智鼠故事 
C57BL/6JCya-Acot8em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Acot8-flox
产品编号：
S-CKO-03522
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Acot8-flox mice (Strain S-CKO-03522) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Acot8em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-170789-Acot8-B6J-VA
产品编号
S-CKO-03522
基因名
Acot8
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
Pte1；PTE-1；PTE-2
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
在研小鼠
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Acot8位于小鼠的2号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Acot8基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Acot8-flox小鼠模型是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Acot8基因位于小鼠2号染色体上，由6个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TAG终止密码子在6号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于第四号和5号外显子之间，包含约1325个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Acot8基因功能的丧失。Acot8-flox小鼠模型的构建过程包括将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。随后，对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。此外，携带敲除等位基因的小鼠可用于研究Acot8基因在小鼠体内的功能。
基因研究概述
基因Acot8，也称为酰基辅酶A硫酯酶8，是一种在脂肪酸代谢中发挥重要作用的酶。酰基辅酶A硫酯酶是一类能够水解酰基辅酶A酯的酶，将它们转化为相应的脂肪酸和辅酶A。这些酶在脂肪酸的释放、转运和代谢中发挥着关键作用，影响着细胞的能量代谢和膜脂质的合成。
Acot8在多种生物学过程中发挥着重要作用。在HIV感染中，病毒蛋白Nef与Acot8相互作用，可能参与了Nef依赖性内吞作用和膜筏中脂质组成的调节。研究发现，Acot8的基因拷贝数和mRNA表达在肝细胞癌组织中增加，而Acot8的沉默则抑制了肝细胞癌细胞的生长，表明Acot8在肝细胞癌的发生发展中起着促进作用。此外，Acot8在肾细胞癌中的表达下调，与疾病进展相关，可能是肾细胞癌诊断和预后的新型生物标志物。
甲状腺激素对Acot8的表达也有影响。甲状腺激素在葡萄糖和脂质代谢中发挥着多种作用，而Acot8的表达在甲状腺功能亢进和甲状腺功能减退的小鼠的脂肪组织和肝脏中有所改变。甲状腺激素可能通过调节Acot8的表达来适应代谢需求。
除了在疾病中的作用，Acot8还与一些激素和受体的相互作用有关。例如，黑色素聚集激素受体2（MCHR2）与黑色素聚集激素（MCH）相互作用，影响Acot8的表达。此外，Acot8的表达也受到饮食的影响，例如大豆皂苷可以改善产蛋鸡的脂质代谢和肠道健康。
综上所述，Acot8是一种重要的酰基辅酶A硫酯酶，在脂肪酸代谢中发挥着重要作用。它在多种生物学过程中发挥作用，包括HIV感染、肝细胞癌、肾细胞癌等。Acot8的表达受到甲状腺激素、激素和受体相互作用以及饮食等因素的影响。研究Acot8的功能和调控机制有助于深入理解脂肪酸代谢的生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。[1][2][3][4][5][6][7][8][9][10]
参考文献：
1. Palmeira, Julys da Fonseca, Argañaraz, Gustavo A, de Oliveira, Guilherme Xavier Lyra Malcher, Argañaraz, Enrique R. 2019. Physiological relevance of ACOT8-Nef interaction in HIV infection. In Reviews in medical virology, 29, e2057. doi:10.1002/rmv.2057. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31179598/
2. Hung, Yu-Hsuan, Chan, Yi-Shin, Chang, Yung-Sheng, Wang, Chih-Yang, Lai, Ming-Derg. 2014. Fatty acid metabolic enzyme acyl-CoA thioesterase 8 promotes the development of hepatocellular carcinoma. In Oncology reports, 31, 2797-803. doi:10.3892/or.2014.3155. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24788990/
3. Xu, Chao-Liang, Chen, Lei, Li, Deng, Sha, Ming-Lei, Shao, Yi. 2020. Acyl-CoA Thioesterase 8 and 11 as Novel Biomarkers for Clear Cell Renal Cell Carcinoma. In Frontiers in genetics, 11, 594969. doi:10.3389/fgene.2020.594969. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33362855/
4. Zhang, Q, Yuan, C-F, Wu, M-J, Liu, G-L, Song, F-Z. 2010. Comparative proteomic analysis of proteins influenced by melanin-concentrating hormone and melanin-concentrating hormone receptor 2 interaction. In Hormone and metabolic research = Hormon- und Stoffwechselforschung = Hormones et metabolisme, 42, 521-7. doi:10.1055/s-0030-1249019. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20340065/
5. Ran, Xun, Luo, Jun, Zuo, Chaohai, Cen, JunHua, Tang, Shengli. 2021. Developing metabolic gene signatures to predict intrahepatic cholangiocarcinoma prognosis and mining a miRNA regulatory network. In Journal of clinical laboratory analysis, 36, e24107. doi:10.1002/jcla.24107. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34871464/
6. Serena, Michela, Giorgetti, Alejandro, Busato, Mirko, Romanelli, Maria Grazia, Zipeto, Donato. 2016. Molecular characterization of HIV-1 Nef and ACOT8 interaction: insights from in silico structural predictions and in vitro functional assays. In Scientific reports, 6, 22319. doi:10.1038/srep22319. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26927806/
7. Krause, Kerstin, Weiner, Juliane, Hönes, Sebastian, Moeller, Lars C, Tönjes, Anke. 2015. The Effects of Thyroid Hormones on Gene Expression of Acyl-Coenzyme A Thioesterases in Adipose Tissue and Liver of Mice. In European thyroid journal, 4, 59-66. doi:10.1159/000437304. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26601074/
8. Westin, Maria A K, Hunt, Mary C, Alexson, Stefan E H. 2005. The identification of a succinyl-CoA thioesterase suggests a novel pathway for succinate production in peroxisomes. In The Journal of biological chemistry, 280, 38125-32. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16141203/
9. Li, Peng, Gao, Mingkun, Fu, Jiahuan, Lv, Zengpeng, Guo, Yuming. 2021. Dietary soya saponin improves the lipid metabolism and intestinal health of laying hens. In Poultry science, 101, 101663. doi:10.1016/j.psj.2021.101663. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35172236/
10. Gharib, Ehsan, Nasrinasrabadi, Parinaz, Zali, Mohammad Reza. 2020. Development and validation of a lipogenic genes panel for diagnosis and recurrence of colorectal cancer. In PloS one, 15, e0229864. doi:10.1371/journal.pone.0229864. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32155177/
