键酶,它催化从底物:腺苷三磷酸(ATP)和核糖-5-磷酸(R5P)合成磷酸核糖焦磷酸(PRPP)的过程,这是嘌呤和嘧啶核苷酸合成的从头合成途径中的第一步[1]。PRPS1基因的突变会导致一系列嘌呤代谢疾病,包括PRPS1超活性。常见的临床表型包括高尿酸血症和高尿酸尿症[1]。例如,一名24岁的中国女性患者,患有高尿酸血症、痛风和反复发热超过6年,并被诊断出患有高雄激素血症、胰岛素抵抗(IR)和多囊卵巢综合征(PCOS)。通过下一代测序(NGS)检测到患者及其父母存在一个新的错义突变,c.521(exon)G>T, p.(Gly174Val),并通过Sanger测序进行确认。有趣的是,她的母亲也有相同的杂合子错义突变,但没有尿酸过多,这可以通过X染色体非随机失活现象来解释[1]。
PRPS1基因突变也与成人发病的复杂共济失调有关[2]。此外,PRPS1基因突变与多种人类疾病有关,包括糖尿病[3]。例如,最近发现的PRPS1基因新突变与糖尿病有关,扩大了PRPS1相关疾病的范围。PRPS1的过度表达导致PRPS-I超活性,导致嘌呤过度产生。具有PRPS-I超活性的患者表现出尿酸过度产生、低张力、共济失调、神经发育异常和后天性听力丧失。另一方面,活性降低导致X连锁非综合征性感觉神经性聋(DFNX-2)、夏科-马里-图斯病5型(CMTX5)和阿茨综合征,具体取决于PRS-I的残余活性。轻度PRS-I缺乏(DFNX-2)导致非综合征性进行性听力丧失,而中度PRS-I缺乏(CMTX5)和重度PRS-I缺乏(阿茨综合征)表现为周围或视神经病变、先天性进行性感觉神经性听力丧失和中枢神经系统受损。目前,通过S-腺苷蛋氨酸(SAM)补充进行嘌呤替代治疗,似乎可以改善阿茨综合征患者的情况[3]。
PRPS1基因突变还与肝脏肿瘤的生长有关。例如,受体酪氨酸激酶激活促进CK2介导的CLOCK S106磷酸化,随后导致CLOCK-BMAL1二聚体的解离和下游基因表达的抑制,在肝细胞癌(HCC)细胞中。此外,CLOCK S106磷酸化暴露其核输出信号,与Exportin1结合进行核输出。细胞质中的CLOCK使PRPS1/2 K29乙酰化,并阻止HSC70介导的和溶酶体依赖的PRPS1/2降解。稳定的PRPS1/2促进从头核苷酸合成和HCC细胞增殖以及肝脏肿瘤生长。此外,CLOCK S106磷酸化和PRPS1/2 K29乙酰化在人类HCC标本中呈正相关,并与HCC不良预后相关[4]。
PRPS1基因突变还与感觉神经性聋有关。例如,一个中国家庭中有X连锁的后天感觉神经性聋,通过突变筛选PRPS1基因,发现了4个不同的错义突变。这些突变导致磷酸核糖焦磷酸(PRPP)合成酶1活性的丧失,如通过结构分析和体外酶活性测定在患者的红细胞和成纤维细胞中所证明。通过原位杂交,我们证明了Prps1在小鼠前庭和耳蜗毛细胞中的表达,毛细胞中持续表达,在出生后螺旋神经节中表达[7]。
PRPS1基因突变还与X连锁非综合征性感觉神经性聋(DFNX-2)有关。例如,一个中国家庭中有X连锁的后天感觉神经性聋,通过突变筛选PRPS1基因,发现了4个不同的错义突变。这些突变导致磷酸核糖焦磷酸(PRPP)合成酶1活性的丧失,如通过结构分析和体外酶活性测定在患者的红细胞和成纤维细胞中所证明。通过原位杂交,我们证明了Prps1在小鼠前庭和耳蜗毛细胞中的表达,毛细胞中持续表达,在出生后螺旋神经节中表达[7]。
PRPS1基因突变还与夏科-马里-图斯病5型(CMTX5)有关。例如,一名日本CMTX5患者被发现有一个新的半合子突变c.82 G>C在PRPS1。尽管表现出典型的临床表现,但患者红细胞中测量的酶活性下降比之前报道的病例要轻[5]。
PRPS1基因突变还与X连锁非综合征性感觉神经性聋(DFNX-2)有关。例如,一名日本CMTX5患者被发现有一个新的半合子突变c.82 G>C在PRPS1。尽管表现出典型的临床表现,但患者红细胞中测量的酶活性下降比之前报道的病例要轻[5]。
PRPS1基因突变还与复发性急性淋巴细胞白血病(ALL)的基因组景观有关。例如,为了研究急性淋巴细胞白血病(ALL)复发的机制,我们对103例诊断-复发-种系三重进行了全基因组测序,并对16名患者中的208例连续样本进行了超深度测序。复发特异性体细胞改变富集在12个基因中,包括NR3C1、NR3C2、TP53、NT5C2、FPGS、CREBBP、MSH2、MSH6、PMS2、WHSC1、PRPS1和PRPS2,这些基因参与药物反应。它们的流行率在极早复发(诊断后<9个月)组为17%,在早复发(9-36个月)组为65%,在晚复发(>36个月)组为32%。在6例复发中观察到趋同进化,其中多个亚克隆在相同的药物耐药基因中携带突变,并通过单细胞测序在1例中证实。数学模型和突变谱分析表明,早期复发耐药性的获得通常是一个两步过程,其中持久性克隆在初始治疗中存活,并在治疗期间后来获得真正的耐药突变。相比之下,极早复发来自预先存在的耐药克隆。在早期和晚期复发中发现了两个新的复发特异性突变谱,其中一个是由体外药物暴露实验引起的硫嘌呤治疗引起的,但在2540例泛癌诊断样本和129例非ALL复发中未见。这些新型签名在27%的复发性ALL中检测到,并负责NT5C2、PRPS1、NR3C1和TP53中46%的获得性耐药突变[6]。
