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C57BL/6JCya-Crip3em1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称:
Crip3-flox
产品编号:
S-CKO-00990
品系背景:
C57BL/6JCya
小鼠资源库
* 使用本品系发表的文献需注明:Crip3-flox mice (Strain S-CKO-00990) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Crip3em1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-114570-Crip3-B6J-VA
产品编号
S-CKO-00990
基因名
Crip3
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
TLP,Tlmp,TLP-A,TLP-B
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:2152434 Homozygous mutant mice exhibit a decrease in thymocyte cellularity, though thymocyte development and thymic architecture appear to be normal.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Crip3位于小鼠的17号染色体,采用基因编辑技术,通过高通量电转受精卵方式,获得Crip3基因条件性敲除小鼠,性成熟后取精子冻存。
Crip3-flox小鼠模型是由赛业生物(Cyagen)采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Crip3基因位于小鼠17号染色体上,包含8个外显子,其中ATG起始密码子位于1号外显子,TGA终止密码子位于8号外显子。条件性敲除区域(cKO区域)位于3号外显子和4号外显子之间,包含190个碱基对的编码序列。删除该区域会导致小鼠Crip3基因功能的丧失。Crip3-flox小鼠模型的构建过程包括将靶向载体通过基因编辑技术导入小鼠受精卵中。随后,对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。携带敲除等位基因的小鼠表现出胸腺细胞数量减少,但胸腺细胞发育和胸腺结构正常。此外,该模型可用于研究Crip3基因在小鼠体内的功能,特别是其与免疫系统和细胞发育的关系。
基因研究概述
CRIP3,即Cysteine-Rich Intestinal Protein 3,属于Cysteine-Rich Intestinal Protein家族成员之一,属于LIM蛋白家族。LIM蛋白是一类含有两个锌指结构的蛋白,通常在细胞骨架调节、细胞信号传导和细胞分化中发挥作用。CRIP家族成员在哺乳动物中广泛表达,但它们在胚胎发育过程中的表达模式和功能仍不完全清楚。
在胚胎发育过程中,CRIP3的表达在多个器官和系统中观察到。在斑马鱼胚胎中,CRIP3基因在原肾、鳃弓和眼睛中表达[3]。此外,CRIP3转录本在发育中的颅神经节和神经管中也可以被检测到[3]。相比之下,CRIP2在心血管系统、大脑和神经管中表达,而CRIP3在颅神经节和心脏中表达[3]。这些发现表明,每个CRIP家族成员可能在胚胎发育过程中发挥重要作用。
除了在胚胎发育中的作用外,CRIP3还与其他生物学过程和疾病相关。例如,研究表明,CRIP3在氧化应激下被下调,可能与锌稳态相关[2]。此外,CRIP3的表达与年龄相关听力损失(ARHL)相关,并被认为在ARHL的发病机制中起重要作用[1]。此外,CRIP3的表达与前列腺癌的疾病进展相关,并被用作预测患者再分类的潜在生物标志物[4,5]。
此外,CRIP3的表达还与其他生物学过程和疾病相关。例如,研究表明,CRIP3在氧化应激下被下调,可能与锌稳态相关[2]。此外,CRIP3的表达与年龄相关听力损失(ARHL)相关,并被认为在ARHL的发病机制中起重要作用[1]。此外,CRIP3的表达与前列腺癌的疾病进展相关,并被用作预测患者再分类的潜在生物标志物[4,5]。
总之,CRIP3是一种重要的LIM蛋白家族成员,参与多种生物学过程,包括胚胎发育、氧化应激和疾病发生。CRIP3的表达与多种疾病相关,包括ARHL和前列腺癌,并可能成为预测疾病进展和预后的潜在生物标志物。然而,CRIP3的确切功能和调控机制仍需要进一步研究。
参考文献:
1. Cornejo-Sanchez, Diana M, Li, Guangyou, Fabiha, Tabassum, DeWan, Andrew T, Leal, Suzanne M. 2023. Rare-variant association analysis reveals known and new age-related hearing loss genes. In European journal of human genetics : EJHG, 31, 638-647. doi:10.1038/s41431-023-01302-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36788145/
2. Suzuki, Takayuki, Ono, Yoko, Bono, Hidemasa. 2021. Comparison of Oxidative and Hypoxic Stress Responsive Genes from Meta-Analysis of Public Transcriptomes. In Biomedicines, 9, . doi:10.3390/biomedicines9121830. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34944646/
3. Hempel, Annemarie, Kühl, Susanne J. . Comparative expression analysis of cysteine-rich intestinal protein family members crip1, 2 and 3 during Xenopus laevis embryogenesis. In The International journal of developmental biology, 58, 841-9. doi:10.1387/ijdb.140270sk. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26154325/
4. Ghorbel, Mohamed T, Mokhtari, Amir, Sheikh, Maimuna, Angelini, Gianni D, Caputo, Massimo. 2012. Controlled reoxygenation cardiopulmonary bypass is associated with reduced transcriptomic changes in cyanotic tetralogy of Fallot patients undergoing surgery. In Physiological genomics, 44, 1098-106. doi:10.1152/physiolgenomics.00072.2012. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22991208/
5. Zhao, Fang, Vesprini, Danny, Liu, Richard S C, Liu, Stanley K, Bapat, Bharati. 2019. Combining urinary DNA methylation and cell-free microRNA biomarkers for improved monitoring of prostate cancer patients on active surveillance. In Urologic oncology, 37, 297.e9-297.e17. doi:10.1016/j.urolonc.2019.01.031. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30777394/