Gh,即生长激素(Growth Hormone,GH),是一种由腺垂体分泌的多肽激素,对促进生长、调节新陈代谢和维持内环境稳定起着重要作用。GH的异质性体现在其基因结构、mRNA剪接、翻译后修饰和代谢等多个层面。在人类基因组中,GH基因簇位于17号染色体长臂上,包括两个GH基因(GH1或GH-N和GH2或GH-V)以及两个(或三个)编码相关绒毛膜促生长素(chorionic somatomammotropin)的基因。GH1基因的转录本经过可变剪接可以产生两种产物:22K-GH(垂体GH的主要形式)和20K-GH。翻译后修饰的GH形式包括N(α)-酰化、脱酰胺和糖基化等单体的GH形式,以及至少至五聚体的非共价和二硫键连接的寡聚体。在周围代谢过程中产生的GH片段可以通过免疫测定法进行测量。GH-N基因在垂体中表达,而GH-V基因在胎盘组织中表达。垂体GH的分泌受下丘脑的脉冲控制,而胎盘GH-V的分泌是持续性的,并在妊娠的第2和第3个三个月期间逐渐增加。垂体GH在分泌脉冲期间共分泌;尚未发现特定的刺激物。GH异构体之间在生长和代谢生物活性方面存在细微差异,这取决于物种和使用的测定系统。20K-GH和GH-V的催乳活性较差。与单体形式相比,寡聚体GH形式的生物活性有所降低。在大多数免疫测定中,GH异构体之间存在交叉反应,但已开发了针对22K-GH、20K-GH和GH-V的特异性测定。与22K-GH相比,20K-GH和GH寡聚体的代谢清除率较慢。血液中GH异构体的混合物进一步复杂化,因为存在两种GH结合蛋白,它们与GH形成复合物;由于不同的半衰期,异构体比例也会根据分泌脉冲后的滞后时间而变化。尿液中排出的GH形式反映了血液中的单体GH异构体,但只占GH产生率的一小部分。GH的异质性是导致测定结果差异的重要原因之一。它也为区分内源性GH和外源性GH提供了机会[1]。
在孤立性GH缺乏症(IGHD)中,GH-1基因的突变会影响GH-1转录本的剪接,产生一个缺乏外显子3的显性负GH异构体,导致GH分泌途径的破坏。临床研究表明,IGHD II表型的严重程度与GH-1基因突变的程度有关。体外和转基因动物数据表明,表型的出现和严重程度与突变GH-1等位基因产生的17.5-kDa异构体的比例有关。研究通过比较野生型(wt)和突变GH-1基因在刺激表达下的不同GH异构体的产生,发现突变GH-1等位基因产生的17.5-kDa异构体比例随着基因表达驱动力的增加而增加。这种增加与IGHD II的表型出现、进展和严重程度的可变性有关[2]。
在Awassi绵羊中,GH和DGAT1基因是候选的生长性状相关基因。研究发现,GH基因位点与体重和尾长相关,而DGAT1基因位点与尾长相关。CHAID和CRT方法可以评估基因与生长性状之间的关联[3]。
在孤立性GH缺乏症(IGHD)患者中,GH-1基因的突变是一个常见的现象。研究发现,在IGHD类型IA的家族中,GH-1基因突变的频率很高,而在其他IGHD类型的家族中,频率较低。此外,GH-1基因突变在不同人群中的分布存在差异。这些发现强调了GH-1基因突变在IGHD发病机制中的重要性,并为IGHD的遗传诊断和治疗提供了参考[4]。
GH通过多种机制调节基因转录,包括转录因子的翻译后修饰和涉及转录因子、共调节因子和核蛋白的复合物的形成。C/EBPβ是GH调节转录的关键转录因子,其磷酸化状态和激活转录的能力受GH调控。GH还可以通过调节与DNA结合的转录因子相关的蛋白质复合物的形成来调节转录。因此,GH调节的基因转录反映了多种机制的整合,包括翻译后修饰、蛋白质复合物的调节和基因调节蛋白的重新定位[5]。
在显性遗传的孤立性GH缺乏症中,GH1基因的剪接位点突变是主要的原因。研究发现,突变产生的del32-71 GH在细胞中积累并导致内质网应激和细胞凋亡,进而影响野生型GH的分泌。这些发现揭示了显性遗传的孤立性GH缺乏症的分子机制,为该疾病的诊断和治疗提供了新的思路[6]。
综上所述,GH是一种重要的多肽激素,其异构体在生物学功能和疾病发生中发挥重要作用。GH-1基因突变与孤立性GH缺乏症的发生密切相关,突变导致的GH异构体的产生和分泌途径的破坏是IGHD发病机制的关键。此外,GH还可以通过多种机制调节基因转录,影响基因表达和生物学过程。深入研究GH和GH-1基因的功能和调控机制,有助于我们更好地理解生长激素的生物学作用和疾病发生机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献:
1. Baumann, Gerhard P. 2009. Growth hormone isoforms. In Growth hormone & IGF research : official journal of the Growth Hormone Research Society and the International IGF Research Society, 19, 333-40. doi:10.1016/j.ghir.2009.04.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19467614/
2. Salemi, Souzan, Yousefi, Shida, Lochmatter, Didier, Simon, Hans-Uwe, Mullis, Primus E. 2006. Isolated autosomal dominant growth hormone deficiency: stimulating mutant GH-1 gene expression drives GH-1 splice-site selection, cell proliferation, and apoptosis. In Endocrinology, 148, 45-53. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17038549/
3. Bayraktar, Mervan, Shoshin, Omer. 2021. Estimation of the associations between GH and DGAT1 genes and growth traits by using decision tree in Awassi sheep. In Animal biotechnology, 33, 167-173. doi:10.1080/10495398.2021.1975727. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34543162/
4. Wagner, J K, Eblé, A, Hindmarsh, P C, Mullis, P E. . Prevalence of human GH-1 gene alterations in patients with isolated growth hormone deficiency. In Pediatric research, 43, 105-10. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9432120/
5. Ceseña, Teresa I, Cui, Tracy Xiao, Piwien-Pilipuk, Graciela, Kwok, Roland, Schwartz, Jessica. 2006. Multiple mechanisms of growth hormone-regulated gene transcription. In Molecular genetics and metabolism, 90, 126-33. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17129742/
6. Ariyasu, Daisuke, Yoshida, Hiderou, Yamada, Makoto, Hasegawa, Yukihiro. 2013. Endoplasmic reticulum stress and apoptosis contribute to the pathogenesis of dominantly inherited isolated GH deficiency due to GH1 gene splice site mutations. In Endocrinology, 154, 3228-39. doi:10.1210/en.2013-1249. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23736291/