综上所述,PRPS1基因突变与多种疾病有关,包括高尿酸血症、痛风、共济失调、神经发育异常、听力丧失、肝脏肿瘤、X连锁非综合征性感觉神经性聋、夏科-马里-图斯病5型、复发性急性淋巴细胞白血病等。PRPS1基因突变导致PRS-I超活性或PRS-I活性降低,进而影响嘌呤和嘧啶核苷酸的合成,导致多种疾病的发生。目前,通过S-腺苷蛋氨酸(SAM)补充进行嘌呤替代治疗,似乎可以改善PRPS1缺乏患者的情况,为PRPS1相关疾病的治疗提供了新的思路和策略。
参考文献:
1. Yang, Bo-Yun, Yu, Han-Xiao, Min, Jie, Song, Xiao-Xiao. 2019. A novel mutation in gene of PRPS1 in a young Chinese woman with X-linked gout: a case report and review of the literature. In Clinical rheumatology, 39, 949-956. doi:10.1007/s10067-019-04801-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31773495/
2. Rezende Filho, Flávio M, Palma, Mariana M, Pedroso, José Luiz, Barsottini, Orlando G, Sallum, Juliana M. 2021. PRPS1 Gene Mutation Causes Complex X-Linked Adult-Onset Cerebellar Ataxia in Women. In Neurology. Genetics, 7, e563. doi:10.1212/NXG.0000000000000563. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33898739/
3. Mittal, Rahul, Patel, Kunal, Mittal, Jeenu, Grati, M'hamed, Liu, Xue Zhong. 2015. Association of PRPS1 Mutations with Disease Phenotypes. In Disease markers, 2015, 127013. doi:10.1155/2015/127013. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26089585/
4. Liu, Tong, Wang, Zheng, Ye, Leiguang, Lu, Zhimin, Xu, Daqian. 2023. Nucleus-exported CLOCK acetylates PRPS to promote de novo nucleotide synthesis and liver tumour growth. In Nature cell biology, 25, 273-284. doi:10.1038/s41556-022-01061-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36646788/
5. Shirakawa, Shunichi, Murakami, Tatsufumi, Hashiguchi, Akihiro, Ichida, Kimiyoshi, Sunada, Yoshihide. 2021. A Novel PRPS1 Mutation in a Japanese Patient with CMTX5. In Internal medicine (Tokyo, Japan), 61, 1749-1751. doi:10.2169/internalmedicine.8029-21. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34803094/
6. Li, Benshang, Brady, Samuel W, Ma, Xiaotu, Yang, Jun J, Zhang, Jinghui. . Therapy-induced mutations drive the genomic landscape of relapsed acute lymphoblastic leukemia. In Blood, 135, 41-55. doi:10.1182/blood.2019002220. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31697823/
7. Liu, Xuezhong, Han, Dongyi, Li, Jianzhong, Yan, Denise, Yuan, Huijun. . Loss-of-function mutations in the PRPS1 gene cause a type of nonsyndromic X-linked sensorineural deafness, DFN2. In American journal of human genetics, 86, 65-71. doi:10.1016/j.ajhg.2009.11.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20021999/